Summary

Video Imaging Kartor Spatiotemporal Analysera gastrointestinal motilitet hos möss

Published: February 03, 2016
doi:

Summary

This article describes a video imaging technique and high-resolution spatiotemporal mapping to identify changes in the neural regulation of colonic motility in adult mice. Subtle effects on gastrointestinal (GI) function can be detected using this approach in isolated tissue preparations to advance our understanding of GI disease.

Abstract

Det enteriska nervsystemet (ENS) spelar en viktig roll i regleringen av gastrointestinala (GI) motilitet och kan fungera oberoende av det centrala nervsystemet. Förändringar i ENS funktion är en viktig orsak till GI-symtom och sjukdomar och kan bidra till GI-symtom rapporterats i neuropsykiatriska störningar, inklusive autism. Det är väl etablerat att isolerade kolon segment genererar spontana, rytmiska sammandragningar kallas Colonic Migrera Motor Anläggningar (CMMCs). Ett förfarande för att analysera enter neurala regleringen av CMMCs i ex vivo preparat av mus kolon beskrivs. Kolon dissekeras från djuret och spolas för att avlägsna fekalt innehåll innan de kanyl i ett organbad. Data förvärvas via en videokamera placerad ovanför organbadet och omvandlas till högupplösta Spatiotemporal kartor via en intern programpaketet. Med hjälp av denna teknik, baslinjen sammandragande mönster och farmakologiska effekter på ENS funktion i tjocktarmen segments kan jämföras över 3-4 h. Dessutom kan spelas in utbrednings längd och hastighet CMMCs samt förändringar i tarmen diameter och kontraktion frekvens. Denna teknik är användbar för att karakterisera gastrointestinala motilitet mönster i transgena musmodeller (och i andra arter, inklusive råtta och marsvin). På detta sätt, är farmakologiskt inducerade förändringar i CMMCs registreras i möss av vildtyp och i Neuroligin-3 R451C musmodell av autism. Dessutom kan denna teknik kunna användas till andra regioner i mag-tarmkanalen, inklusive duodenum, jejunum och ileum och under de olika utvecklingsåldrar i möss.

Introduction

Det enteriska nervsystemet (ENS) är det inneboende neuronala nätverk av mag-tarmkanalen och modulerar olika funktioner såsom spjälkning av tarminnehållet, upptag av näringsämnen och den sekretion och reabsorption av fluid. Neuroner i ENS är belägna i myentericus och submukosala plexus. Den myenteric plexus spelar en viktig roll i regleringen av gastrointestinal motilitet en medan submukosala plexus är primärt involverad i kontrollen av utsöndringen 2,3. Plexus myentericus är belägen mellan de längsgående och cirkulära muskelskikten i mag-tarmväggen. Den kontraktila aktiviteten av de glatta muskelskikten i tarmväggen underlättar de primära funktionerna hos mag-tarmkanalen genom att blanda och snurrtarminnehåll utmed längden av tarmen 3. Även om den yttre nervtillförseln till mag-tarmkanalen från CNS bidrar till gastrointestinal funktion in vivoÄr ENS förmåga att reglera gastrointestinal funktion oberoende av varandra. Denna unika egenskap gör den funktionella undersökning av enter neuronala kretsar och deras bidrag till gastrointestinal motilitet ex vivo.

Kolon migrerande motorkomplex (CMMCs) är spontana, neurogena händelser som är den dominerande motor mönster som observerats i isolerade mus kolon i frånvaro av fekal pellets 4-9. CMMCs definieras som rytmiska sammandragningar som propagerar längs en ​​horisontellt avstånd som är åtminstone hälften av den totala längden av tjocktarmen (dvs., från blindtarmen till ändtarmen) 10. Förhållandet mellan CMMCs och kontraktila mönster som driver fecal pellets ännu inte klart fastställas, men vissa farmakologiska skillnader har rapporterats 11. Ändå förmåga ENS att fungera oberoende av CNS och förekomsten av neurala-medierad motormönster i ISolated kolon är en idealisk analyssystem för att undersöka störningar i motilitet till följd av underliggande ENS dysfunktion. Spontanitet gastrointestinala motoriska mönster tillåter funktionella förändringar som svar på farmakologiska stimuli som ska utvärderas.

Användningen av video imaging och Spatiotemporal kartläggning utvecklades först för att kvantitativt undersöka små tarmperistaltik hos marsvin 12. Här är ett ex vivo beskrivna tekniken som gör det möjligt att studera mus kolon motilitet mönster med hjälp av video avbildning och analys av dessa inspelningar för att konstruera hög upplösning (~ 100 | im, 33 ms) kartor av kolon diameter som en funktion av läget längs kolon och tid (Spatiotemporal kartor). Använda egen programvara flankdetektering (Analyse2, tillgänglig på begäran), är data från full längd kolon segment upphandlande i realtid bearbetas för att generera Spatiotemporal kartor för varje experiment. I detta steg, video (AVI) filer summatecknat och omvandlas till Spatiotemporal kartor med Analyse2. Spatiotemporal kartor (Figur 2) visar kontraktilitet över tiden och möjliggör mätning av flera parametrar inklusive utbredningshastigheten, magnitud, längd och varaktighet. Gut diameter är också registreras under hela varaktigheten av experimentet som ett mått på den totala kontraktilitet av vävnaden segmentet. Denna metod kan användas för att identifiera skillnader i tidpunkten för initiering av kontraktila komplex som kan tyda på förändrad enter neurala anslutning.

En liknande video imaging protokoll som syftar till att bedöma pellets framdrivning hos marsvin har rapporterats 13 men här vi redogöra för tillämpningen av videoavbildningsteknik för kvantifiering av spontan motilitet i kolon (dvs i frånvaro av pellets). Vi tillhandahåller också detaljerad information för att hjälpa dissekering och beredning av mag-tarmvävnad för videoavbildningsteknik. Dettaprotokollet förser forskare med en lättillgänglig och lätt kopieras verktyg för att analysera enter neurala kontrollen av gastrointestinal funktion i djurmodeller av sjukdomen, inklusive genetiska musmodeller.

Videoavbildningsteknik möjliggör analysen av motilitet i kolon som svar på olika farmakologiska medel. Läkemedel kan administreras via tarmlumen eller organbadet utanför tarmrengöringen. Olika regioner av mus magtarmkanalen uppvisar specifika motilitet mönster såsom små tarmsegmentering och CMMCs i kolon.

Denna teknik har använts för att identifiera stamskillnader i små tarmfunktion; differentiell känslighet för 5-HT 3 och 5-HT4-antagonister observerades i jejunum hos Balb / c och C57 / BL6-möss på grund av den polymorfa naturen hos TPH2-genen uttrycks i de två stammarna 6. Effekten av 5-HT hämning på motilitet förblir conkontroversiellt, eftersom motstridiga uppgifter har rapporterats om vikten av endogena 5-HT på kolon peristaltiken och CMMCs 14,15. Förändringar i motilitet pre- och postnatalt under utveckling 7, och effekterna av genmutationer på gastrointestinal motilitet i djurmodeller av sjukdom 10 kan också undersökas genom att använda video avbildning. Här visar vi användning av metoden för en studie av kolonrörlighet i musmodellen NL3 R451C av autism, som uttrycker en missense-mutation i Nlgn3 gen som kodar synaptiska adhesionsproteinet Neuroligin-3 16. Denna mutation identifierades först hos patienter med diagnosen autism (ASD) 17, som är starkt förknippad med GI dysfunktion 18-22. Vi undersökte huruvida NL3 R451C synaptiska mutation påverkar neurala utgångar i ENS använder videoavbildningsteknik. Vi presentera data som kännetecknar CMMCs vid baslinjen och som svar på det serotonerga 5HT 3/4 receptorantagonist tropisetron i musmodell av autism NL3 R451C.

Protocol

Djurhantering och halsdislokation av djur före alla experiment utfördes helt i enlighet med protokoll som godkänts av djurförsöks kommittén för University of Melbourne (Ethics ID: 1.212.494,7) 1. Tissue Insamling och Dissection Avliva vuxna möss genom cervikal dislokation. Om möjligt undvika anestesi för att förhindra påverkan på tarmfunktion via receptorer belägna på neuronala populationer av intresse. Registrera djurets totala kroppsvikten, stift kroppen…

Representative Results

Upp till 90% av patienter med ASD uppleva en array av gastrointestinala störningar, inkluderande diarré och förstoppning 18,24,25. Men de bakomliggande orsakerna till dessa gastrointestinala problem är okända. Många mutationer som identifierats i patienter med ASD är förknippade med synaptiska proteiner som bidrar till förändringar och störningar i synaptisk överföring eller funktion. En sådan mutation, i genen som kodar för celladhesionsmolekylen neuroligin-3 (…

Discussion

Med hjälp av den här videon bildteknik, var CMMC uppmätta frekvensen som en indikation på kolonrörlighet i vild typ och NL3 R451C möss, en musmodell av autism 17. Våra resultat tyder på en minskning av antalet CMMCs i mutanta NL3 R451C-möss jämfört med möss av vildtyp i närvaro av 5HT 3/4 receptorantagonisten Tropisetron antyder att NL3 R451C möss uppvisar en ökad känslighet för Tropisetron. Följaktligen föreslår vi att den neuroligin-3 R451C mut…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

JCB och ELH-Y stöddes av US Department of Defense CDMRP Autism Research Program (AR11034). NHMRC (1047674) till ELH-Y.The May Stewart stipendie-University of Melbourne förtroende finansierade stipendium till MS. Vi tackar Ali Taher, Fátima Ramalhosa och Gracia Seger för tekniska insatser.

Materials

Reagents
NaCl (MW: 58.44) Sigma-Aldrich S7653-250G
KCl (MW: 74.55) Sigma-Aldrich P9333-500G
NaH2PO4.2H2O (MW: 156.01) Chem Supply 471-500G
MgSO4.7H20 (MW: 246.48) Chem Supply MA048
CaCl2.2H2O (MW: 147.02) Chem Supply CA033
D-Glucose anhydrous (MW: 180.16) Chem Supply GA018-500G
NaHCO3 (MW: 84.01) Chem Supply GA018-500G
Name Company Catalog Number Comments
Materials
Two chambered organ bath
Dimentions: 14 cm x 8 cm x 3 cm
Custom Made Contact Laboratory Directly 
 732 MULTI -PURPOSE SEALANT CLEAR Dow Corning Australia Pty Ltd 1890573
SYLGARD 184 SILICONE ELASTOMER KIT  Dow Corning Australia Pty Ltd 1064291
STOPCOCK 3 WAY FEM-ML L/LOCK S Terumo Medical Corporation 0912-2006
SYRINGES with Luer Lock Tips 50mL, 20 mL, 10 mL Terumo Medical Corporation N/A
1.57 mm (ID) x 3.16 mm (OD) – Silastic Tubing Masterflex 508-008
1.02 mm (ID) x 2.16 mm (OD) – Silastic Tubing Masterflex 508-005
1.50 mm (ID) x 2.50 mm (OD) – Silastic Tubing Masterflex 508-007
1.60 mm (ID) – Platinum cured silicone tubing  Masterflex 96410 – 14
4.40 mm (ID) – Platinum cured silicone tubing  Masterflex 96410 – 15 
3.10 mm (ID) – Platinum cured silicone tubing  Masterflex 96410 -16
Graduated Laboratory Glass Bottles – 500 ml      Thermofisher Scientific  100-400
CHEMICAL RUBBER STOPPER 57 x 65mm 
CHEMICAL RUBBER STOPPER 29 x 32mm
Water heater  (thermo regulator)  Ratek  TH7000 
Logitech Webcam Logitech
Name Company Catalog Number Comments
Software
Virtual Dub – 1.9 11 virtualdub.org
MATLAB R2012a  Graph Pad
Logitech Webcam Software Logitech

References

  1. Powell, A. K., O’Brien, S. D., Fida, R., Bywater, R. A. Neural integrity is essential for the propagation of colonic migrating motor complexes in the mouse. Neurogastroenterol Motil. 14, 495-504 (2002).
  2. Furness, J. B. The enteric nervous system and neurogastroenterology. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 9, 286-294 (2012).
  3. Gwynne, R. M., Bornstein, J. C. Mechanisms underlying nutrient-induced segmentation in isolated guinea pig small intestine. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 292, G1162-G1172 (2007).
  4. Bush, T. G., Spencer, N. J., Watters, N., Sanders, K. M., Smith, T. K. Spontaneous migrating motor complexes occur in both the terminal ileum and colon of the C57BL/6 mouse in vitro. Auton Neurosci. 84, 162-168 (2000).
  5. Fida, R., Lyster, D. J., Bywater, R. A., Taylor, G. S. Colonic migrating motor complexes (CMMCs) in the isolated mouse colon. Neurogastroenterol Motil. 9, 99-107 (1997).
  6. Neal, K. B., Parry, L. J., Bornstein, J. C. Strain-specific genetics, anatomy and function of enteric neural serotonergic pathways in inbred mice. J Physiol. 587, 567-586 (2009).
  7. Roberts, R. R., Murphy, J. F., Young, H. M., Bornstein, J. C. Development of colonic motility in the neonatal mouse-studies using spatiotemporal maps. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 292, G930-G938 (2007).
  8. Spencer, N. J. Control of migrating motor activity in the colon. Curr Opin Pharmacol. 1, 604-610 (2001).
  9. Spencer, N. J., Bywater, R. A. Enteric nerve stimulation evokes a premature colonic migrating motor complex in mouse. Neurogastroenterol Motil. 14, 657-665 (2002).
  10. Roberts, R. R., Bornstein, J. C., Bergner, A. J., Young, H. M. Disturbances of colonic motility in mouse models of Hirschsprung’s disease. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 294, G996-G1008 (2008).
  11. Tough, I. R., et al. Endogenous peptide YY and neuropeptide Y inhibit colonic ion transport, contractility and transit differentially via Y(1) and Y(2) receptors. Br J Pharmacol. 164, 471-484 (2011).
  12. Hennig, G. W., Costa, M., Chen, B. N., Brookes, S. J. Quantitative analysis of peristalsis in the guinea-pig small intestine using spatio-temporal maps. J Physiol. 517 (Pt 2), 575-590 (1999).
  13. Hoffman, J. M., Brooks, E. M., Mawe, G. M. Gastrointestinal Motility Monitor (GIMM). J Vis Exp. , (2010).
  14. Smith, T. K., Gershon, M. D. Rebuttal from Terence K. Smith and Michael D. Gershon. J Physiol. 593, 3233 (2015).
  15. Spencer, N. J., Sia, T. C., Brookes, S. J., Costa, M., Keating, D. J. CrossTalk opposing view: 5-HT is not necessary for peristalsis. J Physiol. 593, 3229-3231 (2015).
  16. Tabuchi, K., et al. A neuroligin-3 mutation implicated in autism increases inhibitory synaptic transmission in mice. Science. 318, 71-76 (2007).
  17. Jamain, S., et al. Mutations of the X-linked genes encoding neuroligins NLGN3 and NLGN4 are associated with autism. Nat Genet. 34, 27-29 (2003).
  18. Chaidez, V., Hansen, R. L., Hertz-Picciotto, I. Gastrointestinal problems in children with autism, developmental delays or typical development. J Autism Dev Disord. 44, 1117-1127 (2014).
  19. Ibrahim, S. H., Voigt, R. G., Katusic, S. K., Weaver, A. L., Barbaresi, W. J. Incidence of gastrointestinal symptoms in children with autism: a population-based study. Pediatrics. 124, 680-686 (2009).
  20. Kohane, I. S., et al. The co-morbidity burden of children and young adults with autism spectrum disorders. PloS One. 7, e33224 (2012).
  21. McElhanon, B. O., McCracken, C., Karpen, S., Sharp, W. G. Gastrointestinal symptoms in autism spectrum disorder: a meta-analysis. Pediatrics. 133, 872-883 (2014).
  22. Peters, B., et al. Rigid-compulsive behaviors are associated with mixed bowel symptoms in autism spectrum disorder. J Autism Dev Disord. 44, 1425-1432 (2014).
  23. Ellis, M., Chambers, J. D., Gwynne, R. M., Bornstein, J. C. Serotonin and cholecystokinin mediate nutrient-induced segmentation in guinea pig small intestine. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 304, G749-G761 (2013).
  24. Parracho, H. M., Bingham, M. O., Gibson, G. R., McCartney, A. L. Differences between the gut microflora of children with autistic spectrum disorders and that of healthy children. J Med Microbiol. 54, 987-991 (2005).
  25. Buie, T., et al. Evaluation, diagnosis, and treatment of gastrointestinal disorders in individuals with ASDs: a consensus report. Pediatrics. 125, S1-S18 (2010).
  26. Etherton, M., et al. Autism-linked neuroligin-3 R451C mutation differentially alters hippocampal and cortical synaptic function. Proc Natl Acad Sci U S A. 108, 13764-13769 (2011).
  27. Etherton, M. R., Tabuchi, K., Sharma, M., Ko, J., Sudhof, T. C. An autism-associated point mutation in the neuroligin cytoplasmic tail selectively impairs AMPA receptor-mediated synaptic transmission in hippocampus. EMBO J. 30, 2908-2919 (2011).
  28. Zhang, Q., et al. Expression of neurexin and neuroligin in the enteric nervous system and their down-regulated expression levels in Hirschsprung disease. Mol Biol Rep. 40, 2969-2975 (2013).
  29. Wang, J., et al. Expression and significance of neuroligins in myenteric cells of Cajal in Hirschsprung’s disease. PloS One. 8, e67205 (2013).
  30. Yang, H., et al. The down-regulation of neuroligin-2 and the correlative clinical significance of serum GABA over-expression in Hirschsprung’s disease. Neurochem Res. 39, 1451-1457 (2014).
  31. Roberts, R. R., et al. The first intestinal motility patterns in fetal mice are not mediated by neurons or interstitial cells of Cajal. J Physiol. 588, 1153-1169 (2010).
  32. Barnes, K. J., Spencer, N. J. Can colonic migrating motor complexes occur in mice lacking the endothelin-3 gene?. Clin Exp Pharmacol Physiol. 42, 485-495 (2015).
  33. Chambers, J. D., Bornstein, J. C., Thomas, E. A. Multiple neural oscillators and muscle feedback are required for the intestinal fed state motor program. PloS One. 6, e19597 (2011).
  34. Heredia, D. J., et al. Important role of mucosal serotonin in colonic propulsion and peristaltic reflexes: in vitro analyses in mice lacking tryptophan hydroxylase 1. J Physiol. 591, 5939-5957 (2013).
  35. Chambers, J. D., Bornstein, J. C., Thomas, E. A. Insights into mechanisms of intestinal segmentation in guinea pigs: a combined computational modeling and in vitro study. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 295, G534-G541 (2008).
  36. Huizinga, J. D., et al. The origin of segmentation motor activity in the intestine. Nat Commun. 5, 3326 (2014).
  37. Neild, T. O., Shen, K. Z., Surprenant, A. Vasodilatation of arterioles by acetylcholine released from single neurones in the guinea-pig submucosal plexus. J Physiol. 420, 247-265 (1990).

Play Video

Cite This Article
Swaminathan, M., Hill-Yardin, E., Ellis, M., Zygorodimos, M., Johnston, L. A., Gwynne, R. M., Bornstein, J. C. Video Imaging and Spatiotemporal Maps to Analyze Gastrointestinal Motility in Mice. J. Vis. Exp. (108), e53828, doi:10.3791/53828 (2016).

View Video