Summary

Un método optimizado para aislar y expandir Invariante Natural Killer células T de ratón Bazo

Published: October 29, 2015
doi:

Summary

Here we present an adapted protocol that can be used to generate a large number of murine invariant natural killer T cells from mouse spleen. The protocol outlines an approach by which splenic iNKT cells can be enriched for, isolated and expanded in vitro using a limited number of animals and reagents.

Abstract

La capacidad de secretar citocinas rápidamente tras la estimulación es una característica funcional de la invariante natural killer T (iNKT) linaje de células. Por lo tanto, las células iNKT se caracterizan como una población innata de las células T capaz de activar y adaptativa de dirección respuestas inmunes. El desarrollo de técnicas mejoradas para la cultura y la expansión de las células iNKT murinos facilita el estudio de la biología de las células iNKT en in vitro y en sistemas modelo in vivo. Aquí se describe un procedimiento optimizado para el aislamiento y expansión de las células esplénicas murinas iNKT.

Se eliminan los bazos de ratones C57BL / 6 ratones, diseccionaron y tensas y la suspensión celular resultante se acoda sobre medios de gradiente de densidad. Después de la centrifugación, las células mononucleares del bazo (CMN) se recogen y (CD5 +) linfocitos CD5 positivas son enriquecidos por usar perlas magnéticas. células iNKT dentro de la fracción CD5 + son posteriormente teñidas con ^5; GalCer-cargado tetrámero CD1d y se purificó mediante clasificación de células activadas por fluorescencia (FACS). FACS ordenadas células iNKT son entonces cultivaron inicialmente in vitro usando una combinación de citocinas murinas recombinantes y receptor de células T unido a placa (TCR) estímulos antes de ser expandido en presencia de IL-7 murina recombinante. Usando esta técnica, aproximadamente 10 8 células iNKT se pueden generar dentro de 18-20 días de cultivo, después de lo cual se pueden utilizar para los ensayos funcionales in vitro, o in vivo experimentos de transferencia en ratones.

Introduction

Murine células asesinas naturales invariantes T (iNKT) son una población distinta de los linfocitos T innatas seleccionados en el timo por timocitos corticales que expresan CD1d 1,2. iNKT células expresan un receptor de células T (TCR) compuesto de una cadena invariante Vα14-Jα18 TCR se combina con cualquiera de Vß8, Vβ7 o Vβ2 TCR 3, que es capaz de reconocer endógena, así como antígenos lipídicos extranjeros en el contexto de CD1d. Por ejemplo, las células murinas iNKT reconocen y se activan por una llamada isoglobotrihexosylceramide antígeno de lípidos endógenos (iGb3) 4, así como α-galactosylceramide (αGalCer) 5,6, un glicolípido aislado de esponjas marinas. TCR dependiente de la activación de células iNKT promueve el cebado de la respuesta inmune adaptativa, y como resultado, las células iNKT han demostrado ser funcionalmente implicado en la mejora o desarrollo de una gama de patologías incluyendo la enfermedad reumática 7 y el cáncer <sup> 8. Actualmente, los ligandos de células iNKT sintéticos constituyen prometedores nuevos adyuvantes de vacunas que pueden ser capaces de regular una serie de condiciones inmunopatológicas.

Previamente se ha demostrado que las células iNKT pueden ser generados in vitro tras el aislamiento a partir de tejido de ratón sin embargo; muchos de estos estudios emplean el uso de células primarias presentadoras de antígeno (APC) y / o líneas celulares 9, Vα14 TCR transgénicos (Tg) 10 ratones, timomas o para la generación de hibridomas de células derivadas de iNKT 11,12. Por otra parte, un gran número de ratones, los altos volúmenes de reactivos tales como dímeros CD1d cargados-αGalCer y largos tiempos de cultivo hacen algunos protocolos publicados menos ética y económicamente atractiva 9,13.

En este informe se describe un método adaptado para el aislamiento y en la expansión in vitro de células iNKT de bazo de ratón. Más específicamente, el protocolo describe un métodopara enriquecer células iNKT de bazo de ratón que reduce los ratones, los reactivos y el tiempo necesario para la clasificación de células FACS, y propone un enfoque optimizado para la expansión de las células iNKT esplénica ordenados in vitro.

Protocol

En este estudio, se utilizaron adultos (6-8 semanas) hembra C57Bl / 6 ratones. Los animales fueron alojados y criados de acuerdo con las directrices del vivero Universidad de Gante. Todos los animales procedimientos fueron aprobados por el Comité de Cuidado y Ética Animal Institucional. 1. Preparación de células mononucleares (CMN) de ratón Bazo Sacrificar el ratón por dislocación cervical. Coloque el mouse hacia abajo en el tablero de disección y fijar la cierva…

Representative Results

Aislamiento de células mononucleares del bazo utilizando un gradiente de densidad tarda aproximadamente 1 hora y se elimina el uso de reactivos necesarios para lisar los glóbulos rojos (GR). Se obtiene un alto rendimiento de células viables utilizando este método y los escombros generados durante el esfuerzo del órgano es eliminado. Típicamente, la frecuencia de células iNKT dentro de la piscina de linfocitos del bazo oscila entre 1 y 5% del total de linfocitos T sin embargo, esto puede variar dependiendo del est…

Discussion

Los pasos críticos en el actual protocolo incluyen el aislamiento y posterior enriquecimiento de CD5 + linfocitos (Sección 1 y 2), FACS clasificación (Sección 3) y el recubrimiento inicial de células iNKT (Sección 4). De los pasos realizados en la Sección 1, recuerda a la capa cuidadosamente la suspensión celular esplénica sobre el medio de gradiente de densidad tal que una interfase celular distinta se genera después de la centrifugación. El enriquecimiento posterior para CD5 + linfocitos</su…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

D.E. and M.B.D. are members of a multidisciplinary research platform (MRP) of Ghent University, and the Ghent Researchers on Unfolded Proteins in Inflammatory Disease (GROUP-ID) consortium.

Materials

Material
recombinant murine IL-2 eBiosciences 14-8021
recombinant murine IL-12 eBiosciences 39-8122-65
recombinant murine IL-7 eBiosciences 14-8071
purified anti-mouse CD3e (145-2C11) eBiosciences 16-0032-86
purified anti-mouse CD28 (37.51) eBiosciences 16-0281-85
e450-conjugated anti-mouse CD19 (eBio1D3) eBiosciences 48-0193-82
e450-conjugated anti-mouse CD8α (53-6.7) eBiosciences 48-0081-82
FITC-conjugated anti-mouse CD5 (53-7.3) eBiosciences 11-0051-81
V500-conjugated anti-mouse CD3ε (500A2) BD biosciences 560771
anti-mouse CD5 (Ly-1) microbeads Macs Miltenyi Biotec 130-049-301
purified anti-mouse CD16/32 (2.4G2) Macs Miltenyi Biotec 130-092-575
MACS MS Columns Macs Miltenyi Biotec 130-042-201
Trypan Blue, 0.4% (wt/vol) Gibco 15250-061
RPMI 1640 medium Gibco 12633-020
1x PBS Gibco 10010-056 [Ca2+/Mg2+ – free]
Fetal calf serum Gibco 10270
L-Glutamine Gibco 25030-123
Penicillin-streptomycin Sigma-Aldrich P4458-100ML
Bovine serum albumin Sigma-Aldrich A7906-100MG
β-Mercaptoethanol Sigma-Aldrich M3148
Ethylenediaminetetraacetic acid  Sigma-Aldrich EDS-1KG
Ficoll-Paque plus GE Healthcare 71-7167-00 AF
Equipment
96-well plate F-bottom Greiner-bio one 657-160
24-well plate Greiner-bio one 665-180
6-well plate Greiner-bio one 655-180
15 ml falcon tube Greiner-bio one 188-271
50 ml falcon tube Greiner-bio one 227-261
70 µm filter Greiner-bio one 542-070
30 µm filter Millipore SVGP01050
MiniMACS separator Macs Miltenyi Biotec 130-042-102
MS Columns Macs Miltenyi Biotec 130-042-201
Water-jacketed CO2 incubator VWR
Hemocytometer VWR
Dissection Kit VWR
BD FACSAria III BD Biosciences

References

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Cite This Article
Govindarajan, S., Elewaut, D., Drennan, M. An Optimized Method for Isolating and Expanding Invariant Natural Killer T Cells from Mouse Spleen. J. Vis. Exp. (104), e53256, doi:10.3791/53256 (2015).

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