Summary

دراسة الجمعية proteasome ومع المؤتلف Archaeal جسيم بروتيني وNondenaturing الصفحة: حالة لنهج موحد

Published: December 17, 2016
doi:

Summary

يستخدم هذا البروتوكول كل من coexpression الوحيدات وحدة فرعية postlysis خلط لإجراء فحص أكثر دقة التجمع proteasome والمؤتلف.

Abstract

تم العثور على جسيم بروتيني في جميع مجالات الحياة. أنها توفر الطريق الرئيسي لتدهور البروتين داخل الخلايا في حقيقيات النوى، ولكن ليس من المفهوم جمعيتهم تماما. كل جسيم بروتيني تحتوي على الجسيمات محفوظ الهيكلية الأساسية (CP)، أو 20S proteasome و، تحتوي على اثنين heptameric حلقات فرعية β تقع بين اثنين من حلقات α فرعية heptameric. Archaeal 20S جسيم بروتيني أبسط إنشائي مقارنة مع نظرائهم حقيقية النواة، ولكن كلا منهما متشاركين في آلية تجميع المشتركة. وبالتالي، فإن archaeal 20S جسيم بروتيني لتكون نماذج هامة لتجميع proteasome وحقيقية النواة. على وجه التحديد، قد حقق التعبير المؤتلف من 20S archaeal جسيم بروتيني جانب nondenaturing هلام بولي أكريلاميد الكهربائي (PAGE) العديد من الأفكار الهامة في نشوء حيوي proteasome و. هنا، نحن نناقش وسيلة لتحسين بناء على استراتيجية المعتادة من coexpression من α proteasome وarchaeal وبيتا مفارز قبل nondenaturiنانوغرام PAGE. علينا أن نبرهن على الرغم من سرعة وكفاءة، واتباع نهج coexpression وحده يستطيع ان يشتاق سيطة التجمع الرئيسية. في حالة proteasome و، coexpression قد لا تسمح الكشف عن نصف proteasome و، والمتوسطة التي تحتوي كاملة α-حلقة واحدة وكاملة β-حلقة واحدة. ومع ذلك، تم الكشف عن هذا المتوسط ​​بسهولة عبر المحللة الاختلاط. نقترح أن الجمع بين coexpression مع المحللة خلط ينتج نهج أكثر شمولا في تحليل التجمع، ومع ذلك لا تزال nonintensive العمل. قد يكون هذا النهج مفيدا لدراسة المجمعات multiprotein المؤتلف أخرى.

Introduction

المجمعات Multiprotein تنفذ العديد من الأنشطة الخلوية الحيوية 1. بالنسبة لكثير من هذه المجمعات، يعرف الكثير عن هيكل وظيفة من حول جمعيتهم 2،3. وproteasome وهو واحد من هذا القبيل معقدة ويوجد في جميع مجالات الحياة. في حقيقيات النوى، وهذا الجهاز الجزيئية هي في صميم النظام proteasome و/ اليوبيكويتين (يو بي إس)، ويوفر الطريق الرئيسي لتدهور البروتين داخل الخلايا 4. وتتألف proteasome وحقيقيات النوى (ويشار إلى أن proteasome و26S) اثنين من المجالس الفرعية رئيسيين: proteasome و20S، أو كور الجسيمات (CP) والتي يمكن أن توج على واحد أو كلا الطرفين من الجسيمات التنظيمي 19S (RP) 6.

وproteasome و20S هو الأنزيم البروتيني مجزأة كبير. ويحفظ لها هيكل رباعي على الاطلاق في جميع مجالات الحياة، ويتألف من كومة من أربع حلقات سبعة membered تحتوي على نوعين من الوحدات الفرعية المرتبطة هيكليا، α. وبيتا 5،7،8. في حقيقيات النوى، وتتألف اثنين من حلقات الخارجي لكل من سبع مفارز α متميزة واثنين من الحلقات الداخلية وتضم كل من سبع مفارز β متميزة. يقيم نشاط بروتين في غضون ثلاث مفارز β. على النقيض من ذلك، حلقات CP من العتيقة والبكتيريا وتتألف عادة من نوع واحد فقط من α ونوع واحد من الوحيدات بيتا. وقد وفرت جسيم بروتيني Archaeal نظام نموذجا هاما لدراسة التجمع proteasome وعلى حد سواء بسبب بساطتها التركيبية وعلى تقاسم آلية تجميع مشتركة مع نظرائهم حقيقية النواة من 9-13. وباختصار، مفارز ألفا التجمع في حلقات α أولا، التي تكون بمثابة سقالة على الذي بيتا مفارز تجميع. الناتج-جسيم بروتيني نصف (α 7 β 7) dimerize، مما أدى إلى تجميعها بشكل كامل CP (α 7 β 7 β 7 α 7). خلال dimerization، وpropeptides تقديم على مفارز بيتاتتم إزالة autocatalytically، وفضح threonines N-محطة الحفاز. استخدام جسيم بروتيني archaeal لنموذج التجمع في كثير من الأحيان يستفيد من إنتاج المؤتلف بروتينات proteasome وarchaeal في القولونية. هذا هو نهج جدير بالاهتمام لأنه تمكن مفارز إلى أن يتم إنتاجها في توليفات مختلفة، على حد سواء WT والإصدارات متحولة، في كائن المضيف الذي لا ينتج جسيم بروتيني الخاصة بها.

رصد التجمع من المجمعات متعددة البروتين يتطلب كيميائيا نوع من طريقة تجزئة الذي يفصل بين المجمعات تجميعها بشكل كامل من وسيطة التجمع والسلائف. وقد ثبت نظرا لقدرتها الفائقة حل، nondenaturing إس دي إس بايج (PAGE) لتكون مفيدة بشكل خاص في تجزئة من مختلف المجمعات multiprotein كبيرة 14-17. أصبح الجمع بين المؤتلف إنتاج proteasome وarchaeal و PAGE nondenaturing طريقة فعالة في dissectinز proteasome والتجمع 9،11،12،18. ومع ذلك، فإن الطريقة المعتادة التي يتم تطبيق هذا النهج (أي عن طريق coexpression المؤتلف من α و β مفارز) لديه عيب المهم. ردود الفعل الجمعية هي التعاونية وبقوة 3-يعتمد التركيز. وبالنظر إلى أن تركيز البروتين داخل الخلايا عالية جدا 19، وذلك بسبب الآثار حجم المستبعدة، ردود فعل التجمع المضي قدما بسرعة في الجسم الحي. وبالتالي فإنه من الممكن أن يغيب سيطة التجمع المهمة عندما يتم coexpressed α و β مفارز.

هنا، فإننا نقول للنهج المشترك في الدراسة التجمع proteasome وباستخدام المؤتلف مفارز proteasome وarchaeal. في هذا النهج، والعاملين على حد سواء أساليب خلط coexpression والمحللة. يسمح السابق للتحليل السريع للتجميع بسبب coexpression أقل كثافة اليد العاملة. هذا الأخير يعتمد على التعبير منفصل من α و β مفارز، تليها خلط. على الرغم من هذا requiالدقة أكثر قليلا من الجهد من coexpression، هو أكثر من كاف للتعويض عن القدرة على الكشف عن وسيطة التي غاب خلال coexpression. معا، يمكن أن هاتين الطريقتين توفير صورة أكثر اكتمالا التجمع proteasome و.

Protocol

1. التعبير الجرثومي. وصفت البلازميدات التعبير المستخدمة في هذه الدراسة في الجدول رقم 1: ملاحظة. ووصف الحلول، وسائل الإعلام، والمخازن المستخدمة في هذه الدراسة في الجدول 2. ووصف استنساخ الجينات prot…

Representative Results

يبدأ proteasome والتجمع (الشكل 1) عند الجمع بين مفارز ألفا إلى حلقات شكل 9. ويمكن توضيح ذلك عندما يتم التعبير ألفا مفارز من archaeon المكورة الميثانية maripaludis S2 في كولاي كما C-عضال hexahistidine الموسومة (له الموسومة) المشتقات (الجدول 1). عندما تمت تنقية ?…

Discussion

علينا أن نبرهن صالح نهج موحد لتحليل التجمع proteasome والتي nondenaturing PAGE باستخدام جسيم بروتيني archaeal المؤتلف. على 9،11 الأسلوب المعتاد لcoexpression البكتيرية مفارز proteasome ويسمح للتحليل السريع ولكن قد لا تكشف عن وسيطة التجمع الرئيسية. نقترح الجمع بين coexpression مع المحللة خلط لتط?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل في جزء من دعم البحوث أموال المنحة (RSFG) من جامعة إنديانا جامعة-بوردو، انديانابوليس، والجزء الآخر من جائزة من جمعية القلب الأمريكية 14GRNT20390154، إلى ARK

Materials

Acrylamide (40%) solution Biorad 1610104 Unpolymerized acrylamide is a neurotoxin. Wear proper protective equipment
Amicon ultra 0.5ml centrifugal filters EMDMillipore UFC501024
Ammonium persulfate Sigma A3678
ATP Sigma A7699
BCA assay kit Pierce 23225
Bisacrylamide (2%) solution Biorad 1610142
Bromophenol blue Sigma B8026
DNaseI Sigma DN25
Dithiothreitol (DTT) Thermo Fisher BP172
E.coli BL21 competent cells EMD Millipore 69450
GelCode Blue Thermo Fisher 24592 Colloidal coomassie stain reagent for gels
Gel doc EZ system Biorad 1708270 Gel documentation system
Gel releasers Biorad 1653320 Wedge shaped plastic used to separate gel plates; useful for spreading liquid.
Glass rod Thermo Fisher 11-380B
Glycerol Sigma 49767
Glycine Thermo Fisher BP3865
Hamilton syringe Thermo Fisher 14-813-38 Glass syringe for loading gels
HEPES US Biologicals H2010
HMW Native calibration kit GE Healthcare 170445-01 High molecular weight protein standards
Hoefer SG30 Thermo Fisher 03-500-277 Gradient maker
Imidazole US Biologicals 280671
IPTG US Biologicals I8500 For induction of protein expression
Isopropanol Thermo Fisher BP26181
Kanamycin sulfate US Biologicals K0010
Lysozyme Sigma L6876
MgCl2 Fluka analytical 630680
Mini Protean Tetra Cell Biorad 1658002EDU Gel electrophoresis apparatus
NaCl Thermo Fisher S640-3
NaOH Thermo Fisher S318-1
Pefabloc SC Roche 11429876001 Protease inhibitor
pET42 EMD Millipore 70562 Expression plasmid
Precision plus all blue standard Biorad 1610373 Molecular protein standard for SDS-PAGE
Quickchange mutagenesis kit Agilent technologies 200521
Sodium dodecyl sulfate (SDS) Thermo Fisher BP166
Suc-LLVY-AMC Enzo lifesciences BML P802-0005 Fluorogenic substrate
Talon Metal Affinity Resin Clontech 635502 Immobilized-cobalt affinity resin
TEMED Sigma T7024
Tris US Biologicals T8600
Triton-X100 Sigma 93426
Tryptone Bacto BD 211699
UV sample tray Biorad 1708271 For UV imaging of gels
Yeast extract Bacto BD 212720

References

  1. Wan, C., et al. Panorama of ancient metazoan macromolecular complexes. Nature. 525, 339-344 (2015).
  2. Marsh, J. A., Teichmann, S. A. Structure, dynamics, assembly, and evolution of protein complexes. Annu Rev Biochem. 84, 551-575 (2015).
  3. Williamson, J. R. Cooperativity in macromolecular assembly. Nat Chem Biol. 4, 458-465 (2008).
  4. Finley, D., Ulrich, H. D., Sommer, T., Kaiser, P. The ubiquitin-proteasome system of Saccharomyces cerevisiae. Genetics. 192, 319-360 (2012).
  5. Groll, M., et al. Structure of 20S proteasome from yeast at 2.4 A resolution. Nature. 386, 463-471 (1997).
  6. Lander, G. C., et al. Complete subunit architecture of the proteasome regulatory particle. Nature. 482, 186-191 (2012).
  7. Lowe, J., et al. Crystal structure of the 20S proteasome from the archaeon T. acidophilum at 3.4 A resolution. Science. 268, 533-539 (1995).
  8. Hu, G., et al. Structure of the Mycobacterium tuberculosis proteasome and mechanism of inhibition by a peptidyl boronate. Mol Microbiol. 59, 1417-1428 (2006).
  9. Zwickl, P., Kleinz, J., Baumeister, W. Critical elements in proteasome assembly. Nat Struct Biol. 1, 765-770 (1994).
  10. Groll, M., Brandstetter, H., Bartunik, H., Bourenkow, G., Huber, R. Investigations on the maturation and regulation of archaebacterial proteasomes. J Mol Biol. 327, 75-83 (2003).
  11. Frankenberg, R. J., Hsu, T. S., Yakota, H., Kim, R., Clark, D. S. Chemical denaturation and elevated folding temperatures are required for wild-type activity and stability of recombinant Methanococcus jannaschii 20S proteasome. Protein Sci. 10, 1887-1896 (2001).
  12. Maupin-Furlow, J. A., Aldrich, H. C., Ferry, J. G. Biochemical characterization of the 20S proteasome from the methanoarchaeon Methanosarcina thermophila. J Bacteriol. 180, 1480-1487 (1998).
  13. Maupin-Furlow, J. A., Ferry, J. G. A proteasome from the methanogenic archaeon Methanosarcina thermophila. J Biol Chem. 270, 28617-28622 (1995).
  14. Wittig, I., Braun, H. P., Schagger, H. Blue native PAGE. Nat Protoc. 1, 418-428 (2006).
  15. Langer, T., Pfeifer, G., Martin, J., Baumeister, W., Hartl, F. U. Chaperonin-mediated protein folding: GroES binds to one end of the GroEL cylinder, which accommodates the protein substrate within its central cavity. EMBO J. 11, 4757-4765 (1992).
  16. McKenzie, M., Lazarou, M., Thorburn, D. R., Ryan, M. T. Analysis of mitochondrial subunit assembly into respiratory chain complexes using Blue Native polyacrylamide gel electrophoresis. Anal Biochem. 364, 128-137 (2007).
  17. Tomko, R. J., Hochstrasser, M. Incorporation of the Rpn12 subunit couples completion of proteasome regulatory particle lid assembly to lid-base joining. Mol Cell. 44, 907-917 (2011).
  18. Panfair, D., Ramamurthy, A., Kusmierczyk, A. R. Alpha-ring Independent Assembly of the 20S Proteasome. Sci Rep. 5, 13130 (2015).
  19. Zimmerman, S. B., Trach, S. O. Estimation of macromolecule concentrations and excluded volume effects for the cytoplasm of Escherichia coli. J Mol Biol. 222, 599-620 (1991).
  20. Kusmierczyk, A. R., Kunjappu, M. J., Kim, R. Y., Hochstrasser, M. A conserved 20S proteasome assembly factor requires a C-terminal HbYX motif for proteasomal precursor binding. Nat Struct Mol Biol. 18, 622-629 (2011).
  21. Smith, P. K., et al. Measurement of protein using bicinchoninic acid. Anal Biochem. 150, 76-85 (1985).
  22. Laemmli, U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227, 680-685 (1970).
  23. Chen, P., Hochstrasser, M. Autocatalytic subunit processing couples active site formation in the 20S proteasome to completion of assembly. Cell. 86, 961-972 (1996).
  24. Li, X., Kusmierczyk, A. R., Wong, P., Emili, A., Hochstrasser, M. beta-Subunit appendages promote 20S proteasome assembly by overcoming an Ump1-dependent checkpoint. EMBO J. 26, 2339-2349 (2007).
  25. Kusmierczyk, A. R., Kunjappu, M. J., Funakoshi, M., Hochstrasser, M. A multimeric assembly factor controls the formation of alternative 20S proteasomes. Nat Struct Mol Biol. 15, 237-244 (2008).

Play Video

Cite This Article
Panfair, D., Kusmierczyk, A. R. Examining Proteasome Assembly with Recombinant Archaeal Proteasomes and Nondenaturing PAGE: The Case for a Combined Approach. J. Vis. Exp. (118), e54860, doi:10.3791/54860 (2016).

View Video