Summary

Assays für die Untersuchung der Rolle von Vitronectin in bakterielle Adhäsion und Serum-Widerstand

Published: October 16, 2018
doi:

Summary

Dieser Bericht beschreibt die Protokolle für die Charakterisierung von Interaktionen zwischen bakteriellen äußeren Membranproteine und menschliche Ergänzung Regler Vitronectin. Die Protokolle können verwendet werden, um die Bindung Reaktionen und die biologische Funktion von Vitronectin in alle Bakterienarten zu studieren.

Abstract

Bakterien nutzen Ergänzung Regulatoren als Mittel zur Umgehung der Host Immunantwort. Hier beschreiben wir Protokolle für die Bewertung des Rolle Vitronectin Erwerbs bei der bakteriellen Zelle Oberfläche spielt im Widerstand gegen das Immunsystem des Wirts. Flow Cytometry Experimente identifiziert Humanplasma Vitronectin als Liganden für die bakterielle Rezeptor Außenmembran Protein H von Haemophilus Influenzae Typ f. Ein Enzym-linked Immunosorbentprobe-Assay wurde eingesetzt, um die Protein-Protein-Wechselwirkungen zwischen gereinigtes rekombinante Protein H und Vitronectin zu charakterisieren, und verbindliche Affinität wurde anhand Bio-Schicht Interferometrie. Die biologische Bedeutung der Bindung von Vitronectin an Protein H an der bakteriellen Zellenoberfläche in Umgehung der Wirt Immune Antwort bestätigte mit einem Serum-Widerstand-Assay mit normal- und Vitronectin erschöpft Humanserum. Die Bedeutung der Vitronectin in der bakterielle Haftfähigkeit war mit Glas-Objektträger mit und ohne Vitronectin Beschichtung, gefolgt von gramfärbung analysiert. Zu guter Letzt wurde bakterielle Adhäsion zur menschlichen alveoläre Epithelzelle Monolagen untersucht. Die hier beschriebenen Protokolle können die Studie von einer bakteriellen Spezies von Interesse leicht angepasst.

Introduction

Vitronectin (Vn) ist eine wichtige menschliche Glykoprotein Homöostase per Verordnung das fibrinolytische System beteiligt. VL fungiert auch als Regulator Ergänzung durch Hemmung des terminal Ergänzung Weges während der C5b6-7 Komplexbildung und C9 Polymerisation. Verschiedene bakterielle Krankheitserreger haben gezeigt, VL an der Zelloberfläche als Mittel der widerstehenden Ergänzung Ablagerung1,2,3zu rekrutieren. Darüber hinaus fungiert VL wie ein “Sandwich” Molekül zwischen Bakterien und Host epithelialen Zell-Rezeptoren, dadurch Förderung festhalten und Internalisierung von Krankheitserregern2,4,5. Bindung des Vn an der bakteriellen Zellenoberfläche wird durch andere derzeit nicht identifizierte Proteine vermittelt. Voll die funktionale Rolle der Vn-Bindung in Umgehung der Schlauch Immunantwort Aufklärung erfordert daher Identifizierung von Proteinen, VL-recruiting.

Der erste Schritt bei der Ermittlung von Vn-bindende Proteine ist zu prüfen, ob ein Erreger von Interesse gereinigten VL. Durchflusszytometrie binden kann eine bequeme und einfache Methode um festzustellen, ob VL Erreger Zellen gebunden ist. In dieser Studie untersuchten wir die Bindung von Vn an verschiedenen Haemophilus Influenzae Typ f (Hif) klinischen Isolaten6. Die hier beschriebene Methode ist quantitativ und kann verwendet werden, um die Bindungskapazität einer Vielzahl von Bakterienstämmen zu unterscheiden. In einer früheren Studie gekennzeichnet wir Protein H (PH) der Hif als Vn-bindende Protein7. Daher in der vorliegenden Studie das Vn-Bindung-Potenzial der Wildtyp (WT) Hif und Hif M10ΔLph Mutanten wurden verglichen mit den beschriebenen Protokollen.

Sobald festgestellt wird, dass ein Erreger Vn bindet, ist der zweite Schritt, die Oberfläche Proteom zu charakterisieren, um potenzielle Vn-bindende Proteine zu identifizieren. Eine Vielzahl von Ansätzen eignet sich für diesen Zweck8,9, aber diese Methoden sind nicht in diesem Bericht beschrieben. Die Methode am besten geeignet für die Untersuchung von Protein-Protein-Wechselwirkungen ist rekombinant express ausgewählte bakterielle Oberflächenproteine in E. Coli und reinigen durch Affinitätschromatographie. Hier verwenden wir PH und seine molekularen Wechselwirkung mit VL um die Methode zu veranschaulichen. Wechselwirkungen zwischen rekombinante PH und VL zeichneten sich mit einem Enzym-linked Immunosorbentprobe Assay (ELISA)7 und eine neu entwickelte markierungsfreie Technik bekannt als Bio-Schicht Interferometrie (BLI)10,11. Während ELISAs verwendet werden können, um Protein-Protein-Wechselwirkungen zu bestätigen, bietet BLI detaillierte Daten über die kinetischen Parameter der Interaktionen.

Um die funktionale Rolle der Vn in der bakterielle Haftfähigkeit zu studieren, können zwei verschiedene Tests genutzt werden. Der erste Test hier beschriebenen ist direkte Messung der bakteriellen Einhaltung der Vn-beschichtete Glasoberflächen, während der zweite Test festhalten an der Oberfläche der Epithelzellen untersucht. Für den ersten Test Glas-Objektträger wurden mit VL beschichtet, und die Bindung von WT oder mutierten Hif Stämme wurde durch gramfärbung und Mikroskopie beurteilt. Diese Technik unterscheidet leicht Bakterien basiert auf der Fähigkeit, VL12binden. Bakterielle Adhäsion für Säugerzellen war dann analysiert, durch Zugabe von kultivierten Bakterien auf einem monomolekularen Film der Typ II alveolären Epithelzellen; bakterielle Anlage wurde beurteilt durch zählen der Anzahl der koloniebildenden Einheiten (KBE). Eingehalten und internalisierte Bakterien können in das Vorhandensein oder Fehlen von VL4,13unterschieden werden.

Die Rolle der Vn-Akquisition im bakteriellen Serum Widerstand wurde mit einem Serum Tötung Assay (d.h. Serum bakterizide Aktivität) ausgewertet. Um die Bedeutung der Vn-Akquisition im Serum Widerstand zu beurteilen, wurde die bakterizide Aktivität von Vn-abgereicherte Serum (VDS) mit der normalen menschlichen Serum (NHS) verglichen. Die Methode leicht unterscheidet Vn-Bindung im Vergleich zu nicht-bindenden Bakterien anhand Serum Widerstand. Wir haben diese Methode zur Untersuchung der Rolle der Vn im Serum Widerstand von einigen bakteriellen Krankheitserregern4,12verwendet.

Zahlreiche Methoden wurden für die Untersuchung von Wirt-Pathogen Interaktionen beschrieben. Hier beschreiben wir eine Reihe von Protokollen, die für die Untersuchung von jeder Erreger leicht angepasst werden kann, um die Rolle der Vn in der Pathogenese zu bewerten. Wir testeten diese Protokolle mit verschiedenen Krankheitserregern und Hif wurde gewählt als Beispiel für diesen Bericht.

Protocol

1. Analyse der Vn als eine bakterielle Oberfläche Protein-Ligand Erkennung von Vn-Bindung an der bakteriellen Oberfläche mit DurchflusszytometrieHinweis: In der Durchflusszytometrie verwendeten wir Side Scatter und forward Scatter um positive Ereignisse Tor. Untersuchen die Wechselwirkungen mit Vn Hif klinische Isolate (n = 10)7 ausgewählt wurden, zusammen mit E. Coli BL21 (DE3) als Negativkontrolle (Abb. 1A…

Representative Results

VN-Bindung an der Oberfläche der Bakterien wurde durch Durchflusszytometrie bestimmt. Alle klinische Isolaten in dieser Studie getestet Hif rekrutiert Vn an der Zelloberfläche. Keine Interaktion des Vn mit der Zelloberfläche wurde für die E. Coli Negativkontrolle Belastung (Abb. 1A) beobachtet. Wie in Abbildung 1B, ist PH eine große VL-bindendes Protein auf der Oberfläche des Hif Z…

Discussion

Bakterielle Krankheitserreger rekrutieren Vn an der Zelloberfläche und Ergänzung der Regler zur Verhinderung der Ablagerung von Komplementfaktoren und Fertigstellung der Membrane Angriff Komplex2zu nutzen. VL fungiert auch als eine Brücke Molekül zwischen bakteriellen Oberflächenproteine und Host-Zell-Oberfläche Rezeptoren, so dass Krankheitserreger an der Oberfläche der Epithelzellen haften und anschließend vermitteln Verinnerlichung. In dieser Studie beschreiben wir Protokolle, die verwe…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Arbeit wurde unterstützt durch Zuschüsse der Stiftung Anna und Edwin Berger, Lars Hierta, O.E und Edla Johansson Stiftung, dem schwedischen Medical Research Council (gewähren Nummer K2015-57 X-03163-43-4, www.vr.se), der Krebs-Stiftung an der Universität Krankenhaus in Malmö, die Physiographische Gesellschaft (Forssman Stiftung) und Skåne County Council Research and Development Foundation.

Materials

1.5 mL thermomixter Eppendorf 5355 dry block heating and cooling shaker
5 mL polystyrene round-bottom tube  BD Falcon 60819-138 12 × 75 mm style
5% CO2 supplied incubator  Thermo Scientific  BBD6220
6 mL polystyrene round-bottom tube  VWR 89000-478 12 × 75 mm style with cap
24-well plates BD Falcon 08-772-1H Cell culture grade
30% Hydrogen peroxide (H2O2) solution Sigma-Aldrich H1009-100ML Laboratory analysis grade
75 cm2 tissue culture flask BD Falcon BD353136 Vented
96 well black flat bottom plate Greiner Bio-One 655090 Tissue culture treated µClear black plates
A549 Cell Line human Sigma-Aldrich 86012804-1VL
Cell detachment enzyme (Accutase)  Sigma-Aldrich A6964-500ML Cell Culture Grade
AR2G sensors Pall Life Science 18-5095 Sensor to immobilized protein by amino coupling 
Acetone VWR 97064-786 Analysis grade
Bovine Serum Albumins (BSA) Sigma-Aldrich A2058 Suitable for cell culture
Bibulous paper  VWR 28511-007
Bio-layer interferometer Pall Life Science FB-50258 Bilayer interferometry measuring equipment
Crystal violet solution Sigma-Aldrich HT90132-1L
C4BP (C4b binding protein) Complement Technology, Inc. A109 Bought as Frozen liquid form
Calcium chloride (CaCl2) Sigma-Aldrich C5670-500G
Carbol-fuchsin solution Sigma-Aldrich HT8018-250ML
Citric acid Sigma-Aldrich 251275-500G American Chemical Society (ACS) grade
Decolorizing solution Sigma-Aldrich 75482-250ML-F
E. coli host (E. Coli BL21) Novagen 69450-3 Protein expression host
F12 medium Sigma-Aldrich D6421 Cell Culture Grade
Flow cytometer  BD Biosciences 651154 Cell analysis grade for research applications 
Fetal Calf Serum (FCS) Sigma-Aldrich 12003C Suitable for cell culture
Normal human serum (NHS) Complement Technology, Inc. NHS Pooled human serum
FITC-conjugated donkey anti-sheep antibodies  AbD Serotec STAR88F Polyclonal
Gentamicin Sigma-Aldrich G1397 Cell culture grade
Glucose Sigma-Aldrich G8270-1KG
Gelatin Sigma-Aldrich G9391 Suitable for cell culture
Hemocytometer Marienfeld 640210
HRP-conjugated anti-His tag antibodies Abcam ab1269 Polyclonal
Human factor H Complement Technology, Inc. A137 Bought as Frozen liquid form
C4BP Complement Technology, Inc. A109 Frozen solution
Human serum albumin Sigma-Aldrich A1653-10G lyophilized powder
Histidine affinity resin column (HisTrap HP) GE Health Care Life Science 17-5247-01 Columns prepacked with Ni Sepharose
His-tagged PH Recombinantly expressed and purified in our lab
Iodine solution Sigma-Aldrich HT902-8FOZ
Methanol VWR BDH1135-1LP Analysis grade
 Microscope Olympus IX73 Inverted microscope
Microscope slides Sigma-Aldrich S8902 plain, size 25 mm × 75 mm 
Magnesium chloride (MgCl2) Sigma-Aldrich M8266-1KG
Plasmid containg C terminal 6x His-tag on the backbone (pET26(b)) Novagen 69862-3 DNA vector
Polysorb microtitre plates  Sigma-Aldrich M9410 For ELISA
Potassium hydroxide (KOH) Sigma-Aldrich 6009 American Chemical Society (ACS) grade
Sheep anti-human Vn antibodies AbD Serotec AHP396 Polyclonal
Shaker  Stuart Scientific STR6 Platform shaker
Tissue culture flask BD Falcon 3175167 75 cm2
 Thermomixer  Sigma-Aldrich T3317 Dry block heating and cooling shaker
Tetramethylbenzidine Sigma-Aldrich 860336-100MG ELISA grade
Vitronectin (Vn) from human plasma Sigma-Aldrich V8379-50UG cell culture grade

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Cite This Article
Singh, B., Mostajeran, M., Su, Y., Al-Jubair, T., Riesbeck, K. Assays for Studying the Role of Vitronectin in Bacterial Adhesion and Serum Resistance. J. Vis. Exp. (140), e54653, doi:10.3791/54653 (2018).

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