Summary

チック小脳スライスと顆粒細胞前駆体の空間的にターゲットを絞ったエレクトロポレーション ex vivo培養

Published: December 14, 2015
doi:

Summary

小脳外顆粒層は、脳の発達で最大のトランジット増幅のサイトです。ここでは、胚の14日目のニワトリ胚からex vivoでエレクトロポレーションおよび小脳スライスの文化を使用して、増殖のピーク時にこの層に遺伝子改変をターゲットにするプロトコルを提示します。

Abstract

小脳外顆粒層(EGL)は、脳の発達で最大のトランジット増幅のサイト、および神経増殖および分化を研究するための優れたモデルです。また、その増殖能力の進化の変更は、小脳脊椎動物の脳のEVO-DEVO研究のための優れたモデルを作り、羊膜における小脳のサイズの劇的な拡大を担当しています。 EGLを構成する細胞は、小脳顆粒前駆細胞は、また、髄芽腫のための最も一般的な小児神経腫瘍の起源の有意な細胞を表します。トランジット増幅後、顆粒の前駆体は、彼らが成熟した哺乳動物の脳における最大のニューロン集団を表す小脳の内部顆粒層に半径方向に移動します。ひよこでは、EGLの増殖のピークは妊娠の第2週の終わりに向かって発生します。この層での遺伝子改変を標的とするために増殖のピークは、我々は、胚14日目のニワトリ胚から小脳スライスのex vivoでのエレクトロポレーションを介して、遺伝子操作のための方法を開発しました。この方法は、 インビボでの顆粒ニューロンの発達のいくつかの重要な局面を再現すると、小脳顆粒細胞の増殖および分化の、ひいては小脳の開発、展開、および疾患の完全な理解を生成するのに有用であろう。

Introduction

小脳は、後脳の前方端に座って、成熟した脳内の感覚と運動処理の統合を担当するだけでなく、高い認知過程1を規制です。哺乳類や鳥類では、成人の脳におけるニューロンの半分以上が生産する開発中に、前駆細胞の大規模なトランジット増幅の産物を精巧な形態を有し、重く葉状されます。小脳は、何世紀にもわたって、および分子時代の神経生物学者のための調査の対象となっている、同様に重要な注目を集めています。これは、本質的に興味深い生物学だけでなく、それが頻繁にそのような最も一般的な小児の脳である自閉症スペクトラム障害2と最も顕著に小脳癌、髄芽腫3、などの発達の遺伝的障害を含む、ヒトの疾患に関与しているという事実だけでなく、関連します腫瘍。重要なことは、WH内の優れたモデル系でありますICHは、脳の発達4中に運命の割り当てと神経新生を研究します。近年では、それはまた、脊椎動物系統5-10横切っ見小脳形態の巨大な多様性のために、脳の発達の比較研究のためのモデル系として確立されています。

小脳は、後脳11でrhombomere 1の背側半分から発達と発達二つの主要な前駆細胞集団、菱形リップと脳室帯から構成されています。菱形リップは、屋根板との国境で後脳の神経上皮の背部の周りに延びます。これは、小脳12-14のグルタミン酸作動性ニューロン興奮性の発祥の地です。脳室帯は最も顕著に抑制GABA作動性小脳ニューロン、大プルキンエニューロン14,15を生じさせます。その後、開発中(マウスでは約胎生13.5から、ひよこ16でE6)、グルタミン酸作動PROGENitorsは菱形リップから接線方向に移動して、前駆細胞の軟膜層を形成:二前駆ゾーンは外部顆粒層(EGL)と呼ばれます。これは、成熟した脳で見つかった顆粒ニューロンの膨大な数につながる大規模なトランジット増幅を受け、この層です。

EGLでの増殖は、長い細胞周期出口に切り替え、中央に外側EGL層からの出口に関連している前駆細胞の神経分化と、菱形リップ 17から接線方向の移行から得られるサブ軟膜の場所にリンクされていますEGL 18。内側-外側軸における有糸分裂後の顆粒細胞の広範な接線方向の移行は、成熟した小脳皮質の内側顆粒層への最終的な放射状の移行前に、ミドルとインナーEGL 19で発生します。小脳表面上の菱形リップからの細胞の移動は、軟膜20-22からCXCL12シグナリングに依存しています</sup>と顆粒細胞は、CXCL12受容体CXCR4を発現します。彼らの接線方向の移行は、このような阻害介在ニューロン集団に23-25 ​​の移行新皮質の接線方向のそれを彷彿とさせます。興味深いことに、電子顕微鏡の研究17は、増殖形態を持つEGL細胞が哺乳類の大脳皮質26の基底前駆細胞を連想させるようにして増殖能力を有する細胞の挙動を結ぶ、軟膜の接触を維持することを示唆しています。これは、個別の細胞外環境によって定義され、顆粒の前駆体は、異なる遺伝子発現シグネチャ18を持っているされている3つの副層へのEGLの前述の層別化に反映されています。

oEGLにおける前駆細胞の増殖は、前駆細胞を個別に遺伝的にマウスでは胚発生の末端で標識されたとき、彼らは250〜500グラムの有糸分裂後の中央値の平均を生じさせるようなクローンサイズの正規分布で発生ranuleニューロン27,28。増殖は、プルキンエニューロン29-32の根底にあるから分裂促進Shhシグナル伝達に依存しています。 SHHに応答する能力 、in vitro およびin vivo 33 34,35 の両方において 、転写因子のAtoh1の細胞自律的な発現に完全に依存することが示されています。同様に、細胞周期の出口と分化は、おそらくのAtoh1 37の直接のリプレッサーである下流の転写因子NeuroD1 36の発現に依存することが示されています。

細胞周期出口38〜42の細胞生物学的基礎を解読で、この進歩し、かなりの進歩にもかかわらず、意思決定の根底にある基本的な分子機構(複数可)は、細胞周期を終了し、差別化ニューロンへの前駆から移行すること、およびインナーEGLならびに後、スイッチの関連する有糸分裂後の接線方向の移行ラジアル移行に、完全には理解のまま。これは、EGLの実験的扱いにくさの大部分は次のとおりです。同じ神経性分子の多くが菱形リップで以前顆粒前駆体の生活の中でも極めて重要であるため、それが遅れて開発している、と遺伝的に標的にすることは困難。この問題を克服するために、多数の著者は、げっ歯類43-48で出生後の小脳を対象とする方法として in vivo および ex vivoエレクトロポレーション開発しています。ここでは、コストと利便性の面で顕著な利点を表すEGLを研究するために、ニワトリにex vivoでのエレクトロポレーションの使用を開拓します。私たちのエレクトロポレーションの方法とひよこのex vivoでのスライス培養小脳組織は、EGLの増殖のピークで組織胚の日から解剖14雛を使用しています。この方法は、独立して菱形リップのEGLの遺伝子ターゲティングを可能にし、顆粒からの移行の遺伝的解剖のための段階を設定します小脳における分裂停止後の顆粒ニューロンの前駆。

Protocol

注意:全ての実験は、キングスカレッジロンドン、英国、英国内務省動物保護ガイドラインに基づいて実施しました。 E14小脳の1解剖胚14日目に38℃で茶色の受精鶏卵をインキュベートします。 卵のはさみを使用すると、 卵内ニワトリ胚を刎ねると氷冷PBS( 図1A)を含むペトリ皿に頭を削除します。 標準の鉗子を使用して、目と?…

Representative Results

このセクションでは、胚の14日目のニワトリからスライスエレクトロポレーションおよび小脳の文化を使用して得ることができる結果の例を示します。小脳の解剖は 、図1に示され、セットアップのエレクトロポレーションチャンバーは、図2に示されている。我々は、それが成功したin vitroで ( 図3A)、その構…

Discussion

ここで報告プロトコルは、解剖電気穿孔とひよこから胚14日目小脳のスライスを培養するための方法を説明します。このプロトコルは、個々の小脳ローブの孤立したターゲティングを含むEGLの小さな焦点領域にエレクトロポレーションのターゲティングが可能。これは、高解像度と利便性で遺伝子解析とイメージングを可能にし、低コストでげっ歯類43-47で確立された技術と比較。こ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この記事で紹介した方法は、BBSRC BB / I021507 / 1(TB、RJTW)から資金提供を受け、仕事とMRC博士学生の身分(MH)から生じました。

Materials

McIlwain tissue chopper Mickle Laboratory Engineering Ltd Cut at 300μm for best results.
Basal Medium Eagle (Gibco) Life Technologies 41010-026
L-glutamine Sigma G7513
penicillin/streptomycin Sigma P4333
0.4μm culture insert Millipore PICM0RG50
TSS20 Ovodyne electroporator  Intracel 01-916-02 Use 3x10v, 10ms pulses for electroporation.

References

  1. Schmahmann, J. D. The role of the cerebellum in cognition and emotion: personal reflections since 1982 on the dysmetria of thought hypothesis, and its historical evolution from theory to therapy. Neuropsychology Review. 20, 236-260 (2010).
  2. Becker, E. B., Stoodley, C. J. Autism spectrum disorder and the cerebellum. International Review of Neurobiology. 113, 1-34 (2013).
  3. Hatten, M. E., Roussel, M. F. Development and cancer of the cerebellum. Trends in Neurosciences. 34, 134-142 (2011).
  4. Butts, T., Green, M. J., Wingate, R. J. Development of the cerebellum: simple steps to make a ‘little brain. Development. 141, 4031-4041 (2014).
  5. Rodriguez-Moldes, I., et al. Development of the cerebellar body in sharks: spatiotemporal relations of Pax6 expression, cell proliferation and differentiation. Neuroscience Letters. 432, 105-110 (2008).
  6. Kaslin, J., et al. Stem cells in the adult zebrafish cerebellum: initiation and maintenance of a novel stem cell niche. The Journal of Neuroscience : the Official Journal of the Society for Neuroscience. 29, 6142-6153 (2009).
  7. Chaplin, N., Tendeng, C., Wingate, R. J. Absence of an external germinal layer in zebrafish and shark reveals a distinct, anamniote ground plan of cerebellum development. The Journal of Neuroscience : the Official Journal of the Society for Neuroscience. 30, 3048-3057 (2010).
  8. Kani, S., et al. Proneural gene-linked neurogenesis in zebrafish cerebellum. Developmental Biology. 343, 1-17 (2010).
  9. Butts, T., Modrell, M. S., Baker, C. V., Wingate, R. J. The evolution of the vertebrate cerebellum: absence of a proliferative external granule layer in a non-teleost ray-finned fish. Evolution & Development. 16, 92-100 (2014).
  10. Corrales, J. D., Blaess, S., Mahoney, E. M., Joyner, A. L. The level of sonic hedgehog signaling regulates the complexity of cerebellar foliation. Development. 133, 1811-1821 (2006).
  11. Wingate, R. J., Hatten, M. E. The role of the rhombic lip in avian cerebellum development. Development. 126, 4395-4404 (1999).
  12. Machold, R., Fishell, G. Math1 is expressed in temporally discrete pools of cerebellar rhombic-lip neural progenitors. Neuron. 48, 17-24 (2005).
  13. Wang, V. Y., Rose, M. F., Zoghbi, H. Y. Math1 expression redefines the rhombic lip derivatives and reveals novel lineages within the brainstem and cerebellum. Neuron. 48, 31-43 (2005).
  14. Yamada, M., et al. Specification of spatial identities of cerebellar neuron progenitors by ptf1a and atoh1 for proper production of GABAergic and glutamatergic neurons. The Journal of Neuroscience : the Official Journal of the Society for Neuroscience. 34, 4786-4800 (2014).
  15. Hoshino, M., et al. Ptf1a, a bHLH transcriptional gene, defines GABAergic neuronal fates in cerebellum. Neuron. 47, 201-213 (2005).
  16. Wilson, L. J., Wingate, R. J. Temporal identity transition in the avian cerebellar rhombic lip. Developmental Biology. 297, 508-521 (2006).
  17. Hausmann, B., Sievers, J. Cerebellar external granule cells are attached to the basal lamina from the onset of migration up to the end of their proliferative activity. The Journal of Comparative Neurology. 241, 50-62 (1985).
  18. Xenaki, D., et al. F3/contactin and TAG1 play antagonistic roles in the regulation of sonic hedgehog-induced cerebellar granule neuron progenitor proliferation. Development. 138, 519-529 (2011).
  19. Komuro, H., Yacubova, E., Yacubova, E., Rakic, P. Mode and tempo of tangential cell migration in the cerebellar external granular layer. The Journal of Neuroscience : the Official Journal of the Society for Neuroscience. 21, 527-540 (2001).
  20. Klein, R. S., et al. SDF-1 alpha induces chemotaxis and enhances Sonic hedgehog-induced proliferation of cerebellar granule cells. Development. 128, 1971-1981 (2001).
  21. Zhu, Y., et al. Role of the chemokine SDF-1 as the meningeal attractant for embryonic cerebellar neurons. Nature Neuroscience. 5, 719-720 (2002).
  22. Hagihara, K., et al. Shp2 acts downstream of SDF-1alpha/CXCR4 in guiding granule cell migration during cerebellar development. Developmental Biology. 334, 276-284 (2009).
  23. Borrell, V., Marin, O. Meninges control tangential migration of hem-derived Cajal-Retzius cells via CXCL12/CXCR4 signaling. Nature Neuroscience. 9, 1284-1293 (2006).
  24. Paredes, M. F., Li, G., Berger, O., Baraban, S. C., Pleasure, S. J. Stromal-derived factor-1 (CXCL12) regulates laminar position of Cajal-Retzius cells in normal and dysplastic brains. The Journal of Neuroscience : the Official Journal of the Society for Neuroscience. 26, 9404-9412 (2006).
  25. Lopez-Bendito, G., et al. Chemokine signaling controls intracortical migration and final distribution of GABAergic interneurons. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 28, 1613-1624 (2008).
  26. Florio, M., Huttner, W. B. Neural progenitors, neurogenesis and the evolution of the neocortex. Development. 141, 2182-2194 (2014).
  27. Espinosa, J. S., Luo, L. Timing neurogenesis and differentiation: insights from quantitative clonal analyses of cerebellar granule cells. The Journal of Neuroscience : the Official Journal of the Society for Neuroscience. 28, 2301-2312 (2008).
  28. Legue, E., Riedel, E., Joyner, A. L. Clonal analysis reveals granule cell behaviors and compartmentalization that determine the folded morphology of the cerebellum. Development. 142, 1661-1671 (2015).
  29. Dahmane, N., Ruizi Altaba, ., A, Sonic hedgehog regulates the growth and patterning of the cerebellum. Development. 126, 3089-3100 (1999).
  30. Wallace, V. A. Purkinje-cell-derived Sonic hedgehog regulates granule neuron precursor cell proliferation in the developing mouse cerebellum. Current Biology : CB. 9, 445-448 (1999).
  31. Wechsler-Reya, R. J., Scott, M. P. Control of neuronal precursor proliferation in the cerebellum by Sonic Hedgehog. Neuron. 22, 103-114 (1999).
  32. Lewis, P. M., Gritli-Linde, A., Smeyne, R., Kottmann, A., McMahon, A. P. Sonic hedgehog signaling is required for expansion of granule neuron precursors and patterning of the mouse cerebellum. Developmental Biology. 270, 393-410 (2004).
  33. Zhao, H., Ayrault, O., Zindy, F., Kim, J. H., Roussel, M. F. Post-transcriptional down-regulation of Atoh1/Math1 by bone morphogenic proteins suppresses medulloblastoma development. Genes & Development. 22, 722-727 (2008).
  34. Flora, A., Klisch, T. J., Schuster, G., Zoghbi, H. Y. Deletion of Atoh1 disrupts Sonic Hedgehog signaling in the developing cerebellum and prevents medulloblastoma. Science. 326, 1424-1427 (2009).
  35. Klisch, T. J., et al. In vivo Atoh1 targetome reveals how a proneural transcription factor regulates cerebellar development. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108, 3288-3293 (2011).
  36. Miyata, T., Maeda, T., Lee, J. E. NeuroD is required for differentiation of the granule cells in the cerebellum and hippocampus. Genes & Development. 13, 1647-1652 (1999).
  37. Butts, T., Hanzel, M., Wingate, R. J. Transit amplification in the amniote cerebellum evolved via a heterochronic shift in NeuroD1 expression. Development. 141, 2791-2795 (2014).
  38. Rios, I., Alvarez-Rodriguez, R., Marti, E., Pons, S. Bmp2 antagonizes sonic hedgehog-mediated proliferation of cerebellar granule neurones through Smad5 signalling. Development. 131, 3159-3168 (2004).
  39. Anne, S. L., et al. WNT3 inhibits cerebellar granule neuron progenitor proliferation and medulloblastoma formation via MAPK activation. PloS One. 8, e81769 (2013).
  40. Chedotal, A. Should I stay or should I go? Becoming a granule cell. Trends in Neurosciences. 33, 163-172 (2010).
  41. Penas, C., et al. Casein Kinase 1delta Is an APC/C(Cdh1) Substrate that Regulates Cerebellar Granule Cell Neurogenesis. Cell Reports. 11, 249-260 (2015).
  42. Penas, C., et al. GSK3 inhibitors stabilize Wee1 and reduce cerebellar granule cell progenitor proliferation. Cell Cycle. 14, 417-424 (2015).
  43. Yang, Z. J., et al. Novel strategy to study gene expression and function in developing cerebellar granule cells. Journal of Neuroscience Methods. 132, 149-160 (2004).
  44. Jia, Y., Zhou, J., Tai, Y., Wang, Y. TRPC channels promote cerebellar granule neuron survival. Nature Neuroscience. 10, 559-567 (2007).
  45. Umeshima, H., Hirano, T., Kengaku, M. Microtubule-based nuclear movement occurs independently of centrosome positioning in migrating neurons. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104, 16182-16187 (2007).
  46. Famulski, J. K., et al. Siah regulation of Pard3A controls neuronal cell adhesion during germinal zone exit. Science. 330, 1834-1838 (2010).
  47. Puram, S. V., et al. A CaMKIIbeta signaling pathway at the centrosome regulates dendrite patterning in the brain. Nature Neuroscience. 14, 973-983 (2011).
  48. Holubowska, A., Mukherjee, C., Vadhvani, M., Stegmuller, J. Genetic manipulation of cerebellar granule neurons in vitro and in vivo to study neuronal morphology and migration. J Vis Exp. , (2014).
  49. Ben-Arie, N., et al. Math1 is essential for genesis of cerebellar granule neurons. Nature. 390, 169-172 (1997).

Play Video

Cite This Article
Hanzel, M., Wingate, R. J., Butts, T. Ex Vivo Culture of Chick Cerebellar Slices and Spatially Targeted Electroporation of Granule Cell Precursors. J. Vis. Exp. (106), e53421, doi:10.3791/53421 (2015).

View Video