Summary

С помощью<em> Экс Vivo</em> Вертикальный воздушно-капельных Культуры всей фетальных органов по изучению процессов развития во Mouse органогенеза

Published: October 21, 2015
doi:

Summary

The ex vivo upright droplet culture is an alternative to current in vitro and in vivo experimental techniques. This protocol is easy to perform and requires smaller amounts of reagent, while permitting the ability to manipulate and study fetal vascularization, morphogenesis, and organogenesis.

Abstract

Исследуя органогенез в утробе матери является технически сложным процессом, в плацентарных млекопитающих из-за недоступности реагентов для эмбрионов, которые развиваются в матке. Недавно разработанная экс естественных условиях в вертикальном положении метод капель культура обеспечивает привлекательную альтернативу исследований, проведенных в период внутриутробного развития. Экс естественных капель культура дает возможность исследовать и управлять клеточных взаимодействий и различные сигнальные пути с применением различного блокирования и активирующих соединений; Кроме того, влияние различных фармакологических реагентов на разработке конкретных органов могут быть изучены без нежелательных побочных эффектов системного доставки лекарств в матке. По сравнению с другими системами в пробирке, капли культура не только позволяет способности к обучению трехмерного морфогенеза и межклеточных взаимодействий, которые не могут быть воспроизведены в линии клеток млекопитающих, но и требует существенно меньше Reagents чем другие экс естественных условиях и в пробирке протоколов. Эта статья демонстрирует правильное мыши плода рассечение органов и вертикально методы капли культуры, а затем весь орган иммунофлюоресценции, чтобы продемонстрировать эффективность метода. Экс естественных способ культивирования капель позволяет формировать архитектуры органа сопоставимы к тому, что наблюдается в естественных условиях и могут быть использованы для изучения в противном случае трудно-исследования процессов в связи с эмбриональной летальности в моделях в естественных условиях. В модельной системе приложений, ингибитор малые молекулы будут использованы для исследования роли васкуляризации в яичек формообразования. Это экс естественных способ культивирования капелек с возможностью расширения до других органов и систем плода, таких как легких и потенциально других, хотя каждый орган должен быть широко изучены, чтобы определить, какие специфические для органа модификации протокола. Эта система органом культура обеспечивает гибкость в экспериментирования с органами плода, и результаты obtained используя этот метод поможет исследователям получить представление развития плода.

Introduction

Регенерации органов в естественных условиях в организме человека очень ограничены; Поэтому, тканевая инженерия, развитие тканей и органов из отдельных клеток, пожертвованных хозяина, становится привлекательной потенциал терапии замены органов. Правда, для этого терапевтическая стратегия, чтобы быть успешным, факторы и клеточные взаимодействия участвующих в морфогенезе органа должны быть тщательно изучены и хорошо изучены. Из-за неспособности изучения развития отдельных органов с традиционными подходами, исследователи обратились к альтернативным всей эмбриона или целых культур органов. Kalaskar др. 1 показали, что экс естественных условиях вся эмбриогенез культура дает сопоставимые результаты (в 58% культивируемых эмбрионов) в развитии внутриутробной, предполагая, что экс естественных условиях методы культура реальной альтернативой для органогенеза исследований.

Индивидуальный система органной культуры, такие, как этот бывший естественных УЦИплет система культуры, позволяет весь анализ орган, независимо от системных эффектов, в то время как позволяет манипулировать конкретного сигнального пути или клеточных взаимодействий с помощью того фармакологических реагентов или антител. Традиционно, изучение развития плода органа была ограничена трансгенных мышей и нокаут технологий, в дополнение к фармакологических реагентов, поставляемых материнской. Тем не менее, существуют технические вопросы, связанные с эти методы и процедуры в естественных условиях; большинство проблем вращаются вокруг эффектов воздействия на различные органы одновременно, что часто приводит к эмбриональной летальности. Дополнительной проблемой исследований манипулирования на развитие плода фармакологически является материнский эффект препаратов на эмбриональное развитие в утробе матери (например, материнской метаболизма препарата прежде чем он достигнет эмбриона), и если такие реагенты могут проходить через плацентарный барьер.

Описан метод целая культура органЗдесь был адаптирован из протокола, впервые описанным Maatouk и др. 2, в котором целые гонады эмбриона инкубируют в бывших естественных вертикальных культур капель. Одним из важных преимуществ культивирования эмбриональные половые железы, что ингибиторы низкомолекулярные легко получить доступ к весь орган по простой диффузии. . Дефолко др показали, что использование этого исключая виво капель способ культивирования в сочетании с ингибиторами низкомолекулярных может быть использован для изучения процессов и взаимодействий, происходящих во время развития гонад 3 сигнализации; эти процессы будет трудно рассмотреть в естественных условиях из-за технических проблем (например, прохождение препаратов через плаценту или летальности влияет несколько органов, используя генетические или фармакологические подходы).

Капелька культура является не только улучшение в некоторых аспектах более внутриутробно экспериментов, но и является улучшением по сравнению в пробирке и экс VIСистемы VO, а также. Использование клеточных линий для изучения морфогенеза крайне сложно, потому что они не имеют разнообразные типы клеток, отсутствие критических внеклеточного матрикса (ЕСМ) компоненты, которые позволяют формирования архитектуры органа и могут проявлять артефакты в сигнальных каскадов. Хотя тканевая инженерия добилась значительных улучшений в создании каркасов, имитирующих ECM, отсутствие знаний в отношении которых сигналы требуются каждого типа клеток во время органогенеза делает его сложным, чтобы построить систему органов в пробирке. Другие бывшие естественных систем были установлены ранее для изучения органогенеза, или, более конкретно формообразования, и были очень успешными для живой визуализации органов плода в агар 4, 5 transwells, фильтры 6, и другие эшафот матрицы 7,8. Преимущество системы капель культуры является то, что она позволяет изучение морфогенеза, предоставляя возможность использовать меньше реагентов, которые оften дорого, но и придания поверхности органом напряжение, что очень важно для роста и сигнализации возможностей 9.

В мыши, начальная яичко морфогенез происходит между эмбриональной (E) E11.5 этапы и E13.5; Эти этапы включают в себя оптимальное окно времени для изучения факторов, которые влияют на сексуальную конкретных дифференциации. Среди важных процессов, происходящих во время формирования семенников то поколение архитектуры семенников мозга и формирование семенников конкретных сосудистой сети. Используя этот исключая виво целого органа системы капель культуры, человек способен изменять мужской конкретных васкуляризации и ингибируют семенников морфогенез посредством использования ингибитора низкомолекулярных, что блокирует активность рецепторов для фактора роста эндотелия сосудов (VEGF); VEGF-опосредованной сосудистой реконструкции имеет решающее значение для развития яичек 10-12. Этот метод может успешно применяться к другим органам и может предназначаться определенное времяОкна развития. Всего монтажа изображений орган позволяет визуализировать жизненно важных структур, а также структурные и клеточные изменения, вытекающие из администрации различных ингибиторов. Важно отметить, что эта система имеет преимущество в том, что исследователь может обойти потенциальные вмешивающиеся эффекты от материнской введения препарата или системного нарушения во время естественных условиях в целевых стратегий генов. Таким образом, вся эта органом экс естественных условиях система культуры капель может значительно улучшить способность понимать взаимодействие и сигнализацию, которые происходят именно в рамках конкретных органов во время развития плода.

Protocol

Все мыши, используемые в этих исследованиях были CD-1 мышей, полученные от Charles River Laboratories. Предыдущие эксперименты культуры были также выполнены на других штаммов, таких как C57BL / 6J (данные не показаны), но любой штамм может быть использован. Беременные женщины были взрослые примерно 2-3 мес?…

Representative Results

Экс естественных капель культура позволяет манипулировать целые органы, такие, как гонады, изучать клеточные взаимодействия и динамики. Рисунок 1 демонстрирует в поэтапно, как приготовить E11.5 половые железы капель культуру. Первые шаги в протоколе культуры включают в себ…

Discussion

Это исследование показывает, экс естественных весь орган метод капель, который имеет много потенциальных приложений для изучения развития плода. Этот метод может быть использован для нескольких органов, и позволяет исследователю решать биологические вопросы, которые трудно изу?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors were supported by: a CancerFree KIDS Research Grant, a March of Dimes Basil O’Connor Starter Scholar Award (#5-FY14-32), a Cincinnati Children’s Hospital Medical Center (CCHMC) Trustee Grant Award; a CCHMC Research Innovation and Pilot Funding Award; and CCHMC developmental funds. Authors also acknowledge the Capel laboratory for the initial optimization of this technique.

Materials

Superfrost Plus Microscope Slides Fisherbrand 12-550-15
Cover Glasses: Squares (22 mm x 22 mm, No. 1.5) Fisherbrand 12-541B
Sally Hansen Xtreme Wear Nail Polish, Invisible Sally Hansen N/A
8-Strip 0.2 mL PCR Tubes & Detached Flat Caps GeneMate T3218-1
Pipetman L P1000L, P200L, P20L, P10L, P2L Gilson FA10006M, FA10005M, FA10003M, FA10002M, FA10001M
Dumont #5 Forceps FST 91150-20
Fine Scissors FST 91460-11
Posi-Click 1.7 ml microcentrifuge tubes Denville C2170
Posi-Click 0.6 ml microcentrifuge tubes Denville C2176
10 μl SHARP Precision Barrier Tips Denville P1096FR
20 μl SHARP Precision Barrier Tips Denville P1121
200 μl SHARP Precision Barrier Tips Denville P1122
1000 μl SHARP Precision Barrier Tips Denville P1126
1 ml syringe with 27gauge needles BD PrecisionGlide 309623
10 ml syringe BD 305559
0.2 μM PES syringe filter VWR 28145-501
Grade 3 Qualitative Filter Paper Standard Grade, circle, 185 mm Whatman 1003-185
Primaria 35mm Easy Grip Style Cell Culture Dish Falcon/Corning 353801
Petri Dishes, Sterile (100 mm x 15 mm) VWR 25384-088
New Brunswick Galaxy 14 S CO2 Incubator Eppendorf CO14S-120-0000
Biosafety Cabinet Nuare NU-425-400
Mini-centrifuge  Fisher Scientific 05-090-100
BioExpress GyroMixer Variable XL GeneMate R-3200-1XL
Mastercycler Pro Thermal Cycler with control panel Eppendorf 950040015
SMZ445 stereomicroscope Nikon SMZ445
MultiImage Light Cabinet with AlphaEase Software Alpha Innotech Corporation Discontinued
Absolute 200 proof Ethanol Fisher BP2818-500
Triton X-100 Fisher BP151-100
Sodium Phosphate (Dibasic MW 142) Na2HPO4 Fisher S374-1
Potassium Phosphate (Monobasic MW 136) KH2PO4 Sigma-Aldrich P5379-1KG
Sodium Chloride (NaCl) Fisher S671-3
Potassium Chloride (KCl) Sigma-Aldrich P3911-1KG
Magnesium Chloride (MgCl2) Sigma M2393-100g
Calcium Chloride (CaCl2) Sigma C5670-100g
Ambion Nuclease-Free Water Life Technologies AM9938 
XY PCR Primer  IDT N/A
Glacial Acetic Acid Fisher A38-500
Ethylenediamine Tetraacetic Acid (EDTA) Fisher BP2482-1
1% Ethidium bromide solution Fisher BP1302-10 Toxic
Agarose GeneMate E-3120-500
Sodium Hydroxide (NaOH) Sigma-Aldrich 367176-2.5KG
Trizma Base Sigma T1503-1KG
dNTP Set, 100 mM Solutions Thermo Scientific R0182
DNA Choice Taq polymerase with 10x Buffer Denville CB-4050-3
Paraformaldehyde Fisher O4042-500 Toxic
FluorMount-G Southern Biotech 0100-01
Hydrogen Chloride (HCl) Fisher A144212
Bovine Serum Albumin (BSA), powder, Fraction V, Heat shock isolation Bioexpress 0332-100g
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM)  Life Technologies 11965-092
Fetal Bovine Serum (FBS), triple 100-nm filtered Fisher 03-600-511 Heat-inactivate before using
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Life Technologies 15140-122 Use at 1:100
Dimethyl sulfoxide (DMSO), Hybri-max, sterile-filtered Sigma D2650
VEGFR Tyrosine Kinase Inhibitor II – CAS 269390-69-4 – Calbiochem EMD Millipore 676481
Rabbit Anti-Sox9 Antibody Millipore AB5535 Use at dilution: 1:4,000
Rat Anti-Mouse PECAM1 (CD31) Antibody BD Pharmingen 553370 Use at dilution: 1:250
Rabbit Cleaved Caspase-3 (Asp175) Antibody Cell Signaling 9661S Use at dilution: 1:250
Rat E-cadherin / CDH1 Antibody (ECCD-2) Life Technologies 13-1900 Use at dilution: 1:500
Hoechst 3342, trihydrochloride, trihydrate Invitrogen (Molecular Probes) H1399 Use at 2ug/ml
Cy3 AffiniPure Donkey Anti-Rat IgG (H+L) Jackson Immunoresearch 712-165-153 Use at dilution: 1:500
Alexa Fluor 647 AffiniPure Donkey Anti-Rat IgG (H+L) Jackson Immunoresearch 712-605-153 Use at dilution: 1:500
Donkey anti-Rabbit IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 555 conjugate Life Technologies A31572 Use at dilution: 1:500
Donkey anti-Rabbit IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 conjugate Life Technologies A21206 Use at dilution: 1:500
Donkey anti-Rat IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 conjugate Life Technologies A21208 Use at dilution: 1:500
Donkey anti-Rabbit IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 647 conjugate Life Technologies A31573 Use at dilution: 1:500

References

  1. Kalaskar, V. K., Lauderdale, J. D. Mouse embryonic development in a serum-free whole embryo culture system. J. Vis. Exp. (85), e50803 (2014).
  2. Maatouk, D. M., et al. Stabilization of beta-catenin in XY gonads causes male-to-female sex-reversal. Hum. Mol. Genet. 17, 2949-2955 (2008).
  3. DeFalco, T., Bhattacharya, I., Williams, A. V., Sams, D. M., Capel, B. Yolk-sac-derived macrophages regulate fetal testis vascularization and morphogenesis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 111, E2384-E2393 (2014).
  4. Coveney, D., Cool, J., Oliver, T., Capel, B. Four-dimensional analysis of vascularization during primary development of an organ, the gonad. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 7212-7217 (2008).
  5. Walton, K. D., Kolterud, A. Mouse fetal whole intestine culture system for ex vivo manipulation of signaling pathways and three-dimensional live imaging of villus development. J. Vis. Exp. (91), e51817 (2014).
  6. Delmarcelle, A. S., Villacorte, M., Hick, A. C., Pierreux, C. E. An ex vivo culture system to study thyroid development. J. Vis. Exp. (88), e51641 (2014).
  7. Costantini, F., Watanabe, T., Lu, B., Chi, X., Srinivas, S. Dissection of embryonic mouse kidney, culture in vitro, and imaging of the developing organ. Cold Spring Harb. Protoc. 2011, (2011).
  8. Petzold, K. M., Spagnoli, F. M. A system for ex vivo culturing of embryonic pancreas. J. Vis. Exp. (66), e3979 (2012).
  9. Foty, R. A simple hanging drop cell culture protocol for generation of 3D spheroids. J. Vis. Exp. (51), e2720 (2011).
  10. Combes, A. N., et al. et al.Endothelial cell migration directs testis cord formation. Dev. Biol. 326, 112-120 (2009).
  11. Bott, R. C., McFee, R. M., Clopton, D. T., Toombs, C., Cupp, A. S. Vascular endothelial growth factor and kinase domain region receptor are involved in both seminiferous cord formation and vascular development during testis morphogenesis in the rat. Biol. Reprod. 75, 56-67 (2006).
  12. Cool, J., DeFalco, T. J., Capel, B. Vascular-mesenchymal cross-talk through Vegf and Pdgf drives organ patterning. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108, 167-172 (2011).
  13. Clapcote, S. J., Roder, J. C. Simplex PCR assay for sex determination in mice. BioTechniques. 38, 702, 704-706 (2005).
  14. Nel-Themaat, L., et al. et al.Morphometric Analysis of Testis Cord Formation in. Dev. Dyn. 238, 1100-1110 (2009).
  15. Kent, J., Wheatley, S. C., Andrews, J. E., Sinclair, A. H., Koopman, P. A male-specific role for SOX9 in vertebrate sex determination. Development. 122, 2813-2822 (1996).
  16. Morais da Silva, S., et al. et al.Sox9 expression during gonadal development implies a conserved role for the gene in testis differentiation in mammals and birds. 14, 62-68 (1996).
  17. Rockich, B. E., et al. Sox9 plays multiple roles in the lung epithelium during branching morphogenesis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 110, E4456-E4464 (2013).
  18. Si-Tayeb, K., Lemaigre, F. P., Duncan, S. A. Organogenesis and development of the liver. Dev. Cell. 18, 175-189 (2010).
  19. Brennan, J., Capel, B. One tissue, two fates: Molecular genetic events that underlie testis versus ovary development. Nat. Rev. Genet. 5, 509-521 (2004).
  20. Martineau, J., Nordqvist, K., Tilmann, C., Lovell-Badge, R., Capel, B. Male-specific cell migration into the developing gonad. Curr. Biol. 7, 958-968 (1997).
  21. Yokonishi, T., Sato, T., Katagiri, K., Ogawa, T. In vitro spermatogenesis using an organ culture technique. Methods Mol. Biol. 927, 479-488 (2013).
  22. Sato, T., et al. In vitro production of functional sperm in cultured neonatal mouse testes. Nature. 471, 504-507 (2011).
  23. Gohbara, A., et al. In vitro murine spermatogenesis in an organ culture system. Biol. Reprod. 83, 261-267 (2010).

Play Video

Cite This Article
Potter, S. J., DeFalco, T. Using Ex Vivo Upright Droplet Cultures of Whole Fetal Organs to Study Developmental Processes during Mouse Organogenesis. J. Vis. Exp. (104), e53262, doi:10.3791/53262 (2015).

View Video