Summary

Het onderzoeken van Proteasome Montage met Recombinant Archaea Proteasomen en denaturerende PAGE: The Case voor een gecombineerde aanpak

Published: December 17, 2016
doi:

Summary

Dit protocol maakt gebruik van zowel subunit co-expressie en postlysis subunit mengen voor een grondig onderzoek van recombinant proteasoom montage.

Abstract

Proteasomen worden gevonden in alle domeinen van het leven. Zij bieden de belangrijkste route voor intracellulaire eiwitafbraak in eukaryoten, hoewel hun assemblage wordt niet volledig begrepen. Alle proteasomen bevatten een structureel geconserveerd kerndeeltje (CP) of 20S proteasoom, die twee heptamere β subeenheid ringen tussen twee heptamere ringen α subeenheid. Archaea 20S proteasomen zijn compositorisch eenvoudiger in vergelijking met hun eukaryote tegenhangers, maar ze beiden delen een gemeenschappelijke vergadering mechanisme. Bijgevolg Archaea 20S proteasomen blijven belangrijke modellen voor eukaryote proteasoom montage zijn. Specifiek heeft recombinante expressie Archaea 20S proteasomen gekoppeld denaturerende polyacrylamidegelelektroforese (PAGE) veel belangrijke inzichten proteasoom biogenese opgeleverd. Hier bespreken we een manier te verbeteren op de gebruikelijke strategie van co-expressie van archaea proteasoom α en ß-subeenheden voorafgaand aan nondenaturing PAGE. We laten zien dat hoewel snel en efficiënt, een co-expressie aanpak alleen kan missen belangrijke assemblage tussenproducten. Bij het proteasoom, kan co-expressie geen detectie van de half-proteasoom, een tussenproduct dat een volledige α-ring en een volledige β-ring mogelijk. Echter, dit tussenproduct wordt gemakkelijk gedetecteerd via lysaat mengen. Wij stellen voor dat de combinatie van co-expressie met lysaat mengen een aanpak die is grondiger in het analyseren van de montage oplevert, maar toch blijft arbeid nonintensive. Deze benadering kan nuttig zijn voor het bestuderen van andere recombinante multiproteïnecomplexen zijn.

Introduction

Multiproteïnecomplexen uit te voeren tal van kritische cellulaire activiteiten 1. Voor veel van deze complexen, meer bekend over hun structuur en functie dan ongeveer 2,3 de montage. Het proteasoom is zo'n complex en wordt in alle domeinen van het leven. In eukaryoten, deze moleculaire machine is de kern van het ubiquitine / Proteasome System (UPS) en geeft de belangrijkste route van intracellulaire eiwitafbraak 4. De eukaryote proteasoom (aangeduid als 26S proteasoom) bestaat uit twee belangrijke subassemblages: a 20S proteasoom of kerndeeltje (CP) 5, die kunnen worden afgesloten aan één of beide einden door een 19S Regulatory Particle (RP) 6.

Het 20S proteasoom is een groot gecompartimenteerd protease. De quaternaire structuur absoluut geconserveerd in alle levensdomeinen en bestaat uit een stapel van vier zevenringen die twee soorten structureel verwante subeenheden, α; en P 5,7,8. In eukaryoten worden de twee buitenringen elk bestaande uit zeven verschillende α subeenheden en twee binnenringen elk bestaan ​​uit zeven verschillende β subeenheden; proteolytische activiteit berust bij drie van de β subeenheden. Daarentegen worden de CP ringen archaea en bacteriën gewoonlijk samengesteld uit slechts één type α en één type β subunit. Archaea proteasomen hebben verstrekt een belangrijk model systeem om proteasoom assemblage studeren als gevolg van zowel hun compositorische eenvoud en het delen van een gemeenschappelijke vergadering mechanisme met hun eukaryote tegenhangers 9-13. Kortom, α subeenheden assembleren in α ringen eerste, die dienen als een stellage waarop ß-subeenheden assembleren. De resulterende half-proteasomen (α β 7 7) dimeriseren, wat tot volledig geassembleerd CP (α β 7 7 7 α β 7). Dimerisatie tijdens de propeptiden in over ß-subeenhedenautokatalytische worden verwijderd, waardoor de katalytische N-terminale threoninen. Het gebruik van proteasomen Archaea montage model houdt vaak gebruik van de productie van recombinante archaea proteasoom eiwitten in Escherichia coli. Dit is een waardevolle benadering omdat het stelt de subeenheden worden geproduceerd in verschillende combinaties, zowel WT en mutante versies in een gastheerorganisme dat zijn eigen proteasomen niet produceert.

Monitoring van de assemblage van multi-eiwitcomplexen biochemisch vereist enige vorm van fractionering methode die volledig gemonteerd complexen van assemblage tussenproducten en voorlopers scheidt. Vanwege de superieure oplossen capaciteit denaturerende polyacrylamidegelelektroforese (PAGE) gebleken bijzonder bruikbaar bij de fractionering van diverse grote multiproteïnecomplexen 14-17 zijn. De combinatie van recombinant archaea proteasoom productie en denaturerende PAGE is uitgegroeid tot een krachtige aanpak in dissecting proteasoom montage 9,11,12,18. De gebruikelijke wijze waarop deze benadering wordt toegepast (bijv. Via de co-expressie van recombinant α en β-subeenheden) een belangrijk nadeel. Vergadering reacties zijn coöperatieve en sterk afhankelijk van de concentratie 3. Aangezien de eiwitconcentratie in cellen is zeer hoog 19 vanwege uitgesloten volume-effecten, assemblage reacties verlopen in vivo snel. Daarom is het mogelijk om belangrijke assemblage tussenproducten missen als α en β subeenheden co-expressie gebracht.

Hier, we pleiten voor een gecombineerde aanpak in het onderzoek naar proteasoomafhankelijke assemblage het gebruik van recombinante Archaea proteasoom subunits. In deze benadering worden zowel co-expressie en lysaat mengmethoden gebruikt. De voormalige zorgt voor een snelle analyse van de montage, omdat co-expressie is minder arbeidsintensief. De laatste is afhankelijk van afzonderlijke expressie van α en β-subeenheden, gevolgd door mengen. Hoewel dit requires met enige moeite dan co-expressie is meer dan gecompenseerd door de mogelijkheid om tussenproducten die worden gemist tijdens co-expressie te detecteren. Samen kunnen deze twee methoden een vollediger beeld proteasoomafhankelijke samenstel.

Protocol

1. Bacteriële expressie. Noot: Expressieplasmiden die in deze studie worden in Tabel 1. Oplossingen, media en buffers die in deze studie worden in Tabel 2. Het klonen van Archaea proteasoom subunit genen en het genereren van expressieplasmiden worden elders beschreven 18,20. Kortom, voor recombinante plasmiden co-expressie van subeenheden gebruik van een bicistronisch operon strategie die helpt bij het verkrijgen van vergelijkbare …

Representative Results

Proteasoom samenstel (figuur 1) begint als a-subeenheden vormen samen ringen 9. Dit kan worden geïllustreerd als a-subeenheden van de archaeon Methanococcus maripaludis S2 zijn uitgedrukt in E. coli als C-terminaal hexahistidine tag (his-gemerkte) derivaten (Tabel 1). Wanneer het recombinant α-eiwit zijn gezuiverd door ICAR en geanalyseerd door denaturerende PAGE, werden twee banden waargenomen (Figuur 2A, laan 1). We hebben eerder aangeto…

Discussion

We tonen het voordeel van een gecombineerde aanpak van het analyseren van proteasoom montage door denaturerende PAGE met behulp van recombinant Archaea proteasomen. De gebruikelijke methode 9,11 van bacteriële co-expressie van proteasoom subunits zorgt voor een snelle analyse, maar kan niet onthullen sleutel assemblage tussenproducten. We raden het combineren van co-expressie met lysaat mengen tot een breder beeld van de montage evenementen te ontwikkelen.

Het voordeel van deze g…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund in het kader van een onderzoek fondsen ter ondersteuning van Grant (RSFG) van de Universiteit van Indiana-Purdue University, Indianapolis, en deels door een onderscheiding van de American Heart Association 14GRNT20390154, om ARK

Materials

Acrylamide (40%) solution Biorad 1610104 Unpolymerized acrylamide is a neurotoxin. Wear proper protective equipment
Amicon ultra 0.5ml centrifugal filters EMDMillipore UFC501024
Ammonium persulfate Sigma A3678
ATP Sigma A7699
BCA assay kit Pierce 23225
Bisacrylamide (2%) solution Biorad 1610142
Bromophenol blue Sigma B8026
DNaseI Sigma DN25
Dithiothreitol (DTT) Thermo Fisher BP172
E.coli BL21 competent cells EMD Millipore 69450
GelCode Blue Thermo Fisher 24592 Colloidal coomassie stain reagent for gels
Gel doc EZ system Biorad 1708270 Gel documentation system
Gel releasers Biorad 1653320 Wedge shaped plastic used to separate gel plates; useful for spreading liquid.
Glass rod Thermo Fisher 11-380B
Glycerol Sigma 49767
Glycine Thermo Fisher BP3865
Hamilton syringe Thermo Fisher 14-813-38 Glass syringe for loading gels
HEPES US Biologicals H2010
HMW Native calibration kit GE Healthcare 170445-01 High molecular weight protein standards
Hoefer SG30 Thermo Fisher 03-500-277 Gradient maker
Imidazole US Biologicals 280671
IPTG US Biologicals I8500 For induction of protein expression
Isopropanol Thermo Fisher BP26181
Kanamycin sulfate US Biologicals K0010
Lysozyme Sigma L6876
MgCl2 Fluka analytical 630680
Mini Protean Tetra Cell Biorad 1658002EDU Gel electrophoresis apparatus
NaCl Thermo Fisher S640-3
NaOH Thermo Fisher S318-1
Pefabloc SC Roche 11429876001 Protease inhibitor
pET42 EMD Millipore 70562 Expression plasmid
Precision plus all blue standard Biorad 1610373 Molecular protein standard for SDS-PAGE
Quickchange mutagenesis kit Agilent technologies 200521
Sodium dodecyl sulfate (SDS) Thermo Fisher BP166
Suc-LLVY-AMC Enzo lifesciences BML P802-0005 Fluorogenic substrate
Talon Metal Affinity Resin Clontech 635502 Immobilized-cobalt affinity resin
TEMED Sigma T7024
Tris US Biologicals T8600
Triton-X100 Sigma 93426
Tryptone Bacto BD 211699
UV sample tray Biorad 1708271 For UV imaging of gels
Yeast extract Bacto BD 212720

References

  1. Wan, C., et al. Panorama of ancient metazoan macromolecular complexes. Nature. 525, 339-344 (2015).
  2. Marsh, J. A., Teichmann, S. A. Structure, dynamics, assembly, and evolution of protein complexes. Annu Rev Biochem. 84, 551-575 (2015).
  3. Williamson, J. R. Cooperativity in macromolecular assembly. Nat Chem Biol. 4, 458-465 (2008).
  4. Finley, D., Ulrich, H. D., Sommer, T., Kaiser, P. The ubiquitin-proteasome system of Saccharomyces cerevisiae. Genetics. 192, 319-360 (2012).
  5. Groll, M., et al. Structure of 20S proteasome from yeast at 2.4 A resolution. Nature. 386, 463-471 (1997).
  6. Lander, G. C., et al. Complete subunit architecture of the proteasome regulatory particle. Nature. 482, 186-191 (2012).
  7. Lowe, J., et al. Crystal structure of the 20S proteasome from the archaeon T. acidophilum at 3.4 A resolution. Science. 268, 533-539 (1995).
  8. Hu, G., et al. Structure of the Mycobacterium tuberculosis proteasome and mechanism of inhibition by a peptidyl boronate. Mol Microbiol. 59, 1417-1428 (2006).
  9. Zwickl, P., Kleinz, J., Baumeister, W. Critical elements in proteasome assembly. Nat Struct Biol. 1, 765-770 (1994).
  10. Groll, M., Brandstetter, H., Bartunik, H., Bourenkow, G., Huber, R. Investigations on the maturation and regulation of archaebacterial proteasomes. J Mol Biol. 327, 75-83 (2003).
  11. Frankenberg, R. J., Hsu, T. S., Yakota, H., Kim, R., Clark, D. S. Chemical denaturation and elevated folding temperatures are required for wild-type activity and stability of recombinant Methanococcus jannaschii 20S proteasome. Protein Sci. 10, 1887-1896 (2001).
  12. Maupin-Furlow, J. A., Aldrich, H. C., Ferry, J. G. Biochemical characterization of the 20S proteasome from the methanoarchaeon Methanosarcina thermophila. J Bacteriol. 180, 1480-1487 (1998).
  13. Maupin-Furlow, J. A., Ferry, J. G. A proteasome from the methanogenic archaeon Methanosarcina thermophila. J Biol Chem. 270, 28617-28622 (1995).
  14. Wittig, I., Braun, H. P., Schagger, H. Blue native PAGE. Nat Protoc. 1, 418-428 (2006).
  15. Langer, T., Pfeifer, G., Martin, J., Baumeister, W., Hartl, F. U. Chaperonin-mediated protein folding: GroES binds to one end of the GroEL cylinder, which accommodates the protein substrate within its central cavity. EMBO J. 11, 4757-4765 (1992).
  16. McKenzie, M., Lazarou, M., Thorburn, D. R., Ryan, M. T. Analysis of mitochondrial subunit assembly into respiratory chain complexes using Blue Native polyacrylamide gel electrophoresis. Anal Biochem. 364, 128-137 (2007).
  17. Tomko, R. J., Hochstrasser, M. Incorporation of the Rpn12 subunit couples completion of proteasome regulatory particle lid assembly to lid-base joining. Mol Cell. 44, 907-917 (2011).
  18. Panfair, D., Ramamurthy, A., Kusmierczyk, A. R. Alpha-ring Independent Assembly of the 20S Proteasome. Sci Rep. 5, 13130 (2015).
  19. Zimmerman, S. B., Trach, S. O. Estimation of macromolecule concentrations and excluded volume effects for the cytoplasm of Escherichia coli. J Mol Biol. 222, 599-620 (1991).
  20. Kusmierczyk, A. R., Kunjappu, M. J., Kim, R. Y., Hochstrasser, M. A conserved 20S proteasome assembly factor requires a C-terminal HbYX motif for proteasomal precursor binding. Nat Struct Mol Biol. 18, 622-629 (2011).
  21. Smith, P. K., et al. Measurement of protein using bicinchoninic acid. Anal Biochem. 150, 76-85 (1985).
  22. Laemmli, U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227, 680-685 (1970).
  23. Chen, P., Hochstrasser, M. Autocatalytic subunit processing couples active site formation in the 20S proteasome to completion of assembly. Cell. 86, 961-972 (1996).
  24. Li, X., Kusmierczyk, A. R., Wong, P., Emili, A., Hochstrasser, M. beta-Subunit appendages promote 20S proteasome assembly by overcoming an Ump1-dependent checkpoint. EMBO J. 26, 2339-2349 (2007).
  25. Kusmierczyk, A. R., Kunjappu, M. J., Funakoshi, M., Hochstrasser, M. A multimeric assembly factor controls the formation of alternative 20S proteasomes. Nat Struct Mol Biol. 15, 237-244 (2008).

Play Video

Cite This Article
Panfair, D., Kusmierczyk, A. R. Examining Proteasome Assembly with Recombinant Archaeal Proteasomes and Nondenaturing PAGE: The Case for a Combined Approach. J. Vis. Exp. (118), e54860, doi:10.3791/54860 (2016).

View Video