This study presents the development of reproducible methodologies to study biofilm inhibitors and their effects on Bacillus subtilis multicellularity.
This work assesses different methodologies to study the impact of small molecule biofilm inhibitors, such as D-amino acids, on the development and resilience of Bacillus subtilis biofilms. First, methods are presented that select for small molecule inhibitors with biofilm-specific targets in order to separate the effect of the small molecule inhibitors on planktonic growth from their effect on biofilm formation. Next, we focus on how inoculation conditions affect the sensitivity of multicellular, floating B. subtilis cultures to small molecule inhibitors. The results suggest that discrepancies in the reported effects of such inhibitors such as D-amino acids are due to inconsistent pre-culture conditions. Furthermore, a recently developed protocol is described for evaluating the contribution of small molecule treatments towards biofilm resistance to antibacterial substances. Lastly, scanning electron microscopy (SEM) techniques are presented to analyze the three-dimensional spatial arrangement of cells and their surrounding extracellular matrix in a B. subtilis biofilm. SEM facilitates insight into the three-dimensional biofilm architecture and the matrix texture. A combination of the methods described here can greatly assist the study of biofilm development in the presence and absence of biofilm inhibitors, and shed light on the mechanism of action of these inhibitors.
Многоклеточные бактериальные сообщества играют важную роль в природных и техногенных средах, а также может быть полезным или очень вредным. Эти многоклеточные колонии известны как биопленки, в которых отдельные клетки погруженных в матрицу собственного производства внеклеточных полимерных веществ (EPS). САЭ сильно слипание клеток к поверхности они колонизировать. Они служат в качестве защиты от механических и химических сил и создать тесный контакт между соседними клетками, что способствует сотовой связи 1. Биопленка можно рассматривать как дифференцированное сообщество, где клетки используют высоко регулируемом оркестровке процессы для координации их деятельности в рамках сообщества, а также разных видов 2-5. Переход от планктонных, свободно живущих режиме роста до состояния биопленки часто ассоциируется с процессами развития. Хорошим примером может служить грамположительных почвы бактерии Bacillus Сенная, и , следовательно, undomesticated штамм служит надежной модельного организма для изучения стадии развития, приводящие к образованию биопленки. В этой бактерии, подвижных клеток самоорганизуются в заметных многоклеточных структур , которые выполняют специализированные задачи 4. Одна группа клеток, матрично-производители секретируют экзополисахариды 6, амилоидный белок Tasa 7,8, а поверхность гидрофобность белка BslA 9,10; все из которых участвуют в сборке EPS 11-13.
Учитывая обилие биопленок в природных и техногенных нишах и предполагаемый фатальной ущерб, который они могут вызвать, существует настоятельная необходимость поиска путей предотвращения их образования. Малые молекулы ингибиторов могут помочь в обнаружении новых регуляторных путей, ферментов и структурных белков, участвующих в формировании биопленки, и тем самым способствовать понимание в сложных процессах сборки многоклеточного сообщества. Как B. Сенная является хорошо изученным модель для биоформирование пленки 14,15, он может быть использован для оценки влияния различных ингибиторов биопленки. Это исследование решает четыре основные методы, которые являются ключевыми для оценки реакции биопленок на низкомолекулярные ингибиторы. Во-первых, чтобы гарантировать, что эти ингибиторы имеют биопленки конкретной цели, разделение эффекта на планктонных роста от влияния на формирование биопленок имеет решающее значение. Большинство антибактериальных агентов в клетки-мишени в их планктонных фазе роста, но молекулы, которые нацелены на биопленки образ жизни встречаются редко. Кроме того, как молекулы , которые не влияют на рост планктона не являются токсичными, они могут уменьшить селективное давление , благоприятствующую устойчивых к антибиотикам мутантов 16. Например, когда биопленки обрабатывают D-аминокислот или некоторых других клеточных стенок, мешая молекул, они либо нарушены или в разобранном виде , но эти ингибиторы лишь слегка влияют на планктонные 12,17 роста. В противоположность этому, многие антибиотики резко ухудшает планктонный рост, с лittle или не оказывает влияния на формирование биопленок 17.
Во-вторых, создание последовательной и надежной экспериментальной базы для изучения влияния малых молекул имеет решающее значение. Мы наблюдали, что активный диапазон концентраций ингибиторов молекулы малых была чувствительна к условиям предварительной культуры и экспериментальной установки для изучения влияния этих низкомолекулярные ингибиторы. Различные отчеты, в частности , тех , кто изучает B. Сенная, выявлены различия в диапазоне концентраций , при которых D-аминокислоты ингибируют образование Плёночные – плавучие бактериальных биопленок 12,17-19. Результаты , представленные здесь , предполагают , что внимание следующие факторы различия в активном диапазоне концентраций: условия предварительной культуры (логарифмическая 12,17 по сравнению с поздней стационарной фазе роста 20), среда роста , использованный в состоянии предварительной культуры (богатых, не определено [Лурия Бульон, LB] по сравнению с определен [глутамат натрия-глицерол, MSgg]), отношение прививка и особенно удаление предварительно культуральной среде перед инокуляцией. Температура статического роста зубного налета показал менее важную роль в области деятельности малых молекулу ингибитора D-лейцина, репрезентативный D-аминокислоты, используемые в данном исследовании.
Наконец, когда биопленки обрабатывают специфическими ингибиторами биопленки, надежные и информативные методы необходимы, чтобы охарактеризовать влияние этих ингибиторов на биопленки пригодности. Здесь два способа независимо друг от друга характеризуют влияние малых молекулы ингибиторов подробно описаны: (1) Воздействие на отдельные клетки в биопленки колонии и их устойчивость к антимикробным агентам. Клетки в биопленки , как правило , более устойчивы к антибиотикам по сравнению с свободно живущих бактерий 21-23. В то время как это явление является многофакторной, способность САЭ , чтобы уменьшить проникновение антибиотика часто рассматривается в качестве привлекательной объяснения 24 </suр>. Этот метод оценивает выживание заранее установленных биопленки клеток после воздействия антибактериальных веществ. (2) Эффект от архитектуры биопленки колонии, от большого до малого масштаба. Биопленка колонии характеризуются их трехмерной структурой и наличием ЭПС. Использование сканирующей электронной микроскопии, изменения в морфологии клеток, структуру биопленки колонии и архитектуры и обилие САЭ могут быть визуализированы с большим (мм) до малого масштаба (мкм).
Сенная палочка образует прочные и хорошо структурированный биопленки как в жидком (Плёночные) и на твердой среде (колонии). Таким образом, он служит в качестве идеальной модели организма, чтобы охарактеризовать способ действия специфических ингибиторов биопленки. На твердых сред?…
The authors have nothing to disclose.
Electron microscope imaging was conducted at the Electron Microscopy Unit of the Weizmann Institute of Science, supported in part by the Irving and Cherna Moskowitz Center for Nano and Bio-Nano Imaging. This research was also supported by the ISF I-CORE grant 152/1, Mr. and Mrs. Dan Kane, Ms. Lois Rosen, by a Yeda-Sela research grant, by the Larson Charitable Foundation, by Ruth and Herman Albert Scholars Program for New Scientists, by the Ilse Katz Institute for Materials Sciences and Magnetic Resonance Research grant, by the Ministry of Health grant for alternative research methods, and by the France-Israel Cooperation – Maimonide-Israel Research Program. IKG is a recipient of the Rowland and Sylvia Career Development Chair.
Luria Broth, Lennox | Difco | 240230 | |
Bacto Agar | Difco | 214010 | |
potassium phosphate monobasic | Sigma, 136.09 g/mol | P0662-500G | |
potassium phosphate dibasic | Fisher Scientific, 174.18 g/mol | BP363-1 | |
3-(N-morpholino)propanesulfonic acid | Fisher Scientific, 209.27 g/mol | BP308-500 | |
magnesium chloride hexahydrate | Merck, 203.30 g/mol | 1.05833.0250 | |
calcium chloride anhydrous | J.T. Baker, 110.98 g/mol | 1311-01 | |
manganese(II) chloride tetrahydrate | Sigma, 197.91 g/mol | 31422-250G-R | |
iron(III) chloride hexahydrate | Sigma, 270.30 g/mo) | F2877-500G | |
zinc chloride anhydrous | Acros Organics, 136.29 g/mol | 424592500 | |
thiamine hydrochloride | Sigma, 337.27 g/mol | T1270-100G | |
L-tryptophan | Fisher Scientific, 204.1 g/mol | BP395-100 | |
L-phenylalanine | Sigma, 165.19 g/mol | P5482-100G | |
L-threonine | Sigma, 119.12 g/mol | T8625-100G | |
glycerol anhydrous | Bio-Lab Itd | 712022300 | |
L-glutamic acid monosodium salts hydrate | Sigma, 169.11 g/mol | G1626-1KG | |
D-leucine | Sigma, 169.11 g/mol | 855448-10G | |
ethanol anhydrous | Gadot | 830000054 | |
razor blade | Eddison | NA | |
circular cellulose filter papers | Whatman, 90 mm | 1001-090 | |
glutaraldehyde | EMS (Electron Micoscopy Science), 25% in water | 16220 | |
paraformaldehyde | EMS, 16% in water | 15710 | |
sodium cacodylate | Merck, 214.05 g/mol | 8.2067 | |
calcium chloride 2-hydrate | Merck, 147.02 g/mol | 1172113 | |
stub-aluminium mount | EMS, sloted head | 75230 | |
carbon adhesive tape | EMS | 77825-12 | |
Shaker 37°C | New Brunswick Scientific Innowa42 | NA | |
Centrifuge | Eppendorf table top centrifuge 5424 | NA | |
Digital Sonifier, Model 250, used with Double Step Microtip | Branson | NA | |
Incubator 30 °C | Binder | NA | |
Incubator 23 °C | Binder | NA | |
Filter System, 500 ml, polystyrene | Cornig Incorporated | NA | |
Rotary Shaker – Orbitron Rotatory II | Boekel | NA | |
S150 Sputter Coater | Edwards | NA | |
CPD 030 Critical Point Dryer | BAL-TEC | NA | |
Environmental Scanning Electron Microscope | XL30 ESEM FEG Philips (FEI) | NA |