網膜色素上皮(RPE)の交換戦略と遺伝子ベースの治療は、いくつかの網膜変性条件のために考慮されています。臨床翻訳のために、大きな目の動物モデルは、患者において適用外科技術を研究するために必要とされます。ここでは、汎用性とコスト効率であるRPE移植、に向けた網膜下手術のためのウサギモデルを提示します。
加齢黄斑変性症(AMD)、網膜色素変性症、および他のRPE関連疾患は、工業先進国における成人の視力の不可逆的な損失のための最も一般的な原因です。 RPE移植は、それが、機能不全RPEを交換し、その機能、およびそれによって視力を回復することができるように、有望な治療法であると思われます。
ここでは、ウサギの網膜下腔(SRS)に足場上で培養RPE単層を移植する方法について説明します。硝子体切除異種移植は、ポリテトラフルオロエチレン(PTFE)コーティングされたプランジャーと20ゲージの金属ノズルからなるカスタムメイドのシューターを使用して、SRSに送達された後。現在の技術では、6年間で150以上のウサギの手術で進化しました。術後フォローアップは、灌流固定し、組織学に続くスペクトル領域光コヒーレンストモグラフィ(SD-OCT)などのインビボイメージングにおける非侵襲的および反復使用して得ることができます。
目E法は簡単学習と高い成功率のために明確に定義されたステップを有します。ウサギは、臨床翻訳のための前臨床試験で大きな目の動物モデルが有用であると考えられます。この文脈において、ウサギは他の大規模な眼の動物モデルへのコスト効率の高い、おそらく便利な代替手段です。
加齢黄斑変性症(AMD)は、中心視力の低下を引き起こすとして、工業先進国では50歳以上の成人の視覚障害の最も一般的な原因です。これらの患者の約15%が血管新生を脈絡膜に由来し、網膜機能1を破壊する疾患の「ウェット」フォーム、苦しみます。この変異体は、抗血管形成薬2の反復内硝子体注射で非常に効果的な治療法によって治療することができます。しかし、患者の大部分(〜85%)は、網膜色素上皮(RPE)の下での細胞外沈着物( 例えば 、ドルーゼン)によって特徴付けられる乾燥形態、苦しみます。これらの堆積物は、黄斑の網膜萎縮につながるRPEの機能障害を引き起こします。任意の根治治療選択肢の欠如を考えると、AMDは、多くの異なる根治治療的アプローチが試験されている集中的に開発する研究分野、へと進化しました。外科RPEの交換がありますこの衰弱性疾患3を倒して1魅力的な未来の可能性。
自家網膜下RPE移植が黄斑に機能不全または失われたRPEに置き換えられ、その生理機能4-9を回復させる可能性を秘めています。この手術法は、科学者に移植10 RPEの無限の細胞源を与えて、ヒト胚性幹細胞(hESCの)と人工多能性幹細胞(IPSC)からのRPE分化プロトコルの開発に突破口を有していました。 RPE移植は現在、幹細胞由来の治療のための魅力的なファースト・イン・ヒューマンアプリケーションとして認識されています。目は、 インビボ監視ツール11-13 で優れた外科的アクセスと洗練されたを提供しています。
RPE移植するために、一つの方法は、より良好なRPE特性および移植の機能を維持するために、あるいは、人工キャリアSUBSTRの細胞懸濁液を使用して低侵襲性送達にありますRPEの交換のためのATE(足場)は4,14,15検討されています。大型の動物モデルは、前臨床検証に必要とされる、まだ動物の取り扱いと手術手技に関する詳細な技術情報は、16-23とデートするために不足しています。
それは、より安全なハンドリングを提供し、単層の完全性と機能性を保持するように我々とは逆25にいくつかの証拠にもかかわらず、他のもの11,24は 、硬質まだ弾性キャリア基板の使用を示唆しています。時間が経つにつれて、私たちは、網膜下腔(SRS)への細胞キャリアサポートRPE移植の移植のためのいくつかのカスタム設計の器具および補助技術をテストしています。私たちは、移植の成功14,26,27を評価するために、スペクトルドメイン光コヒーレンストモグラフィー(SLO / SD-OCT)、および組織学と組み合わせた生体内走査レーザー検眼鏡では 、術中ビデオ録画を利用しました。ここでは、ウサギの網膜下のRPE移植のための私達の現在の勧告を提供し、これは、150以上の手順で、5つの異なるウサギ株、7セル担体材料と4 RPE細胞源で試験しました。
ウサギモデルを使用して、安全かつ再現性のある方法は、カスタム設計されたシューティングゲーム機器との網膜下腔への細胞のキャリア上で培養RPEのtransvitreal配信のために提示されています。それは網膜下演習と硝子体切除術における標準的な技術を必要とするように記載されている方法は、簡単な学習のためのショート/最適化された外科技術を提供しています。結果は非常にきれいな硝子体網膜インタフェース、および乾燥を通して網膜と強膜損傷を防止する、低IOPでブレブ網膜剥離(BRD)を誘導、移植部位の上に流体乱流を回避眼内注入、およびウサギの適切な配置によって促進されます。
我々は、例えば、移植の成功を妨げ、いつでも発生する可能性があるいくつかの術中合併症として、しかし警告する眼内出血、麻酔、このような注入などの重要なステップの間にオフフェージングによる機器の操作や眼の低眼圧症にBRDの崩壊、 R低酸素性脳損傷、または温熱療法を引き起こす長い操作中に麻酔、低血圧の過剰投与量に起因するabbit死。しかし、これらの合併症は、彼らはすぐに手術チームの経験を増加させることによって取り組まれ、解決された場合、時間とともに減少します。
いくつかの合併症にはいくつかの簡単な、まだ決定的な手順に従うことによって低減することができました。運転中に角膜、強膜および結膜の損傷を防ぐために、そして明確な眼内メディアは、乾燥したとして/黒くなっ強膜が順番に眼の低眼圧症とにつながる創傷裂開の原因であってもよく、維持するために10分 – 潤滑剤は、すべての5を追加する必要があります/またはsclerotomiesから術中の漏れ。ヘパリンは、ヘパリン16の下出血を減少させるためにエピネフリンを加える同時に挑戦特に網膜下注入を行い、フィブリン膜の形成を防止するために添加されるべきです。あまりにも長い間ヘパリン/エピネフリンの露光時間(> 1時間)は、角膜EDEを防ぐために避けるべきです内皮代償33、高血圧性危機や術中の死亡によってミリアンペア。細心の硝子体の除去は、網膜および/または脈絡膜剥離を回避するために、機器(エントリー)ポートで実行されなければなりません。眼内の機器は、レンズタッチ(医原性白内障の形成を引き起こす)または(侵入部位)網膜の損傷を避けるために、後極に向かって指摘されるべきです。それは、このように制御されていない網膜切開の引き裂き、そしてBRDの崩壊を防止し、注入領域の周囲にジェット気流を減衰させるような眼内側ポート注入カニューレは、使用されるべきです。 BRD正中線における誘導(視神経から縦軸)や視神経髄繊維に近い大規模な医原性網膜剥離を防ぐために避けるべきです。最後に、最後が、少なくともBRDが網膜の損傷につながる可能性があり、過度の流量を使用して( 例えば 、延伸により)網膜下BSS注入を避けるために、低IOPで誘導されるべきではありません。
このような細胞キャリーなどの多くの研究変数r個の変異体、胎児、成人または幹細胞由来のRPE細胞源、免疫抑制のための選択肢は、 など 。、14,26,27,34を検討することができます。このような無血清RPE培養法、網膜下腔におけるxenoRPEの特性、インプラント足場用のホストRPE層14や戦略の除去などのさらなる改善は、進行中の現在の仕事です。
記載された技術は、チンチラの野郎、チンチラろくでなし/ KBLハイブリッド、ニュージーランドホワイト/赤十字、ニュージーランドホワイト(アルビノ)とオランダのベルトを含む5種類のウサギ株、上で使用されてきた今日まで。雄と雌のウサギの両方が(種に依存)、ウサギ、少なくとも1.5キロや年齢の2ヶ月で、操作されました。 3キロ – ほとんどの手術は2.5間の重みで着色されたウサギ(チンチラろくでなしまたはチンチラろくでなしハイブリッド)にありました。
私たちが仕事をする機会を持っていたウサギの株のすべては、いくつかの特殊性を持っているように思われます。 exclusを考えます2009-13におけるドイツのチンチラろくでなし株の着色されたウサギのアイブの可用性は、我々は、これらの動物で最も経験を収集しています。残念ながら、それは繁殖が中止されているので、使用できなくなりましたが、後者でより有利な厚い強膜とより大きな目のボリューム以外のニュージーランドホワイト/赤十字に非常によく比較されます。チンチラろくでなしハイブリッドは重要な術中フィブリン形成を有しており、上記のように成功した網膜下操縦を確保するために、ヘパリン/エピネフリンの使用を必要とします。このプロトコルはまた、非着色アルビノウサギ(ニュージーランドホワイト)で行わしかし、特にBRD作成および網膜下注入が減少し、コントラスト感謝与えられたより挑戦的であるされています。後部硝子体剥離を誘発する可能性は、私たちの手に依存ウサギ株を思えませんでした。
Transvitreal網膜下の配信は、おそらくそれが最もCOMMある与えられた選択肢の将来の外科的戦略でありますルート上に、今日臨床的に網膜にアクセスします。その結果、多くの他のグループは、キャリア上で培養RPEのためのこのような技術を提示してきたように、動物の作業11,15,23,35に対応しています。 Aramant ら 36は、配置ではなく、その網膜下の標的部位へのハイドロゲルカプセル化ソフトインプラントをプッシュ楽器を、持っています。トゥマンらの設計は。流体注入19を介してそれを浮遊させることによって、キャリア・サポートグラフトを解放中空へらを利用します。どちらも前者の戦略はepiretinally appositioned楽器と比較した場合、我々の見解では、合併症になりやすいです楽器の網膜下挿入を必要とします。モンテスマら 22は、ブタの網膜下チップインプラントの送達のための網膜下挿入器具を説明したが、それ以上の仕事は、私たちの知る限り以降に発行されていません。私たちは、豚にいくつかの変更で説明した手法を拡張することができました。
jove_content ">我々の好ましい細胞キャリアは10ミクロンの厚さのポリエステルテレフタレート(PET)膜である。外科的な観点から、この物質は、細胞培養実験中のその広い汎用性に加え、良好な剛性と弾力性のパラメータを持っている。我々が展開テトラフルオロエチレンで同じような経験を発見しました37またはナノファイバー膜PET、ポリ乳酸/ capronolactic酸(PLCL)またはポリからエレクトロスピニング(ePTFEの) – 。乳酸-コ-グリコール酸(PLGA)、ならびに複合ナノファイバー(PLGAまたはPET)と極薄PET 26た場合PET膜は、当社の金属製のシューティングゲーム機器で使用され、それらはシューター27から自分の噴出に挑戦静電荷を、発揮する臨時の傾向を持っています。超薄ポリイミド膜は私たちの手で上に概説したプロトコルで網膜下腔に移植することができませんでした(原稿準備中)。Marmor ら 。体系的に自発的なRESOを検討してきました医原性局所的な網膜剥離における網膜下液のrption 38-41。網膜下腔であっても、次の操作は、これらは平穏の手術で、術後4日目までに再吸収されることが見出されました。レーザー網膜復位は網膜切開の縁を固定するために実行されません。直感に反する人間の手術と比較した場合が、空気/ガスタンポナーデは必要ありません。周辺硝子体の綿密な除去を達成することができない限り、特に優れた象限に、これは、実際に網膜切開部位由来の巨大網膜裂傷を生じ得ます。唯一の術中医原性網膜剥離または特定のインプラントの位置を確保する必要がある場合にをサルベージするために、後続の20%SF6ガスタンポナーデと流体空気交換を行うことを推奨します。
神経網膜の機械的に誘発されるアブレーションはウサギ42,43にRPEと光受容体の損傷を引き起こす可能性がありますが、その程度は(たとえ正規のBSSで)大きく変動するデこのような等引き伸ばし、それによって誘発された網膜で使用IOP、シリンジタイプ、注入量、などの要因に保留中。我々はまた、多くの場合、お勧めのCa / Mgを無料でBSSが剥離42-44を容易にテストしたが、それは(特に高温で)術中レンズ混濁の原因となり、大幅に遅延させ、さらには、網膜再付着27を損なうことを見出しました。 20のスロー網膜下注射 – 100μlの注射器との定期的なBSS30μlの体積は、したがって、お勧めします。注射針の動きはその周り網膜切開のシールので、最小限であるとブルッフ膜の損傷を防ぐ必要があります。医原性損傷のいくつかは、RPE、創傷治癒、および再付着後のONL厚さの観察された相対的な保全することによって解決することができる、また、他の人45によって記載されているようにRPE /感光体複合体は、この障害に耐えることができることを示唆しています。
細胞ベースの治療薬または網膜補綴物は、前臨床アニマを必要としますリットル試験前規制当局の承認にと人間の安全性試験を開始します。前者は国によって異なります。ここで説明するウサギモデルが確立、あるいは規制当局によるすべての要件を実施するためのコスト効率の高い、より少ない困難なプラットフォームとして機能することができます。また、その後、道に沿って、最終的な多施設臨床試験や技術のさらなる改善に外科医のトレーニングのために働くことができます。
The authors have nothing to disclose.
2008&2010(BVS)、BONFOR /ゲロク奨学O-137.0015(BVS)、BONFOR /ゲロク奨学O-137.0019(FT)、ドイツ学術協会/ DFG(BVS)STA 1135 / 2-1、中国語でリュディガー財団補助金によってサポートされています奨学金評議会第2008627116(ZL)とGeuder AG、ハイデルベルク(図2)によって無制限の助成金。 H. Skottmanの研究室、タンペレ、フィンランドの大学のメンバーは感謝して、図2に示すRPEをhES由来を提供するために認められています。
s30 ultrasonic cleaning unit | Elmasonic | 100 4631 | 2.75L |
DE-23 autoclave | Systec | C 2209 | 23L |
Syringe | BD | 300013 300995 301285 300294 300330 |
1ml x3 2ml x3 5ml x1 10ml x1 20ml x1 |
Needle | BD | 305196 305136 |
18G x 1 27G x5 |
Scalpel | Feather | 2975#20 | blade#20 x3 |
Surgical drape | HARTMANN LOHMANN & RAUSCHER |
277 502 25 440 |
60×40 cm x2 12×17 cm |
Ocular sticks | LOHMANN & RAUSCHER | 16 516 | 66×5 mm |
Twister gauze sponges | HARTMANN | 481 274 | x2 |
Closure strips | HARTMANN | 540 686 | x4 |
Opmi Visu CS Microscope | Zeiss | N/a | incl. fundus imaging system BIOM II |
Chandelier endoillumination | Geuder | G-S03503 + G-S03504 |
25G incl. trocar |
Light machine | Geuder | G-26033 | Xenotron III |
Vitrectomy machine | Geuder | G-60000 | MegaTRON S4 S4/ HPS |
Vitrector | Geuder | G-46301 | MACH2 vitreous cutter 23G |
Venturi cassette | Geuder | G-60700 | |
Sideport-infusion cannula | Geuder | custom | 1x23G |
3-0 silk suture | ETHICON | V546G | x1 |
Caliper | Geuder | G-19135 | x2 |
Vannas scissors | Geuder | G-19777 | x1 |
Sclerotomie blade | Ziemer | 21-2301 | 1x23G 1x20G |
7-0 silk suture | ETHICON | EH6162H | x1 |
Needle holder | Geuder | G-32320 | x2 |
Iris forceps | Geuder | G-18910 | x1 |
Colibri forceps | Geuder | G-18950 | x1 |
Extendible subretinal injection needle | DORC | 1270.EXT | 41G |
VR scissor | Geuder | G-36542 | 25G |
Grieshaber forceps holder | Alcon | 712.00.41 | 23G |
Curved scissor forceps tips | Alcon | 723.52 | 23G |
Implant loading station | Dow Corning | 3097358-1004 | SYLGARD 184 Silicone Elastomer Kit |
blunt oval implant trephine | Geuder | custom-made | 2.4 x 1.1 mm |
Shooter dummy | Geuder | G-32227 | x1 |
Shooter | Geuder | G-S03443 | x1 |
Flute needle | DORC | 1281.SD | 20G (Vacuum) |
Manual microliter syringe | Hamilton | 24535 | 100µl |
Tissue culture plates | Greiner bio-one | 664160 | 100 x 20 mm |
Spectralis Multi-Modality Imaging System |
Heidelberg Engineering |
N/a | Spectralis HRA + OCT |
Drugs and solutions | |||
Name | Company | Active agent | Comments |
Mucadont-IS | Merz Hygiene | virucidal instrument disinfectant | 2L |
Mucocit T | Merz Hygiene | Aldehyde-free instrument disinfectant | 2L |
Ketamin 10% | WDT | Ketamine | 10ml (100mg/ml) |
Domitor | Orion Pharma | Medetomidine hydrochloride | 10ml (1mg/ml) |
Antisedan | Orion Pharma | Atipamezole hydrochloride | 10ml (5mg/ml) |
Neosynephrin POS 10% | URSAPHARM | Phenylephrine HCl | 10ml |
Mydriacyl | Alcon | Tropicamid | 10ml (5mg/ml) |
Methocel 2% | Omni Vision | hydroxypropyl methylcellulose | 10g |
PURI CLEAR | ZEISS | Balance salt solution (BSS) | 500ml |
Glucose 5% | B.Braun | Glucose 5% solution | 100ml |
Heparin-Natrium-25 000 | Ratiopharm | Heparin | 5ml (2500 unit/ml) |
Suprarenin | SANOFI | Epinephrine | 1ml (1mg/ml) |
Triamcinolone | University of Bonn pharmacy | preservative-free Triamcinolone | 1ml (40mg/ml) |
Isoptomax eye ointment | Alcon | dexamethasone 1 mg/g neomycin sulfate 3,500 IU/g polymyxin B sulfate 6,000 IU/g |
10ml |
Betaisodona | Mundipharma | Povidon-Iod | 30ml (1g/10ml) |
Optive | ALLERGAN | sodium carboxymethylcellulose glycerol | 10ml |