The recellularized extracellular matrix of a decellularized rat liver can be used as a humanized, three-dimensional ex vivo model to study the distribution and transgene expression of a virus or viral vector.
Questo protocollo descrive la generazione di un tridimensionale (3D) ex vivo modello fegato e la sua applicazione allo studio e sviluppo di sistemi di vettori virali. Il modello è ottenuto ripopolamento matrice extracellulare di fegato di ratto decellularized con una linea cellulare di epatociti umani. Il modello consente di studi in un sistema di celle 3D vascolarizzato, in sostituzione di esperimenti potenzialmente dannose con gli animali viventi. Un altro vantaggio è la natura umanizzata del modello, che è più vicino alla fisiologia umana rispetto ai modelli animali.
In questo studio, dimostriamo la trasduzione di questo modello fegato con un vettore virale derivato da virus adeno-associato (AAV vector). Il circuito di perfusione che fornisce il modello di fegato 3D con i media fornisce un facile mezzo per applicare il vettore. Il sistema consente il monitoraggio dei principali parametri metabolici del fegato. Per ultima analisi, campioni di tessuto possono essere adottate per determinare il grado di recellularizazione mediante tecniche istologiche. Distribuzione del vettore del virus e l'espressione del transgene consegnato può essere analizzato mediante PCR quantitativa (qPCR), Western blotting ed immunoistochimica. Numerose applicazioni del modello vettore nella ricerca di base e nello sviluppo di applicazioni terapeutiche gene può essere immaginato, compreso lo sviluppo di nuove terapie antivirali, ricerca sul cancro, e lo studio di vettori virali e loro potenziali effetti collaterali.
Most current biomedical research relies on one of two approaches, either two-dimensional (2D) cell culture experiments or animal models, which are three-dimensional (3D) by their very nature. However, these approaches have some severe drawbacks. Cells grown in 2D culture have been shown to differ in gene expression patterns and cell physiology from those cultivated under 3D conditions.1 Animal models, in addition to being associated with ethical concerns, often do not model human physiology well. Although the lack of obvious toxic effects of a compound must be confirmed in animal models prior to the first dosing in humans, multiple cases have been documented in which severe, sometimes fatal, adverse effects have occurred in clinical trials.2
To overcome these shortcomings, humanized 3D ex vivo organ models have become important research tools. When cultivated under suitable conditions, cells self-assemble into 3D structures known as spheroids. However, these spheroids lack a vascular system, which limits the distribution of small molecular compounds, large biologics and viral vectors alike. For example, adenoviral vectors only transduced the outer cell layers of spheroids prepared from human glioblastomas.3 A solution to this problem is the use of an organ model containing a vascular system. To this end, the organ of interest can be explanted from an animal, and the animal cells can be replaced by human cells. Various methods for decellularization of animal livers by treatment with detergents or sodium cholate have been described.4-6 The resulting extracellular matrix (ECM) harbors cytokines and growth factors which regulate various cellular processes.7 It can be used as a scaffold for recellularization with human cells to obtain a functional organ model.
In a recent study, we used a humanized 3D liver model to study distribution and transgene expression of an adeno-associated virus (AAV) vector.8 AAV vectors belong to the most promising viral vectors for gene therapeutic applications.9 The first, and to date only, approved gene therapeutic intervention in the Western world uses an AAV vector for the transfer of lipoprotein lipase.10
I fegati 3D ricostituiti qui descritte forniscono un modello per studiare vettori virali in un sistema umanizzato. Ripopolamento della ECM di un fegato di ratto con una linea cellulare di carcinoma epatocellulare umano genera un sistema vascolarizzato che consente lo studio di grandi biologici. Questi risultati forniscono una prova di concetto che il modello fegato ricostituita può essere trasdotto in modo efficiente con un vettore virale.
Per gli esperimenti qui riportati, ogni lobo del fegato è stato trasdotto dal vettore AAV. Tuttavia, in alcuni esperimenti preliminari, singoli lobi non sono stati ripopolati con cellule. È quindi importante impedire detriti cellulari o altri componenti da occludere il sistema vascolare. Per verificare se tutti i lobi possono essere perfusi, un colorante non tossico come rosso fenolo può essere lavata attraverso il modello fegato.
Un'altra questione fondamentale è mantenere l'impalcatura del fegato sterile. Mentre il trattamento con etanolo o antibiotici è disadvantageous per il sistema vascolare, l'irradiazione della matrice extracellulare con γ-radiazioni conservato i vasi e sterilizzato il campione.
Inoltre, la dimensione di fegati espiantati sarà diverso, in modo che il numero di cellule utilizzate per la procedura Recellularization e il tempo ripopolamento può essere regolato per ottenere risultati riproducibili.
I fegati di ratto utilizzate nel presente studio sono relativamente grandi e richiedono grandi quantità di cellule e reagenti (ad esempio, vettori AAV). Inoltre, la procedura di ripopolamento impiegato più di due settimane. Ciò limita il numero di repliche che può essere fatto con uno sforzo ragionevole. Attualmente stiamo stabilendo il modello per il fegato di topo, che sono solo circa un quinto del volume di fegato di ratto, che consente l'uso di un minor numero di cellule e meno reagenti. Anche se proporzionale scala verso il basso del numero di cellule sembra ragionevole, gli importi esatti devono essere determinati in furti suoi esperimenti.
Un altro inconveniente del presente modello è l'uso della linea cellulare HepG2 epatocellulare. Gli esperimenti sono in corso per sviluppare l'uso di epatociti differenziati da cellule staminali pluripotenti indotte, che fornirà un modello fisiologicamente più rilevanti. Inoltre, il fegato è costituito da diversi tipi di cellule in aggiunta agli epatociti, ad esempio, cellule di Kupffer e sinosoids. Partiamo dal presupposto che i diversi tipi di cellule potranno ripopolare i loro ambienti naturali quando un ECM è recellularized con più tipi di cellule.
Il modello 3D del fegato combina diversi vantaggi. Uno svantaggio dei tradizionali modelli in vivo è che la fisiologia animale differisce sostanzialmente da fisiologia umana. effetti collaterali tossici del trattamento di un paziente umano possono quindi rimanere inosservato. Questa carenza può essere superato ricostituendo il modello di fegato 3D con le cellule umane che riflettono più da vicino la biologia della hupazienti uomo.
Il secondo vantaggio del modello di fegato è il suo contributo al benessere degli animali. Anche se i componenti di origine animale sono necessari per gli esperimenti di ricostituzione, l'approccio segue ancora le finalità del principio 3R (sostituzione, riduzione, perfezionamento), come animali in eccesso possono essere usati che sono stati sacrificati per altri esperimenti su animali, cioè, non sono necessari altri animali e l'approccio evita completamente sofferenza degli animali, che è frequentemente associata con gli esperimenti in vivo. Sferoidi sono uno strumento alternativo per studiare processi cellulari in un sistema 3D. Tuttavia, sferoidi non sono vascolarizzati modo che le grandi sostanze e biologici non penetrano in profondità nelle parti interne della struttura. Questi problemi sono stati superati con il modello di fegato 3D vascolarizzato.
Negli esperimenti descritti qui, vettori AAV sono stati indagati, dal momento che sono tra i candidati più promettenti per gene terapeuticoapplicazioni. Come numerosi geni approcci terapeutici mirano a colpire il fegato, per esempio, per il trattamento delle infezioni da virus dell'epatite o di deficit di alfa-1-antitripsina, il fegato 3D può essere utilizzato nel processo di sviluppo questi AAV vector. È, ovviamente, anche per lo studio di altri vettori virali epatotropi, per esempio, vettori adenovirali. Inoltre, può essere usato per studiare virus dell'epatite infettive come l'epatite B o C virus. Può, ad esempio, essere utilizzato per progettare nuove strategie antivirali. Inoltre, i modelli di organi in 3D rappresentano strumenti promettenti per lo sviluppo di nuove terapie per il trattamento di citostatici cancro e di effettuare studi tossicologici. Sul lungo periodo, fegati artificiali possono essere utilizzate nella medicina rigenerativa come trapianti. Presi insieme, il modello fegato 3D offre una vasta gamma di applicazioni in biologia infezione e altri campi di ricerca biomedica.
The authors have nothing to disclose.
The authors thank Bernd Krostitz for technical assistance, Radoslaw Kedzierski for initial contributions to the project, Erik Wade for proofreading and giving helpful comments, and Prof. Heike Walles for providing the bioreactor and sharing her valuable experience with organ decellularization. We are also thankful for funding of the project and publication by the Berlin University of Technology.
Incubator | Fraunhofer | / | |
Peristaltic Pump | Fraunhofer | / | |
Flange with groove | Duran | 2439454 | modified by gaffer |
O-Ring Transparent | Duran | 2922551 | |
Quick Release Clamp | Duran | 2907151 | |
Flat Flange Lid | Duran | 2429857 | modified by gaffer |
Screw thread Tube | Duran | 2483802 | modified by gaffer |
Screw thread Tube | Duran | 2483602 | modified by gaffer |
Silicone sealing Ring | Duran | 2862012 | |
Screw Cap | Duran | 2924013 | |
Screw Cap | Duran | 2924008 | |
Screw Cap with aperture | Duran | 2922709 | |
Screw Cap with aperture | Duran | 2922705 | |
Filter | Sarstedt | 831,826,001 | |
Silicone Tubing | VWR | 228-1500 | |
Tube connector | Ismatec | ISM556A | |
Biocompatible Tubing | Ismatec | SC0736 | |
T175 culture flasks | Greiner bio-one | 660 160 | |
RPMI 1640 | BioWest SAS (Th. Geyer) | L0501-500 | |
glutamine | BioWest SAS (Th. Geyer) | X0551-100 | |
Trypsin | BioWest SAS (Th. Geyer) | L0940-100 | |
penicillin/ streptomycin | BioWest SAS (Th. Geyer) | L0022-100 | |
fetal calf serum | cc pro | S-10-M | |
Tissue-Tek O.C.T. | Weckert-Labortechnik | 600001 | |
HepG2 | DSMZ | ACC 180 | |
Cryomold 15x15x5mm | Sakura | 4566 | |
Biopsy punch 4mm | pfm medical | 48401 | |
Nucleospin miRNA | Macherey & Nagel | 740971.10 | |
Nucleospin RNA/DNA Buffer Set | Macherey & Nagel | 740944 |