Calcio Imaging in<em> Drosophila</em> All'attivazione Egg

Nota: Eseguire tutte le misure a temperatura ambiente, se non diversamente indicato. 1. Preparazione per la dissezione Nota: I passi qui descritti sono conformi E. Gavi, Princeton University e Weil et. al. 18. Effettuare le seguenti operazioni due giorni prima di imaging. Prendere una fiala mosca contenente circa 10 ml di cibo solido e aggiungere una piccola quantità di lievito secco per un angolo, meno di 1 g è sufficiente. Nota: Per informazioni su fiale mosca o cibo vedere 'Drosophila Manutenzione' 19. Aggiungere 1 – 3 gocce d'acqua per idratare il lievito. Impostare la fiala parte ad un angolo di 45 ° e consentire 3 – 5 min per il lievito per prendere l'acqua. Mentre il lievito sta assorbendo l'acqua, scegliere una bottiglia di mosche che esprimono UASt- MYR GCaMP5 20 guidata da vasca-VP16GAL4 (denominato GCaMP5) che hanno recentemente emerse (un myristoymodulo lata del GCaMP5 è stata scelta per fornire un elevato rapporto segnale rumore attraverso legare il GECI alla membrana nell'uovo). Anestetizzare le mosche in bottiglia con gas CO 2. Assicurarsi di tenere la bottiglia capovolta in modo da non perdere le mosche nel cibo umido. Suggerimento le mosche anestetizzati su un batuffolo di CO 2 e di tipo 10 – 15 femmine e 5 maschi con un pennello sotto un microscopio da dissezione. Nota: E 'standard per includere i maschi per fornire le femmine sani per la dissezione. Quando la fiala dal punto 1.3 è pronto, aggiungere le mosche selezionati al flaconcino. Fare attenzione a tenere la orizzontale flacone fino a quando le mosche diventano attivi. Posizionare il flacone a 25 ° C per circa 36 ore. Riportare le restanti mosche dal CO 2 pad per la bottiglia o scarti. 2. dissezione Drosophila ovaie Nota: I passi qui descritti sono conformi Weil et. al. <sup> 18. Dopo 36 ore, anestetizzare le mosche dal flaconcino yeasted con CO 2. Una volta che le mosche all'interno della fiala vengono anestetizzati loro punta sul pad CO 2 per essere filtrate con un pennello sotto un microscopio da dissezione. Selezionare una femmina. Isolare le due ovaie dalla femmina. Per un pieno protocollo dettagliato vedere Weil et. al. 18. In sintesi: Mettere una piccola goccia di olio Halocarbon ossigenato (serie 95) su un No. 1.5, 22 x 40 mm coprioggetto. Afferrare la femmina con una pinza a anterior dell'addome. Tenendo la femmina sotto il microscopio da dissezione, utilizzare il secondo set di pinze per rimuovere delicatamente la parte posteriore del femminile. Pulire il tessuto posteriore, dalla seconda pinza. Premere sulla cavità addominale con la seconda pinza da anteriore a posteriore dell'addome. I due ovaie opache devono attenersi ai forcipe al di fuori della femaLe. Toccare le ovaie nell'olio. Rimuovere qualsiasi tessuto dalle pinze pulendo fuori le pinze. Ripetere questi passaggi (2.4.1 – 2.4.7) per ottenere tre lamelle, ognuna ovaie contenenti da una mosca. 3. isolamento individuale uova mature Sotto un microscopio da dissezione di serie con l'ingrandimento impostato 4X, il primo vetrino dal punto 2.4, separare le due ovaie strappando ovidotto. Introdurre un paio di pinze chiuse al centro di un singolo ovaio, facendo attenzione a non forare qualsiasi camere d'uovo. Inserire una sonda dissezione standard al centro della dell'ovaio accanto alle pinze chiuse. trascinare delicatamente la sonda dissezione attraverso l'ovaio verso il polo posteriore, dove si trovano le uova mature (fase 14 camere d'uovo). Ripetere i passi 3.1 – 3.4 2 – 5 volte a seconda delle dimensioni delle ovaie e numero di uova. Nota: L'aggiunta di CO 2 </sub> normalmente provoca la deposizione di un singolo uovo che apparirà più grande con appendici dorsali sollevate dalle uova pre-depositato. Questo uovo deve essere eliminata per l'imaging in quanto è già stato attivato all'interno della femmina. Nota: le uova mature sono suscettibili di separare facilmente dal tessuto connettivo ovarico. Se non ci sono le uova mature sono visibili al di fuori delle ovaie, continua dolcemente prendere in giro con la sonda dissezione. Una volta che le uova mature sono visibili sul vetrino di fuori delle ovaie, manovrare 3 – 5 in una linea al centro del vetrino. Nota: Per ottenere risultati ottimali, eseguire la sonda delicatamente lungo il lato delle uova. Nota: Evitare di tirare su le appendici dorsali come questo può danneggiare l'uovo. Nota: A seconda del futuro di imaging di set-up, allineare le uova di circa 200 micron a parte perpendicolare al vetrino per la massima area di esposizione. Una volta allineata, rimuovere il resto del tessuto ovarico trascinandola lontano dalle uova allineate usando l'forceps. Rimuovere l'olio in eccesso tamponando con l'angolo di pulire un medico. Fare attenzione a non toccare le uova mature con il medico wipe uova mature che vengono contattati verranno persi. Disegnare un mirino sul vetrino con un pennarello per semplificare l'individuazione del campione sotto il microscopio. Impostare il vetrino in un luogo sicuro e lasciare le camere di uova preparate sul vetrino di riposare per 5 – 10 minuti. Questo permette l'uovo di stabilirsi nell'olio. I campioni possono essere utilizzati fino a 1 ora dopo la dissezione. Ripetere i passaggi 3,1-3,11 per il resto i coprioggetti con ovaie su di loro. 4. Preparazione per l'imaging Portare buffer di attivazione preparati 15 a temperatura ambiente. Nota: tampone attivazione è un buffer ipotonico: 3.3 mM NaH 2 PO 4, 16.6 mM KH 2 PO 4, 10 mM NaCl, 50 mM KCl, 5% di polietilenglicole 8000, 2 mM CaCl 2, portata a pH 6,4 con 1: 5 rapporto di NaOH: KOH.Per ulteriori informazioni, vedere Mahowald 1983 15. Aliquote di buffer di attivazione può essere conservato a -20 ° C per mesi e a 4 ° C fino a 2 settimane. trasportare con cura vetrini preparati, buffer di attivazione e pipette di vetro per l'impianto di imaging. Nota: Un grande campo, confocale, disco rotante o microscopio foglio di luce possono essere utilizzati. Si consiglia di utilizzare un microscopio invertito. I nostri risultati rappresentativi sono stati ottenuti utilizzando un microscopio confocale. Un obiettivo adatto per l'imaging dell'intero uovo maturo dovrebbe essere scelto (qui: 20X 0.7 NA). Montare il primo vetrino preparato sul palco microscopio. Fare attenzione a non rompere i coprioggetti sul palco. selezionare Qualitativamente un campo visivo con una camera di uovo maturo per l'attivazione. Non immagine forato camere uovo o con blebbing nella membrana. Nota: Per i passaggi 4.6 – 4.7, comandi software variano a seconda del microscopio e produttore. Set para immaginimetri per l'eccitazione di serie GFP (488 nm) ed emissione (500-580 nm). Anche impostare una visualizzazione brillante campo, al fine di visualizzare e orientare l'uovo maturo e olio di sfollati. Selezionare la più bassa Z-piano in cui le uova mature sono visibili e impostare un Z-stack completo da prendere per 40 micron a circa 2 micron per passo. Impostare i parametri in modo non vi è alcun ritardo tra l'acquisizione Z-stack. Impostare la serie temporale per catturare per circa 30 min. L'attivazione 5. Imaging Ex Vivo Egg Inizia la cattura delle immagini. Attendere 1 – 2 pieni Z-stack da acquisire. Ciò dimostra l'uovo maturo prima dell'attivazione. Prelevare circa 300 ml di tampone di attivazione in una pipetta di vetro. Posizionamento la punta della pipetta di vetro contenente tampone di attivazione ad un angolo di 45 ° al di sopra del vetrino, spostare lentamente la pipetta nel percorso del raggio fino a quando non si trova direttamente sopra l'uovo maturo viene esposta. La pipetta di vetro dovrebbeessere di 1 – 2 cm sopra l'olio. Aggiungere 1 – 2 gocce di tampone di attivazione in meno di 5 secondi dalla pipetta di vetro. Questo dovrebbe sostituire l'olio. Evitare di aggiungere buffer di attivazione eccesso o toccare l'uovo con la pipetta di vetro in quanto può causare lo spostamento della uovo maturo. Fare attenzione a non toccare il vetrino con la pipetta come questo può causare un cambiamento nel piano o bolle d'aria focali per formare in olio di immersione tra l'obiettivo e il vetrino. Mentre l'aggiunta di buffer di attivazione durante l'acquisizione dell'immagine, controlla il canale in campo chiaro per garantire che l'olio è stato spostato dal buffer di attivazione. Nota: Innanzitutto, verrà visualizzato come un ombra di pipetta rompendo il percorso del fascio ma anche provocare la comparsa di piccole goccioline di olio. Alcune gocce di olio possono rimanere associati con l'uovo maturo che interesserà i risultati sperimentali e la qualità delle immagini. Se l'olio non si sposti dalla aggiunta iniziale di ripetizione buffer di passaggi di attivazione 5.4 – 5.6. Una volta che l'olio è spostato con successo, consentire la serie temporale di eseguire fino al completamento. Nota: a causa di gonfiore di ovociti in attivazione, alcuni camere d'uovo si sposteranno drammaticamente fuori del piano focale o campo visivo dopo l'aggiunta di tampone di attivazione. In questa situazione, interrompere l'acquisizione e montare il successivo coprioggetto. Dopo la sequenza di immagini è stata completata l'acquisizione, il salvataggio dei dati. 6. post-acquisizione Image Processing Aprire il set di dati tramite Fiji (http://fiji.sc/Downloads#Fiji), o il software di elaborazione delle immagini equivalente, e selezionare i file rilevanti per l'analisi. Per costruire una proiezione dei dati acquisiti selezionare: Immagine> Stack> Z-progetto. Selezionare un inizio Z-slice e una fermata Z-slice, in genere l'intera sezione. Selezionare un tipo di proiezione, di solito impostato su 'Max intensita'. Casella di spunta 'All Time Frames' per applicare le impostazioni selezionate per l'intera serie. Sepiù di un canale fluorescente è stato ripreso, utilizzare lo strumento dei canali per consentire il movimento tra i colori, fare un composito, o fare la scala di grigio dell'immagine. Seleziona Immagine> Colori> Canali strumento. Per regolare la luminosità e il contrasto selezionare Immagine> Regola> Luminosità / Contrasto. Per esportare una singola immagine, spostare cursore scala temporale al fotogramma rilevante e selezionare File> Salva con nome> Jpeg, o qualsiasi formato preferito. Scegliere una posizione e il titolo per il file esportato, quindi salvare. Nota La frequenza di fotogrammi dal software di imaging sarà tenuto a dare un timestamp sull'immagine. Per esportare la serie temporale come un film selezionare: File> Salva con nome> AVI, quindi selezionare il frame rate (~ 7 fotogrammi al secondo). Scegliere una posizione e il titolo per il file esportato, quindi salvare. Per salvare il file in formato rettificato Fiji, selezionare File> Salva.