Summary

Ковалентного связывания антител с целлюлозой дисков бумаги и их применение в видимую невооруженным глазом колориметрические иммуноанализа

Published: October 21, 2016
doi:

Summary

In this manuscript, periodate oxidation and glutaraldehyde cross-linking methods for covalent immobilization of antibodies on paper discs are presented. The binding activity of immobilized antibodies was evaluated. Based on these results, a glutaraldehyde cross-linking method was used to develop a novel paper-based immunoassay for immunoglobulin G (IgG) detection.

Abstract

В настоящем докладе представлены два метода для ковалентной иммобилизации антител захвата на целлюлозный фильтр сорта бумаги № 1 (фильтровальной бумаги среднего потока) диски и комплектация № 113 (фильтровальная бумага быстро потока) дисков. Эти диски целлюлозной бумаги были привиты с аминными функциональными группами посредством силана методики сочетания, прежде чем антитела иммобилизовали на них. Окислению солью йодной кислоты и глутаральдегид методы сшивания использовали для прививки захвата антител на бумаге из целлюлозы дисков. Для того, чтобы обеспечить максимальную связывающую способность антител захвата к цели после иммобилизации, исследовали влияние различных концентраций периодата натрия, глутаровый альдегид, а также захватить антител на поверхности бумажных дисков. Антитела, которые были нанесены на аминных функционализованных целлюлозной бумаги дисков через глутаральдегид сшивающего агента показал повысить активность связывания мишени по сравнению с методом окисления периодатом, IgG (в сыворотке мыши эталонной) использовали в качестве эталонной цели в данном исследовании, чтобы проверить применение ковалентно иммобилизованных антител через глутаровый альдегид. Новый документ на основе, твердофазный иммуноферментный анализ (ELISA), был успешно разработан и утвержден для выявления IgG. Этот метод не требует оборудования, и он может обнаружить 100 нг / мл IgG. Фильтровальная бумага быстропроточных был более чувствителен, чем бумажный фильтр среднего потока. Инкубационный период этого анализа был коротким и требует небольших объемов образцов. Это невооруженным глазом, колориметрический иммунологический может быть расширен для обнаружения других целей, которые определены с обычным ELISA.

Introduction

Диагностическое исследование пункт-ухода тестирование (POCT) имеет важное значение для разработки новых стратегий для терапии, персонализированной медицины и ухода на дому 1. Целлюлоза документы широко используются в качестве платформ в иммунологических, так как они являются дешевыми, доступными и привычными для пользователей 2. Кроме того, пористая структура целлюлозной бумаги обладает силой управлять поток жидкости без дополнительного энергетического воздействия. Записи на бумажной основе биоанализа можно найти еще в 20 – м веке, когда бумажная хроматография была впервые изобретен в 1952 году Наиболее распространенным примером является Иммунохроматографические испытания 3, такие как беременность и тест – полосок диабет. Эти тесты обеспечивают относительно быстрое время этого анализа и недорогой анализ 4. Из – за своей простоты, эти обычные тесты полоска бумаги широко используются в Poct диагностики 5.

Методы обнаружения , включая колориметрического 6, электрохимические 7, и 8 Электрохемилюминесценцию методы были зарегистрированы для измерения целевых показателей в биологических пробах. В дополнение к этим количественным методам, надежным методом иммобилизации антител на бумаге из целлюлозы также имеет важное значение для разработки диагностических устройств. Неспецифической адсорбции является основной стратегией для модификации антител на поверхности бумажных устройств 9, 10 , чтобы обеспечить максимальную связывающую способность к их целям после иммобилизации. Тем не менее, предыдущее исследование показали , что антитела , которые адсорбируются на целлюлозной бумаги могут десорбируют из волокон 11 на 40%. Таким образом, прямой адсорбции антител на целлюлозы не может обеспечить воспроизводимые результаты 12. Ковалентной иммобилизации антител , которые прививают на поверхности бумаги является альтернативным способом разработки эффективных бумажных биоанализа 13. Различные методы были зарегистрированы для модификации целлюлозы 14, 15 </sup>. В идеале, антитела должны сохранять свою первоначальную функциональность после иммобилизации 12. Карбонилдиимидазола в сочетании с 1-циано-4-dimethylaminopyridinium тетрафторбората 16; 1-фтор-2-нитро-4-azidobenzene посредством стратегии активации УФ на основе 17, 18; chemoenzymatic стратегия , основанная на ксилоглюкана модификации 19; 1,4-phenylenediisothiocyanate связывающий агент 20; гетерополисахарный окисление 21 химия нажмите 22; и катионные порфирины 23 были использованы для ковалентно иммобилизации биомолекул на бумаге из целлюлозы. Хитозан модифицированная бумага была использована для разработки immunodevices 24-26 на бумажной основе , поскольку она богата и биосовместимый 27. Хитозан является катионным и прочно прилипает к анионным целлюлозы 27. Антитела захвата иммобилизуют на бумаге через хитозана покрытия и глутаральдегида сшивания. Периодатное окисления является еще одним способом для прививания САРТURE антитела на целлюлозной бумаге 28. В этом методе, периодата натрия наносили на бумагу, чтобы преобразовать 1,2-дигидроксильного (гликоль) группы в целлюлозе непосредственно в альдегидные группы. Эти альдегидные группы затем используются для формирования ковалентных связей между полисахаридами и антителами 28. Хотя изготовление проста, трудно полностью промыть периодата натрия. Немытая периодата натрия может вызвать дальнейшее окисление антител, иммобилизованных на бумаге из целлюлозы, влияющих на активность и стабильность антител N -. (3-диметиламинопропил) – N -ethylcarbodiimide гидрохлорид и N -hydroxysuccinimide сшиватели также используются для ковалентно иммобилизации антитела на electrospun поли-L-молочной кислоты и ацетата целлюлозы нановолокон для развития нановолокон на основе анализов 29.

В этом исследовании силановый метод св зывани использовали дл прививки аминные функциональные группы на cellulosе бумажные диски. Этот метод позволяет сохранить первоначальный размер пор, впитывания и скорость фильтрации из целлюлозного фильтра бумаг, что позволяет максимальный вертикальный проточные в иммунологических. Методика силановый широко используется в биосенсоров для функционализации поверхностей подложек с вторичными аминогруппами, с последующим дальнейшим использованием модификации биомолекул. Прививка аминных групп на поверхности матрицы включает реакцию конденсации между группами -ОН органофункционального силана агентов и подложкой матрицы 30. Диски целлюлозной бумаги были функционализированные с аминогруппами силиконовым соединением через 3-аминопропилтриметоксисилана (APS) 31. За этим последовало ковалентно иммобилизации антител захвата с использованием двух различных методов. Первый метод включает связывание периодатом окисленные антител захвата к аминогруппами целлюлозной бумаги дисков. Второй метод, используемый глутаральдегида в качестве сшивающего агента для прикрепления захвата antibodiэс в амин-функционализированные группы бумажной целлюлозы дисков. Наличие антител захвата было подтверждено кроличьей античеловеческой IgG-изотиоцианат флуоресцеина (FITC), с помощью флуоресцентного молекулярного формирования изображения. Активность связывания кроличьей античеловеческой IgG-FITC с козьими антителами против IgG кролика также оценивали с помощью субстрата пероксидазы. Исследовали влияние различных концентраций периодата натрия, глутаровый альдегид, и захват антител. Испытание применение иммобилизованного антитела захвата была успешно выполнена путем выявления IgG сыворотки.

Protocol

1. Прививка Амин функциональные группы на целлюлозе бумаги Диски Приготовьте один кусок квадратной бумаги с размером 1 см × 1 см, и 100 бумажных дисков, изготовленных из класса №1, целлюлозной бумаги диаметром 6,0 мм (фильтровальная бумага среднего потока) с использованием дырокола. </l…

Representative Results

Рисунок 3. ИК – фурье (FTIR) спектры необработанной и APS обработанного фильтром среднего потока квадратного бумаги (A) и фильтр быстрого потока квадратной бумаги (B). A. Спектры для необработанно…

Discussion

Прямое покрытие, очищенный по сродству козьего анти-мышиного IgG-Fc захвата антитела на немодифицированной целлюлозы бумажных дисков проводили для определения концентраций IgG. Результаты показали, что, кроме того фиксация антител захвата необходима для воспроизводимости. Метод Силан б?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was financially supported by the Ministry of Education, Singapore through the Translational and Innovation Grant (MOE2012-TIF-2-G-009).

Materials

Cellulose filter paper, Grade1 (medium flow filter paper) GE Healthcare Pte Ltd Singapore  1001 110
Cellulose filter paper, Grade113 (Fast flow filter paper) Sigma-Aldrich, Singapore 1113-320
3-​Aminopropyl​trimethoxysilane Sigma-Aldrich, Singapore T1255 >96%
Glutaraldehyde Sigma-Aldrich, Singapore G6257 Grade II, 25% in H2O
Surfactant Tween-20, Sigma-Aldrich, Singapore P2287
Bovine serum album  Sigma-Aldrich, Singapore A2153
Skimmed milk powder Louis François  Packed by Kitchen Capers, Singapore
Tris base Promega H5135
Sodium periodate Merck 106597
Na2HPO4 Merck 106585
KH2PO4 Merck 104873
NaCl CALBIOCHEM 567441
NaOH Merck 106462
HCL Merck 100317
phosphate buffer saline (PBS) N/A N/A PBS, containing 137 mmol/L NaCl, 2.7 mmol/L KCl, 8.0 mmol/L Na2HPO4 and 1.5 mmol/L KH2PO4, is prepared with water and adjusted to pH 7.4 with 0.1 mol/L NaOH or 0.1 mol/L HCl
Acetone Tee Hai Chem Pte Ltd Singapore 9005-68
Mixture of TMB and hydrogen peroxide solution  1-Step ultra TMB-ELISA solution , Thermo Scientific Pierce 34029 1 L
Rabbit anti-human IgG-FITC TWC/Bio Pte Ltd Singapore sc-2278
Peroxidase conjugated goat anti-rabbit IgG TWC/Bio Pte Ltd Singapore sc-2030
Affinity purified goat anti-Mouse IgG-Fc coating antibody Bethyl Laboratories, Inc A90-131A
Mouse reference serum Bethyl Laboratories, Inc RS10-101-5 9.5 mg/mL
HRP conjugated goat anti-mouse IgG-Fc detection antibody Bethyl Laboratories, Inc A90-131P
Equipment
Fourier transform infrared spectrophotometer Shimadzu IR Prestige-21  N/A
Fluorescence molecular imager Pharos FXTM plus molecular imager, Bio-Rad, Singapore N/A
Oven NUVE FN500 N/A
Turbo mixer VM-2000 MYC LTD N/A
Image J RGB, free download N/A

References

  1. Curtis, K. A., Rudolph, D. L., Owen, S. M. Rapid detection of HIV-1 by reverse-transcription, loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP). J. Virol. Methods. 151 (2), 264-270 (2008).
  2. Martinez, A. W., Phillips, S. T., Carrilho, E., Thomas, S. W., Sindi, H., Whitesides, G. M. Simple telemedicine for developing regions: camera phones and paper-based microfluidic devices for real-time, off-site diagnosis. Anal. Chem. 80 (10), 3699-3707 (2008).
  3. Lode, P. V. Point-of-care immunotesting: approaching the analytical performance of central laboratory methods. Clin. Biochem. 38 (7), 591-606 (2005).
  4. Posthuma-Trumpie, G. A., Amerongen, A. V., Korf, J., Berkel, W. J. V. Perspectives for on-site monitoring of progesterone. Trends Biotechnol. 27 (11), 652-660 (2009).
  5. Lim, D. V., Simpson, J. M., Kearns, E. A., Kramer, M. F. Current and developing technologies for monitoring agents of bioterrorism and biowarfare. Clin. Microbiol. Rev. 18 (4), 583-607 (2005).
  6. Li, X., Tian, J., Shen, W. Progress in patterned paper sizing for fabrication of paperbased microfluidic sensors. Cellulose. 17 (3), 649-659 (2010).
  7. Nie, Z., et al. Electrochemical sensing in paper-based microfluidic devices. Lab Chip. 10, 477-483 (2010).
  8. Delaney, J. L., Hogan, C. F., Tian, J., Shen, W. Electrogenerated chemiluminescence detection in paper-based microfluidic sensors. Anal. Chem. 83 (4), 1300-1306 (2011).
  9. Oh, Y. K., Joung, H. A., Kim, S., Kim, M. G. Vertical flow immunoassay (VFA) biosensor for a rapid one-step immunoassay. Lab Chip. 13 (5), 768-772 (2013).
  10. Cheng, C. M., et al. Paper-based ELISA. Angew. Chem. 122 (28), 4881-4884 (2010).
  11. Jarujamrus, P., Tian, J., Li, X., Siripinyanond, A., Shiowatana, J., Shen, W. Mechanisms of red blood cells agglutination in antibody-treated paper. Analyst. 137 (9), 2205-2210 (2012).
  12. Credou, J., Volland, H., Dano, J., Berthelot, T. A one-step and biocompatible cellulose functionalization for covalent antibody immobilization on immunoassay membranes. J. Mat. Chem. B. 1, 3277-3286 (2013).
  13. Kong, F., Hu, Y. F. Biomolecule immobilization techniques for bioactive paper fabrication. Anal. Bioanal. Chem. 403, 7-13 (2012).
  14. Orelma, H., Teerinen, T., Johansson, L. S., Holappa, S., Laine, J. CMC-modified cellulose biointerface for antibody conjugation. Biomacromolecules. 13, 1051-1058 (2013).
  15. Yu, A., et al. Biofunctional paper via covalent modification of cellulose. Langmuir. 28 (30), 11265-11273 (2012).
  16. Stollner, D., Scheller, F. W., Warsinke, A. Activation of cellulose membranes with 1,1′-carbonyldiimidazole or 1-cyano-4-dimethylaminopyridinium tetrafluoroborate as a basis for the development of immunosensors. Anal Biochem. 304 (2), 157-165 (2002).
  17. Bora, U., Sharma, P., Kannan, K., Nahar, P. Photoreactive cellulose membrane – a novel matrix for covalent immobilization of biomolecules. J. Biotechnol. 126 (2), 220-229 (2006).
  18. Sharma, P., Basir, S. F., Nahar, P. Photoimmobilization of unmodified carbohydrates on activated surface. J Colloid Interface Sci. 342 (1), 202-204 (2010).
  19. Brumer, H., Zhou, Q., Baumann, M. J., Carlsson, K., Teeri, T. T. Activation of crystalline cellulose surfaces through the chemoenzymatic modification of xyloglucan. J. Am. Chem. Soc. 126 (18), 5715-5721 (2004).
  20. Araujo, A. C., Song, Y., Lundeberg, J., Stahl, P. L., Brumer, H. Activated paper surfaces for the rapid hybridization of DNA through capillary transport. Anal Chem. 84 (7), 3311-3317 (2012).
  21. Xu, C., Spadiut, O., Araujo, A. C., Nakhai, A., Brumer, H. Chemo-enzymatic Assembly of Clickable Cellulose Surfaces via Multivalent Polysaccharides. ChemSusChem. 5 (4), 661-665 (2012).
  22. Filpponen, I., et al. Generic method for modular surface modification of cellulosic materials in aqueous medium by sequential "click" reaction and adsorption. Biomacromolecules. 13 (3), 736-742 (2012).
  23. Feese, E., Sadeghifar, H., Gracz, H. S., Argyropoulos, D. S., Ghiladi, R. A. Photobactericidal porphyrin-cellulose nanocrystals: synthesis, characterization, and antimicrobial properties. Biomacromolecules. 12 (10), 3528-3539 (2011).
  24. Zang, D., Ge, L., Yan, M., Song, X., Yu, J. Electrochemical immunoassay on a 3D microfluidic paper-based device. Chem. Commun. 48 (39), 4683-4685 (2012).
  25. Ge, L., Yan, J. X., Song, X. R., Yan, M., Ge, S. J., Yu, J. H. Three-dimensional paper-based electrochemiluminescence immunodevice for multiplexed measurement of biomarkers and point-of-care testing. Biomaterials. 33 (4), 1024-1031 (2012).
  26. Wang, S., et al. Paper-based chemiluminescence ELISA: lab-on-paper based on chitosan modified paper device and wax-screen-printing. Biosens. Bioelectron. 31 (1), 212-218 (2012).
  27. Koev, S. T., et al. Chitosan: an integrative biomaterial for lab-on-a-chip devices. Lab Chip. 10, 3026-3042 (2010).
  28. Wang, S. M., et al. Simple and covalent fabrication of a paper device and its application in sensitive chemiluminescence immunoassay. Analyst. 137 (16), 3821-3827 (2012).
  29. Sadira, S., Prabhakaranc, M. P., Wicaksonob, D. H. B., Ramakrishna, S. Fiber based enzyme-linked immunosorbent assay for C-reactive protein. Sensor Actuat B-Chem. 205, 50-60 (2014).
  30. Koga, H., Kitaoka, T., Isogai, A. In situ modification of cellulose paper with amino groups for catalytic applications. J. Mater. Chem. 21, 9356-9361 (2011).
  31. Klemm, D., Heublein, B., Fink, H. P., Bohn, A. Cellulose: fascinating biopolymer and sustainable raw material. Angew. Chem., Int. Ed. 44 (22), 3358-3393 (2005).
  32. Fernandes, S. C. M., et al. Bioinspired antimicrobial and biocompatible bacterial cellulose membranes obtained by surface functionalization with aminoalkyl groups. ACS Appl. Mater. Interfaces. 5 (8), 3290-3297 (2013).
  33. . . Pharos FX plus molecular imager instructions, Catalog Number 170-9460. , (2005).
  34. Tee, Y. B., Talib, R. A., Abdan, K., Chin, N. L., Basha, R. K., Yunos, K. F. M. Aminosilane-grafted cellulose. BioResourses. 8 (3), 4468-4483 (2013).
  35. Xing, Y., et al. Bioconjugated quantum dots for multiplexed and quantitative immunohistochemistry. Nat Protoc. 2, 1152-1165 (2007).
  36. Guidi, A., Laricchia-Robbio, L., Gianfaldoni, D., Revoltella, R., Del Bono, G. Comparison of a conventional immunoassay (ELISA) with a surface plasmon resonance-based biosensor for IGF-1 detection in cows’ milk. Biosens Bioelectron. 16, 971-977 (2001).
  37. Ahmed, S., Bui, M. N., Abbas, A. Paper-based chemical and biological sensors: Engineering aspects. Biosens Bioelectron. 77, 249-263 (2016).

Play Video

Cite This Article
Peng, Y., Gelder, V. V., Amaladoss, A., Patel, K. H. Covalent Binding of Antibodies to Cellulose Paper Discs and Their Applications in Naked-eye Colorimetric Immunoassays. J. Vis. Exp. (116), e54111, doi:10.3791/54111 (2016).

View Video