This article presents two protocols: one to measure anaerobic bacteria that can successfully invade and survive within the host, and the other to visualize anaerobic bacteria interacting with host cells. This study can be applied to any cultivable anaerobe and any eukaryotic cell type.
Anaërobe bacteriën ver overtreffen aeroben in vele menselijke niches zoals de darm, mond en vagina. Bovendien, anaërobe infecties komen vaak voor en vaak van inheemse afkomst. Het vermogen van enkele anaerobe pathogenen humane cellen binnen te dringen geeft hen aanpassingsmaatregelen aangeboren immuniteit ontsnappen alsook gastheercel gedrag moduleren. Echter, zodat de anaërobe bacteriën staan tijdens experimenteel onderzoek van de gebeurtenissen kan problemen opleveren. Porphyromonas gingivalis, een Gram-negatieve anaërobe, kan binnenvallen een verscheidenheid van eukaryote niet-fagocytische cellen. Dit artikel schetst hoe succesvol de cultuur en beoordelen van het vermogen van P. gingivalis aan humane navelstreng endotheelcellen (HUVEC) binnendringen. Twee protocollen werden ontwikkeld: een voor bacteriën die met succes kunnen binnendringen en overleven in de gastheer, en andere bacteriën interactie met gastheercellen visualiseren meten. Deze technieken vereisen het gebruik van een AnaeRobic kamer leveren P. gingivalis met een anaërobe omgeving voor optimale groei.
Het eerste protocol is gebaseerd op het antibioticum bescherming assay, die grotendeels gebruikt om de invasie van gastheercellen door bacteriën te bestuderen. Echter, het antibioticum bescherming assay beperkt; alleen intracellulaire bacteriën die gekweekt zijn na behandeling met antibiotica en gastheer cellysis worden gemeten. Om alle bacteriën interactie met gastheercellen, zowel levende en dode beoordelen, ontwikkelden we een protocol dat fluorescentie microscopie gebruikt om gastheer-pathogeen interactie te onderzoeken. Bacteriën worden fluorescent gelabeld met 2 ', 7'-bis- (2-carboxyethyl) -5- (en-6) -carboxyfluorescein acetoxymethylester (BCECF-AM) en gebruikt om eukaryotische cellen te infecteren onder anaërobe omstandigheden. Na bevestiging met paraformaldehyde en permeabilisatie met 0,2% Triton X-100, worden gastheercellen gelabeld met TRITC phalloidin en DAPI naar de cel cytoskelet en de kern respectievelijk labelen. Meerdere images genomen op verschillende brandpunten (Z-stack) worden verkregen voor tijdelijke ruimtelijke visualisatie van bacteriën. Methoden in deze studie kan worden toegepast op elke landbouwgrond anaerobe en eukaryotische celtype.
Anaërobe bacteriën koloniseren vrijwel alle oppervlakken van het menselijk lichaam. Hoewel overwegend in de flora van de darm en urogenitalis waar zuurstof concentraties laag bestaan ze ook bij hoge niveaus op de huid, mond, neus en keel 1. Anaërobe bacteriën zijn een veelvoorkomende oorzaak van endogene infecties en worden vaak geïsoleerd van zieke sites. Vanwege hun veeleisende aard, anaërobe moeilijk te isoleren en cultuur. Studies met anaërobe bacteriën moet gebeuren onder strikte voorwaarden. Moderne anaërobe kweektechnieken kunnen de onderzoekers om de anaërobe instellingen die nodig zijn om veel anaërobe laboratoriumstammen of klinische isolaten 2,3 studeren na te bootsen.
Pathogene anaërobe bacteriën hebben een dynamische relatie en co-evolutie met de gastheer cellen waarin zij wonen ontwikkeld. De meeste anaëroben zijn gevoelig voor doding door de gastheer immuunreactie voordat infectilende niveaus. Echter, sommige pathogene bacteriën mechanismen ontsnappen of ontwrichting van de gastheer immuunreactie ontwikkeld. Zij doen dit doel via mechanismen zoals ontwijking van immuunherkenning, neutralisatie van immuunmediatoren, verandering van celgemedieerde immuniteit, invasie van gastheercellen en wijziging van immune signalering 4. Porphyromonas gingivalis, een Gram-negatieve anaerobe betrokken bij zowel orale als extraorale ziekten, is een voorbeeld van een zeer geschikt bacterieel pathogeen kunnen veroorzaken pathogene veranderingen in de ontvangende 5-7.
Zakken van biofilm plaque ontstaan uit diepe spleten gevormd tussen de tanden en tandvlees mucosale weefsel anaërobe bacteriën die worden beschermd tegen zuurstof 8 haven. Deze periodontale pockets dienen als niche voor diverse anaerobe pathogenen, zoals P. gingivalis 9. P. gingivalis is een hoeksteen pathogeen dat in staat verbouwening de mondelinge microbiële gemeenschap op manieren die de ontwikkeling en progressie van parodontale aandoeningen 10 te bevorderen. Het produceert een groot aantal virulentiefactoren die actief zijn tegen een breed spectrum van gastheer- en voorziet in mechanismen voor ontwijking van afweer 11. Het kan ook invasie epitheel, endotheel, fibroblasten, en periodontale ligament cellen in vitro en in vivo 14/12 15. Door het effectief invasie van gastheercellen, P. gingivalis kunnen gastheer immuniteit te ontsnappen. Effectieve invasie van gastheercellen mogelijk maakt niet alleen de bacterie afweer van de gastheer ontsnappen, maar ook dient als reservoir voor toekomstige herinfectie en verandert de gastheercel. Studies van de moleculaire mechanismen betrokken bij adhesie en internalisatie van de bacterie door gastheercellen nodig. Onderzoek in verschillende laboratoria is gericht op het begrijpen van de moleculaire geassocieerd met internalisatie P. gingivalis door de gastheercellenalsook de mechanismen te onderdrukken en kapen de immuunrespons en overleven de vijandige gastheer afweermechanismen.
Er zijn vele assays kan identificeren en karakteriseren van pathogenen die in staat binnendringende gastheercellen. In vitro studies met anaerobe pathogenen vormen vele experimentele problemen voor de onderzoeker vooral omdat het moeilijk studies die afhankelijk volumineuze instrumenten in afwezigheid van zuurstof uitgevoerd. Dit wordt verergerd door het feit dat eukaryote cellen zuurstof nodig om te groeien en moet dus apart worden bereid in weefselkweek incubator. Een manier om dergelijke obstakels te vermijden is om het onderzoek te verrichten onder atmosferische zuurstof, maar dat de groei van anaerobe bacteriën onmogelijk maken. Een andere methode zou zijn om hitte gedode bacteriën gebruiken om te infecteren en studie gastheer-cel interacties. Echter, verschillen bestaan tussen de warmte gedood en levensvatbare bacteriën die de relevantie van de gastheer-pathogeen interacti verminderenon 16. Het staat centraal in levende bacteriën met ongewijzigde expressie interactie met gastheercellen te bestuderen; derhalve werkwijzen voor het kweken van P. gingivalis in een anaërobe omgeving worden gegeven. Ook zijn twee eenvoudige rendabele protocollen aangetoond voor het beoordelen van het vermogen van P. gingivalis worden geïnternaliseerd door humane navelstreng endotheelcellen (HUVEC). Het eerste protocol is gebaseerd op het populaire antibioticum bescherming assay. Hoewel de test eenvoudig worden overwegingen bij het gebruik van anaerobe microorganismen gegeven. Het tweede protocol vereist het gebruik van een fluorescerende scanning microscoop te visualiseren interactie en geïnternaliseerd P. gingivalis. Elke test heeft zijn beperkingen en voordelen die zullen worden besproken zijn de onderzoeker een schets voor het bestuderen van het invasieve karakter van anaërobe bacteriën. Hoewel de huidige manuscript bestudeert P. gingivalis en HUVECs, kunnen deze protocollen worden gebruikt voor vele andere anaërobe bacteriën enzoals voor andere typen gastheercellen.
Alle bovengenoemde werkwijzen kunnen worden gebruikt om specifieke assays voor de interactie van anaërobe bacteriën met eukaryotische cellen te beoordelen ontwerpen. Echter, er zijn verschillende overwegingen bij de experimenten te doen dalen. Ten eerste zijn de microbiële stammen worden gebruikt in een studie.
Het is cruciaal bij de vergelijking van twee stammen zowel het overleven assay en microscopisch onderzoek dat ze op vergelijkbare groeifasen en bereiken soortgelijke celconcentrati…
The authors have nothing to disclose.
We would like to thank Dr. Hiroshi Miyazaki, Dr. Scott Henderson, Dr. Todd Kitten, Dr. Justin Hutcherson, Dr. Catherine Jauregui, and Collin R. Berry. This work was supported by NIH NIDCR grants R01DE016124, R01DE018039, and R01DE023304 to J.P. Lewis.
Microscopy was performed at the VCU Department of Anatomy and Neurobiology Microscopy Facility, supported, in part, with funding from NIH-NINDS Center core grant (5P30NS047463).
Vinyl Anaerobic Chamber-Type B | Coy Laboratory Products | Model 2000 incubator | |
TSA II Trypticase Soy Agar w/5% Sheep Blood | BBL | 221261 | |
Human Umbilical Vein Endothelial Cells 10-donor Pool | LifeLine Technology | FC-0044 | |
VascuLife VEGF Medium Complete Kit | LifeLine Technology | LL-0003 | |
TrypKit | LifeLine | LL-0013 | |
Saponin | Riedel-de Haen | 16109 | |
Gentamicin Sulfate Salt | Sigma-Aldrich | G-1264 | |
Metronidazole | Sigma-Aldrich | M-3761 | |
BCECF-AM | LifeTechnologies | B1150 | |
TRITC Phalloidin | Sigma-Aldrich | P1951 | |
18 mm Circular Coverslips | Electron Microscopy Sciences | 72222-01 | |
VectaShield Mounting Medium with DAPI | Vector Laboratories | H-1200 |