This protocol describes how to determine whether pharmacological treatments for experimental autoimmune encephalomyelitis show CNS protection as a consequence of suppressing immune cell infiltration or are neuroprotective during the onslaught of immune cell infiltration.
A major hallmark of the autoimmune demyelinating disease multiple sclerosis (MS) is immune cell infiltration into the brain and spinal cord resulting in myelin destruction, which not only slows conduction of nerve impulses, but causes axonal injury resulting in motor and cognitive decline. Current treatments for MS focus on attenuating immune cell infiltration into the central nervous system (CNS). These treatments decrease the number of relapses, improving quality of life, but do not completely eliminate relapses so long-term disability is not improved. Therefore, therapeutic agents that protect the CNS are warranted. In both animal models as well as human patients with MS, T cell entry into the CNS is generally considered the initiating inflammatory event. In order to assess if a drug protects the CNS, any potential effects on immune cell infiltration or proliferation in the periphery must be ruled out. This protocol describes how to determine whether CNS protection observed after drug intervention is a consequence of attenuating CNS-infiltrating immune cells or blocking death of CNS cells during inflammatory insults. The ability to examine MS treatments that are protective to the CNS during inflammatory insults is highly critical for the advancement of therapeutic strategies since current treatments reduce, but do not completely eliminate, relapses (i.e., immune cell infiltration), leaving the CNS vulnerable to degeneration.
La sclérose en plaques (SEP) est caractérisée par des lésions inflammatoires principalement dans les régions de la substance blanche du cerveau au début de la maladie. Après la progression à long terme, la matière grise atrophie est détectée par imagerie IRM et marque la phase neurodégénératif de la maladie. gliose réactive, démyélinisation et des lésions axonales dans la substance blanche sont attribuées aux cellules immunitaires CNS-infiltrant. Aucun des traitements actuellement utilisés dans la SEP inverse ou directement empêcher la neurodégénérescence dans le système nerveux central – au contraire, ils réduisent l'inflammation en atténuant l'activation et / ou l'infiltration des lymphocytes T dans le SNC. Parce qu'il n'y a pas de remède pour la SP et les patients utilisant les traitements actuels continuent de connaître la progression de la maladie, les découvertes de médicaments qui préviennent la démyélinisation et neuronale perte sont d'une importance cruciale. Cependant, la différence entre les effets sur les cellules immunitaires et celles sur le SNC peut être difficile expérimentalement, comme le résultat – à savoir, la réduction des dommages au système nerveux central – regarde les same quels que soient les mécanismes par lesquels elle se produit. Par conséquent, l'évaluation de la protection CNS doit être associé à des évaluations de CNS infiltrant les cellules immunitaires et la prolifération des cellules immunitaires dans la périphérie afin de déterminer comment les agents pharmacologiques affecte les mécanismes de la maladie.
Experimental encéphalomyélite auto – immune (EAE) est un modèle animal bien établi de troubles inflammatoires auto – immunes qui était directement responsable de la découverte de médicaments actuellement utilisés pour traiter MS 1-4. Les souris sont souvent utilisées pour l'EAE avec C57BL / 6 souris étant une souche populaire basée sur la disponibilité de variantes génétiques. C57BL / 6 souris induites avec EAE présentent la progression de la maladie chronique avec apparition d'environ 10 jours après l'induction. Infiltration du parenchyme de la moelle épinière et du cervelet sont caractéristiques de l'histopathologie de ces animaux, en l' absence d'infiltrations dans le parenchyme cortical 5. lésions plus, corticales et démyélinisation dans le bla pluie sont les caractéristiques de la maladie 6-9, qui sont relativement absentes dans C57BL / 6. Par conséquent, il peut être préférable si possible d'utiliser des souris SJL, qui ont une maladie récurrente-rémittente et des lésions trouvées dans le cerveau et la moelle épinière qui semblent similaires à ceux de la MS 10.
Le traitement ne peut pas être classé comme neuroprotecteur si les cellules immunitaires ne jamais atteindre le système nerveux central. Par conséquent, ce protocole permet l' utilisation d'écoulement analyse cytométrique de cerveau, la moelle épinière et les rates des souris atteintes d' EAE afin de déterminer les effets du traitement sur l' infiltration des cellules immunitaires dans le SNC et la prolifération des cellules immunitaires dans la périphérie, comme démontré précédemment 11. analyses immunohistochimiques de tissu du SNC pour déterminer l'étendue et la nature de la neuroprotection est également décrite. La combinaison de ces méthodes permet de déterminer si les cellules immunitaires ont été activés et prolifèrent à la périphérie, que les cellules immunitaires sont entrés dans le système nerveux central, et si le système nerveux central est protected de l'inflammation ou de dommage. Si l'on soupçonne des effets neuroprotecteurs malgré des effets sur le système immunitaire, les expérimentateurs peuvent altérer le traitement des heures de démarrage après l'infiltration des cellules immunitaires dans le SNC est produite.
Ici, nous présentons un protocole utilisant deux modèles différents de EAE actif, un modèle animal à médiation cellulaire T de MS, et cytométrie de flux combiné avec immunohistochimie à divers points de temps au cours de la maladie afin de déterminer l'efficacité des thérapies expérimentales sur différents aspects de MS pathogenèse. Cette méthode va aider les chercheurs à différencier les effets sur la prolifération des cellules immunitaires et de l'infiltration par rapport à la protection du système nerveux central, ce qui rend plus facile à affiner la façon dont les médicaments agissent sur la pathogenèse de la maladie.
Les patients atteints de SEP continuent de subir des rechutes de la maladie tout en prenant des médicaments qui atténuent l'activation et / ou infiltration cellules T dans le SNC, ce qui justifie le développement d'options de traitement qui protègent directement le SNC. EAE a été classiquement utilisé pour modéliser les symptômes de la sclérose en plaques et peut être un outil puissant pour l'étude de la nature des interactions entre le système immunitaire et du système nerveux central in vivo. En utilisant le calendrier des considérations de traitement dans l' EAE, par exemple, avant ou après le début de la maladie, en liaison avec l' examen de l' infiltration des cellules immunitaires dans le système nerveux central et de la prolifération et de l' activation de la périphérie, il est possible de délimiter les effets des traitements à la fois sur le système immunitaire et le SNC.
Alors que l'EAE chez la souris C57BL / 6 est plus largement utilisé, EAE dans la SJL souris peut être plus représentatif de la majorité des cas de sclérose en plaques, ces souris ont un phénotype et l'infiltration de cellules immunitaires récurrente-rémittente dans le parenchyme10 du cerveau. souris SJL ont nette reprise au cours de la remise ainsi, ce qui permet de commencer le traitement après que la maladie a présenté, mais pendant les périodes de l'inflammation réduite. Il est important de considérer que les souris SJL ne sont pas toujours rechutent pas et remettre en synchronie, entraînant potentiellement une grande variabilité lorsque les résultats sont mis en commun. Par conséquent, certains chercheurs peuvent choisir d'afficher des résultats représentatifs pour les scores cliniques d'un animal tout en prenant des souris pour l'analyse FACS et histologie à des points individualisés dans la progression de la maladie.
Considérant lorsque les manipulations sont faites à des souris EAE peut aider à la détermination de la façon dont un traitement affecte le système immunitaire ou du système nerveux central. Il existe de nombreuses options pour quand le traitement commence, chacun avec sa propre connotation pour savoir si les cellules immunitaires sont entrés dans le système nerveux central et la façon dont ils peuvent interagir avec le système nerveux central. Traitement avant l'apparition des symptômes implique que les cellules immunitaires sont pas encore entrés ou causé des dommages au système nerveux central.Traitement après l'apparition des symptômes implique que les cellules immunitaires sont entrés dans le système nerveux central et ont causé quelques dégâts. En utilisant des souris SJL, le traitement peut également commencer au cours d'une rechute, où les cellules immunitaires sont activement infiltraient et provoquant une inflammation, ou pendant la rémission, où les cellules immunitaires peuvent être moins fréquentes dans le SNC avec moins d'inflammation. hypothèses initiales concernant la façon dont les traitements affectent le système nerveux central et du système immunitaire peuvent être faites lors de l'examen, où les cellules immunitaires sont dans le processus pathologique au cours du traitement.
Il y a un certain nombre de façons dont les traitements peuvent affecter les cellules immunitaires et le système nerveux central, chacun avec le résultat de la réduction de la sévérité des symptômes EAE de fin. Par conséquent, il est nécessaire d'utiliser l'analyse cytométrique et immunohistochimie flux pour voir comment les cellules immunitaires sont affectées à la périphérie et du système nerveux central, que les cellules immunitaires sont entrées dans le système nerveux central, le système nerveux central et comment réagit au traitement. Bien que l'analyse cytométrique d'écoulement de la moelle épinière peut déterminer combien de cellules haavez entré dans le système nerveux central à un moment donné, on ne peut pas déterminer que cet effet est dû à la traite des cellules immunitaires réduites à moins prolifération des cellules immunitaires est affectée dans la rate. Il est donc nécessaire d'analyser à la fois les tissus périphériques et du système nerveux central et de déterminer ce que signifient les résultats mécaniste lorsque les deux tissus sont comparés. Il est également possible pour les profils d'activité des cellules immunitaires à être modifiées par le traitement, par exemple d'un commutateur dans un profil de cellule T auxiliaire lourd pathogène à un profil de cellules T régulatrices lourds. En regardant des marqueurs pour différents types de cellules et de comparaison pour cent expression entre les animaux traités et non traités est donc également une considération importante. Un nouveau concept dans la recherche MS suggère que les cellules B jouent un rôle important dans la démyélinisation auto-immune. Ceci est basé sur des études montrant que les cellules B sont nécessaires pour la réactivation des cellules T 20. Ce concept est soutenu par le succès des traitements tels que le rituximab, un anticorps anti-CD20 expressé sur la surface des cellules B 21,22. Comme l'a démontré le succès de l'ocrelizumab d'anticorps monoclonal dans les essais cliniques, des médicaments ciblant différents épitopes de CD20 peuvent améliorer l'efficacité de la thérapeutique ciblée B cellules 23.
Une limitation des techniques présentées ici est qu'il est possible pour les cellules du système immunitaire d'entrer dans le système nerveux central, mais être incapable de se déplacer dans le parenchyme. L'immunohistochimie peut être utilisée pour détecter manchon périvasculaire des cellules immunitaires et d'évaluer la distance parcourue dans le parenchyme entre les animaux traités et non traités. Une autre limite potentielle implique les effets de la microbiome sur EAE pathogenèse. Commensal microbiote intestinal peut fortement influencer la maladie pathogenèse 24; par conséquent, les souris logées dans différentes colonies et même dans différentes cages peuvent avoir de grandes différences dans la gravité de la maladie. Par conséquent, il est toujours préférable d'utiliser autant que possible les contrôles de la même portée soulevées dans la même cagedes expériences impliquant l'EAE. Une note finale est que si elle est expérimentalement souhaitable d'éliminer les effets de la cellule immunitaire modifications prolifératives dans la périphérie, il peut être possible de le faire en utilisant passive transfert induction plutôt que l'induction active décrite dans ce protocole.
Une confirmation supplémentaire pour la neuroprotection peut être accomplie en utilisant un système de co-culture 11 pour tester des mécanismes spécifiques de la mort cellulaire ou à travers l'utilisation des souris knock – out conditionnel qui permet de supprimer de manière sélective des protéines sur un type de cellule. En outre, pour étendre l'exploration des agents pharmacologiques qui sont neuroprotecteur, des marqueurs de transection axonale et la mort neuronale devraient être inclus. Un autre domaine d'importance est la remyélinisation. axones blessés sont incapables de remyéliniser prêter un soutien supplémentaire que les thérapies neuroprotectrices devraient être une partie importante des thérapies de remyélinisation. En outre, les axones amyéliniques sont plus vulnérables aux blessures que myelinaaxones ted. Cela donne à penser que quand un axone devient des interventions thérapeutiques démyélinisation qui favorisent la remyélinisation en temps opportun permettra d'éviter des lésions axonales. Pour explorer ces avenues, d' autres modèles in vivo pour la démyélinisation et la remyélinisation peuvent être utilisés ( par exemple, cuprizone et lysolécithine). Le procédé décrit ici centré sur l'évaluation de la neuroprotection par quantification de la perte de myéline. Pour l'évaluation de la remyélinisation le nombre de cellules progénitrices, ainsi que leur capacité à proliférer et à maturité serait également important d'étudier. Avec la mention de ces modèles alternatifs, il faut aussi tenir compte de différents modèles d'encéphalite qui sont viralement médiées. Il existe deux modèles ARN viraux bien caractérisées qui produisent une perte de myéline: l' un est l' encéphalomyélite murine de Theiler, d' un virus non enveloppé Picornaviridae, et l'autre est le virus de l' hépatite de la souris, un membre de la famille des virus Coronaviridae 25,26.
EAE est un outil précieux pour studies de la façon dont les traitements ou manipulations affectent le système immunitaire et du système nerveux central in vivo. Le protocole décrit ici peut aider à déterminer où les traitements ont une incidence sur le processus de la maladie, que ce soit dans la périphérie, à la barrière hémato-encéphalique, ou dans le SNC. Aucun traitements actuels pour MS guérir la maladie et les patients souvent déclin de l'expérience au fil du temps. De même, d'autres maladies impliquant une infiltration de cellules immunitaires dans le SNC et la dégradation de la myéline, y compris l'encéphalomyélite aiguë disséminée, la myélite transverse, et la neuromyélite optique, les traitements qui protègent le manque du système nerveux central comme il est directement attaqué par l'infiltration de cellules immunitaires. Prenant en considération le moment du traitement et l'utilisation de l'analyse de cytométrie de flux de la rate et de la moelle épinière en conjonction avec l'immunohistochimie du SNC pour évaluer l'inflammation et des dommages permettra déterminations mécanistes être prises concernant les traitements.
The authors have nothing to disclose.
Ce travail a été financé par NINDS P30-NS069324, La National Multiple Sclerosis SocietyRG 4587-A-1, La Fondation Civitan international de recherche, la Fondation Mike L. Jezdimir Transverse myélite, L'Université de la Fondation des services de santé Alabama – Fonds général de dotation, The National science Foundation 1355183 et T32 AI007051 de l'Institut national des allergies et des maladies infectieuses, national Institutes of Health.
22 x 22 x 20 mm embedding mold | Fisher Scientific | NC9719245 | |
22 x 30 x 20 mm embedding mold | Fisher Scientific | NC9531194 | |
2-Mercaptoethanol (55mM) | Thermo Fisher Scientific | 21985-023 | |
2-Methylbutane | Fisher Scientific | O3551-4 | |
30 x 22 x 20 mm embedding mold | Fisher Scientific | 18-30 | |
ACK Lysing Buffer | Quality Biological | 118-156-101 | |
anti-CD4 PE-Cy7 | BD Biosciences | 552775 | 0.2 mg/mL stock concentration |
anti-Foxp3-FITC | eBioscience | 11-5773-82 | 0.5 mg/mL stock concentration |
anti-GFAP (Cocktail) | Biolegend | 835301 | 1-3 mg/mL stock concentration |
anti-Iba-1 Polyclonal Antibody (50 ug) | Wako | 019-19741 | 0.5 mg/mL stock concentration |
anti-IFN-γ APC | eBioscience | 17-7311-82 | 0.2 mg/mL stock concentration |
anti-IL-17A PerCP-Cy5.5 | eBioscience | 45-7177-82 | 0.2 mg/mL stock concentration |
anti-Ki-67 PE | eBioscience | 12-5698-82 | 0.2 mg/mL stock concentration |
anti-MBP (D-18) | Santa Cruz Biotechnology | sc-13912 | 0.2 mg/mL stock concentration |
anti-TCRβ FITC | eBioscience | 11-5961-85 | 0.5 mg/mL stock concentration |
anti-TCRβ PE | eBioscience | 12-5961-83 | 0.2 mg/mL stock concentration |
Biotinylated Goat Anti-Rabbit IgG | Vector Labs | BA-1000 | 1.5 mg/mL stock concentration |
Biotinylated Horse Anti-Mouse IgG | Vector Labs | BA-2000 | 1.5 mg/mL stock concentration |
Citric Acid, Anhydrous, 99.5% | Fisher Scientific | AC42356-5000 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA), tetrasodium salt dihydrate, 99% | Fisher Scientific | AC446085000 | |
Fetal Bovine Serum | HyClone | SH30071.03 | |
Fisherbrand Superfrost Plus Microscope Slides, case of 10 | Fisher Scientific | 12-550-15 | |
Foxp3/Transcription Factor Staining Buffer Set | eBioscience | 00-5523-00 | Foxp3 transcription factor staining reagents |
Golgi Plug | BD Biosciences | 555029 | protein transport inhibitor |
Immedge Hydrophobic Barrier Pen | Fisher Scientific | NC9545623 | |
Ionomycin | EMD Millipore | 407952-5mg | |
L-Glutamine, 100X | Corning | 25-005-Cl | |
MEM Nonessential Amino Acids | Corning | 25-025-Cl | |
Near IR Live/Dead Staining Kit | Life Technologies | L10119 | viability dye |
Normal goat serum | Vector Labs | S-1000 | |
Normal horse serum | Vector Labs | S-2000 | |
Paraformaldehyde, 96% | Fisher Scientific | AC416785000 | |
Penicillin-Streptomycin Solution, 100X | Corning | 30-002-Cl | |
Percoll | GE Healthcare | 17-0891-01 | density gradient |
Permount | Fisher Scientific | SP15-500 | resinous mounting medium |
Phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) | Sigma | P1585-1mg | |
Purified anti-Myelin Basic Protein Antibody | BioLegend | 808401 | |
RPMI 1640 | Corning | 10-040-CM | |
Sodium Pyruvate | Corning | 25-000-Cl | |
Tissue-Tek CRYO-OCT Compound | Fisher Scientific | 14-373-65 | |
Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T9284 | nonionic detergent |
Vectastain Elite ABC Kit (Standard) | Fisher Scientific | NC9206402 | avidin-biotin-peroxidase complex (ABC) in immunoperoxidase |
Vector Laboratories Peroxidase Substrate Kit (DAB) | Fisher Scientific | NC9276270 | DAB solution |