Imagerie de calcium dans<em> Drosophila</em> Activation à Egg

Remarque: Effectuer toutes les étapes à la température ambiante, sauf indication contraire. 1. Préparation de Dissection Remarque: Les étapes décrites ici sont conformes à E. Gavis, Princeton University et Weil et. al. 18. Effectuez les étapes suivantes, deux jours avant l'imagerie. Prenez un flacon de mouche contenant environ 10 ml de nourriture solide et ajouter une petite quantité de levure sèche dans un coin, à moins de 1 g est suffisante. Remarque: Pour des informations sur les flacons de mouches ou de la nourriture voir 'Drosophila Maintenance' 19. Ajouter 1 – 3 gouttes d'eau pour hydrater la levure. Réglez le flacon de côté à un angle de 45 ° et laisser 3-5 min pour la levure de prendre l'eau. Bien que la levure absorbe l'eau, sélectionnez une bouteille de mouches exprimant UASt- myr GCaMP5 20 entraînée par un bain-VP16GAL4 (dénommé GCaMP5) qui ont récemment vu le jour (un myristoyforme lated du GCaMP5 a été choisi pour fournir un signal élevé par rapport au bruit par le biais d'attacher la GECI à la membrane dans l'œuf). Anesthésier les mouches dans la bouteille avec du gaz CO 2. Soyez sûr de garder la bouteille inversée afin de ne pas perdre de mouches dans la nourriture humide. Astuce vol anesthésiés sur un tampon de CO 2 et de trier 10 – 15 femelles et 5 mâles à l' aide d' un pinceau sous un microscope à dissection. Note: Il est standard pour inclure les hommes pour fournir des femelles en bonne santé pour la dissection. Lorsque le flacon de l'étape 1.3 est prêt, ajouter les mouches sélectionnées dans le flacon. Prenez soin de garder l'horizontale flacon jusqu'à ce que les mouches deviennent actifs. Placer le flacon à 25 ° C pendant environ 36 heures. Retour à vol restants du CO 2 pad à la bouteille ou défausse. 2. Dissecting Drosophila Ovaires Note: Les étapes décrites ici sont conformes à Weil et al. Al. <sup> 18. Après 36 h, anesthésier les mouches du flacon yeasted avec du CO 2. Une fois que les mouches à l' intérieur du flacon sont anesthésiés leur donner un pourboire sur le CO 2 pad à trier avec une brosse de peinture sous un microscope à dissection. Sélectionnez une femelle. Isoler les deux ovaires de la femelle. Pour le protocole complet et détaillé voir Weil et. al. 18. En résumé: Placer une petite goutte d'huile d'hydrocarbures halogénés oxygénés (série 95) sur un n ° 1,5, 22 x 40 mm lamelle. Attrapez la femelle avec une pince à la partie antérieure de l'abdomen. Tenir la femme sous le microscope de dissection, utiliser le second jeu de pinces pour enlever délicatement la partie postérieure de la femelle. Essuyez le tissu postérieur de la deuxième pince. Presser sur la cavité abdominale avec les secondes pinces de la partie antérieure à la partie postérieure de l'abdomen. Les deux ovaires opaques doivent coller à la pince lorsque l'extérieur de la FEMAle. Appuyez sur les ovaires dans l'huile. Retirez tout tissu de la pince en essuyant la pince. Répétez ces étapes (2.4.1 – 2.4.7) pour obtenir trois lamelles, chacun contenant des ovaires d'une mouche. 3. Isolating individuel Oeufs d'âge mûr Sous un microscope à dissection standard avec le grossissement réglé à 4X, sur la première lamelle de l'étape 2.4, séparer les deux ovaires en déchirant l'oviducte. Introduire une paire de pinces fermées dans le centre d'un seul ovaire, en prenant soin de ne pas percer des chambres d'œufs. Insérer une sonde de dissection standard dans le centre de l'ovaire, à côté de la pince fermée. faites glisser doucement la sonde de dissection à travers l'ovaire vers le pôle postérieur, où se trouvent les oeufs matures (stade 14 chambres d'oeufs). Répéter les étapes 3.1 – 3.4 2 – 5 fois en fonction de la taille de l'ovaire et du nombre d'oeufs. Note: L' addition de CO 2 </sub> provoque généralement le dépôt d'un seul œuf qui apparaîtra plus grande avec des appendices dorsaux soulevées que les œufs pré-déposés. Cet oeuf doit être mis au rebut pour l'imagerie, car il a déjà été activé à l'intérieur de la femelle. Remarque: les oeufs matures sont susceptibles de se séparer facilement du tissu conjonctif de l'ovaire. Si pas d'oeufs matures sont visibles à l'extérieur de l'ovaire, continuez doucement taquiner avec la sonde de dissection. Une fois les oeufs matures sont visibles sur la lamelle couvre-objet en dehors de l'ovaire, de manoeuvre 3 – 5 dans une ligne du centre de la lamelle couvre-objet. Note: Pour de meilleurs résultats, exécutez la sonde doucement le long du côté des œufs. Remarque: Évitez de tirer sur les appendices dorsaux car cela peut endommager l'œuf. Remarque: En fonction de l'imagerie future mise en place, aligner les oeufs environ 200 um à part perpendiculairement à la lamelle pour la zone maximale d'imagerie. Une fois aligné, retirez le reste du tissu ovarien en le faisant glisser à l'écart des œufs alignés en utilisant le forceps. Retirer l'excès d'huile en tamponnant avec le coin d'essuyer un examen médical. Veillez à ne pas toucher les oeufs matures avec le médical lingette oeufs matures qui sont contactés seront perdus. Dessiner une croix sur la lamelle couvre-objet avec un marqueur pour faciliter la localisation de l'échantillon sous le microscope. Régler la lamelle dans un endroit sûr et de laisser les chambres d'œufs préparés sur la lamelle pour se reposer pendant 5 – 10 min. Ceci permet à l'oeuf se déposer dans l'huile. Les échantillons peuvent être utilisés jusqu'à 1 h après dissection. Répétez les étapes 03.01 à 03.11 pour le reste des lamelles avec des ovaires sur eux. 4. Préparation de l'imagerie Amener le tampon d'activation préparé 15 à la température ambiante. Note: Le tampon d'activation est un tampon hypotonique: 3,3 mM , NaH 2 PO 4, 16,6 mM de KH 2 PO 4, NaCl 10 mM, KCl 50 mM, 5% de polyéthylèneglycol 8000, CaCl2 2 mM, porté à pH 6,4 avec un mélange 1: 5 rapport de NaOH: KOH.Pour plus d' informations , voir Mahowald 1983 15. Aliquotes de tampon d'activation peut être stocké à -20 ° C pendant des mois et à 4 ° C pendant 2 semaines. transporter soigneusement préparés, des lamelles tampon d'activation et de pipettes en verre vers l'installation d'imagerie. Note: Un grand champ, confocal, disque tournant ou d'une feuille microscope optique peuvent être utilisés. Nous vous recommandons d'utiliser un microscope inversé. Nos résultats représentatifs ont été obtenus en utilisant un microscope confocal. Un objectif approprié pour l'imagerie de l'ensemble ovule mature doit être choisi (ici: 20X 0,7 NA). Monter la première lamelle préparée à l'étape de microscope. Prenez soin de ne pas briser les lamelles sur la scène. sélectionnez Qualitativement un champ de vision avec une chambre d'ovule mature pour l'activation. Ne pas l'image ponctionné chambres d'œufs ou ceux avec bourgeonnement dans la membrane. Remarque: Pour les étapes 4.6 – 4.7, les commandes logicielles varient en fonction de microscope et le fabricant. Set para d'imageriemètres pour l'excitation standard GFP (488 nm) et d'émission (500-580 nm). Également mis en place une vue à champ lumineux afin de visualiser et d'orienter l'ovule mature et huile déplacée. Sélectionnez le plus bas Z-plan où les oeufs matures sont visibles et définir un Z-pile complète à prendre pour 40 um à environ 2 pm par étape. Réglez les paramètres donc il n'y a pas de délai entre l'acquisition Z-stack. Définir la série de temps pour capturer pendant environ 30 min. 5. Activation de l' imagerie ex vivo d' oeuf Lancer la capture d'image. Attendre 1 – 2 Z-piles complètes à acquérir. Ceci montre l'ovule mature avant l'activation. Retirer environ 300 ul de tampon d'activation dans une pipette en verre. Le positionnement de la pointe de la pipette en verre contenant un tampon d'activation à un angle de 45 ° au-dessus de la lamelle, déplacer lentement la pipette dans la trajectoire du faisceau jusqu'à ce qu'il soit directement au-dessus de l'œuf mûr imagée. La pipette de verre devraitêtre de 1 – 2 cm au-dessus de l'huile. Ajouter 1 – 2 gouttes de tampon d'activation en moins de 5 secondes de la pipette en verre. Cela devrait déplacer l'huile. Évitez d'ajouter un tampon d'activation en excès ou en touchant l'œuf avec la pipette en verre, car il peut provoquer le déplacement de l'ovule mature. Prenez soin de ne pas toucher la lamelle avec la pipette, car cela peut provoquer un changement dans le plan ou bulles d'air focaux pour former dans l'huile d'immersion entre l'objectif et la lamelle. Alors que l'ajout d'un tampon d'activation lors de l'acquisition d'image, vérifiez le canal champ lumineux pour veiller à ce que l'huile a été déplacé par le tampon d'activation. Note: Ceci apparaît d'abord comme une ombre due à la pipette briser la trajectoire du faisceau, mais se traduira également par l'apparition de petites gouttelettes d'huile. Quelques gouttes d'huile peuvent rester associé à l'ovule mature qui aura une incidence sur les résultats expérimentaux et la qualité de l'image. Si l'huile ne soit pas déplacé à partir de la première addition de répéter les étapes d'activation du tampon de 5,4 à 5.6. Lorsque l'huile est déplacée avec succès, permettre à la série temporelle de fonctionner jusqu'à son achèvement. Remarque: En raison de l'enflure des ovocytes à l'activation, certaines chambres d'œufs vont se déplacer de façon spectaculaire sur le plan ou le champ de vision central lors de l'addition de tampon d'activation. Dans cette situation, arrêtez l'acquisition et monter la prochaine lamelle. Après la séquence d'images a complété l'acquisition, enregistrer les données. 6. Post-acquisition Traitement d'image Ouvrez le jeu de données à l'aide de Fidji (http://fiji.sc/Downloads#Fiji), ou d'un logiciel équivalent de traitement d'image, et sélectionnez les fichiers pertinents pour l'analyse. Pour construire une projection des données acquises sélectionnez: Image> Piles> Z-projet. Sélectionnez un début Z-slice et un arrêt Z-slice, généralement toute la section. Sélectionnez un type de projection, généralement réglé sur 'Max Intensité. Cochez la case à cocher "All Time Frames 'pour appliquer les paramètres sélectionnés pour toute la série. Siplus d'un canal fluorescent a été imagé, utilisez l'outil de canaux pour permettre le mouvement entre les couleurs, faire un composite, ou faire de l'image en niveaux de gris. Sélectionnez Image> Couleurs> Canaux outil. Pour régler la luminosité de l'image et le contraste sélectionnez Image> Réglages> Luminosité / Contraste. Pour exporter une seule image, déplacer curseur calendrier au cadre pertinent et sélectionnez Fichier> Enregistrer sous> Jpeg, ou tout autre format préféré. Choisissez un emplacement et le titre pour le fichier exporté, puis enregistrez. Remarque Le taux à partir du logiciel d'imagerie de trame sera nécessaire pour donner un horodatage sur l'image. Pour exporter la série chronologique comme un film sélectionnez: Fichier> Enregistrer sous> AVI, puis sélectionnez la cadence (~ 7 images par seconde). Choisissez un emplacement et le titre pour le fichier exporté, puis enregistrez. Pour enregistrer le fichier ajusté au format Fidji, sélectionnez Fichier> Enregistrer.