We report an in vitro method that allows the quantitation of the actual number of adhesive cells within an endothelial cell monolayer.
一炎症的基本过程的是免疫细胞从血管周围组织的腔的浸润。发生这种情况时内皮细胞,哪一行血管,成为粘合剂循环免疫细胞如单核细胞, 在体外测定本粘合性一直被完成通过量化单核细胞即坚持内皮层既可以作为直接计数的总数或通过粘附单核细胞的荧光的间接测量。虽然这样的测量做表明内皮细胞群体的平均密合性,它们是由许多因素,如细胞数目混淆,并没有揭示的内皮细胞,实际上是粘合剂的比例。这里,我们描述和演示的方法,它允许内皮细胞单层的测试群体内的粘合剂细胞的枚举。内皮细胞生长在玻璃盖玻片上和以下所需治疗与单核细胞(可荧光标记)的挑战。温育后,冲洗过程,涉及多轮浸没和排空后,将细胞固定。粘合剂内皮细胞,这是由单核细胞包围被容易地鉴定和列举,给予揭示的内皮细胞内的是粘合剂的人口的实际比例的粘附指数。
免疫细胞的浸润,如该行血管穿过内皮细胞层的单核细胞是在炎症1的过程中的一个重要步骤。这使得免疫细胞(免疫细胞)受伤的部位归巢。在其他实例和位置,如冠状动脉和颈动脉,通过内皮细胞层浸润的单核细胞,可导致这些细胞在动脉壁的不期望的长期停留,可能导致斑块2的形成。在免疫细胞浸润所有情况下,所述第一步骤涉及内皮细胞在血管的局部区域的激活。内皮细胞通过促 炎细胞因子如TNF-α和IL-6,以增加细胞表面蛋白如VCAM,ICAM及E -选择其促进免疫细胞的募集和附着到内皮细胞表面的3-表达活化6。
<p c小姑娘=“jove_content”>最初,内皮细胞粘附的测定是通过计数单核细胞附着于血管内皮单层7。该方法在精度方面的限制,导致使用放射性标记的淋巴细胞或单核细胞,接着对应于淋巴细胞或单核细胞的粘附4的放射性物质的定量。这种方法最终通过基于荧光的方法,其中感兴趣的免疫细胞进行标记荧光染料,并进行相同的程序,与上面的不同之处在于荧光代替放射性测定8取代。目前这种方法已成为最方便和由几个商业供应商试剂盒形式出售。而该测定可以测量对照和实验样本之间的粘合性的相对水平,它不会显示在荧光的变化是否是由于跨越整个电子在粘附性的均匀变化ndothelial细胞群,或者如果变化是由于粘合性的子细胞群内的差。这也是明显的是,洗涤的严格性上施加的结果具有深远的影响,并且更重要的是,冲洗掉不同内皮细胞单层之间未结合的单核细胞的均匀性将在结果的从重复样品之间的结果的接近程度和可重复性极大地影响。最近,几个系统即泵的单核细胞在媒体跨内皮细胞单层被用来解决这个问题9。此外,这些流动系统还概括的剪切力对内皮细胞的作用。尽管这种系统的优点是显而易见的,非常有吸引力,这也是很重要的认识到,虽然内皮细胞的粘附性,可以大大增加,如在急性炎症的情况下,受到诸如TNFα,一些其他的活化剂,如电离辐射引导学生回答10牛逼的变化帽子是不容易在体外实验的时间框架内通过这些非常严格的系统检测。虽然内皮细胞粘附性的这样的细微变化容易漏诊或驳回体外 ,它不一定是良性的体内 ,其中生活的时间,这是慢性炎症的特征内的这些小的变化,能够发挥非常显著的结果。因此,一个强大的,但敏感,和具体的方法来检测和测量内皮细胞粘合性是必要的。在这里,我们报告直接测量内皮细胞粘附性的方法。该方法不依赖于荧光测定作为内皮细胞粘附性的间接替代指标。它揭示了变化密合性是否是由于在所有的细胞均匀变化,或只限于一个亚群。此外,它允许共染色的内皮细胞用标记物如衰老相关的β-半乳糖苷酶,细胞活力擦伤ker的,Calcien AM到抗细胞表面和胞内蛋白质,允许个别粘合剂的内皮细胞的某些细胞状态或特定的蛋白质的表达的相关性。
上述的单核细胞粘附测定成功地用于设计,研究血管内皮细胞单层10的电离辐射的生物效应的实验。虽然这是不提供给评估内皮单层的密合性的唯一方法,它是使一单层即粘合剂内的比例或内皮细胞的百分比的定量的唯一方法。这是一个重要的区别是在单核细胞的粘附的全球量变,如由其他方法测量可以归因要么在内皮单层或一个亚群的内皮细胞的增加粘合性的所有小区的密合性的一般上升单层内,如图上面的例子。具有该信息的值是通过以下事实例举的能力来量化内皮细胞表现出增强的粘合性的百分比后照射导致的分级表能的结论,即这种效果不是由于特定的基因作为细胞是粘接剂的百分比的基因突变分别为大大高于(超过1000倍),该这将随机突变的基因的预期通过X射线在该剂量。
允许良好的结果的可重复性的因素是清洗制度。作为清洗方法涉及在玻璃盖玻片浸入洗涤缓冲液,接着通过涂抹在组织,避免了可变性在缓冲湍流这不可避免地产生于洗涤缓冲液到井的移液的老方法。事实上,这是过度的变异性使用迫使我们设计一个洗涤过程,从洗涤步骤中除去的变异元件移液方法获得的重复之间的观察。
诚然,这个实验谎言在需要的限制,开展单核细胞簇的人工计数,其中做Ñ加时赛允许它适于高通量分析。其次,在许多单核细胞如何构成集群的决定必须被半任意确定和电平可被设置得太高,从而导致一些真正簇的排斥。的剪切力在该方法的缺乏也可看作是一种限制在其中内皮细胞的严重增强粘附性诱导实验( 例如,+TNFα)。在其他情况下然而,由于缺乏剪切力是有利的,因为它允许粘合性少夸张增强的检测。在单核细胞粘附性适度增加可能是特别重要的意义。 在体内 ,单核细胞不会(在典型的实验时间),预计在大批附加到内皮细胞适度增加粘附性,主要是由于剪切力。在时间然而,一些单核细胞可能会,这是更可能代表慢性炎症的环境。因此,没有剪切力是一个优势,因为它提供了实验时间框架这是典型的短,也可能转瞬即逝,让剪切应力下可以观察到适度增加粘附透露的机会很小增加内皮细胞粘附性。
该测定对其他分析,如衰老测定和免疫荧光染色后,经受了细胞的能力增加了这种方法的有效性,因为它允许特定的内皮细胞对特定细胞蛋白质或细胞状态的密合性的关联作为证明上述功能,该功能不可与旧的附着力测定。
这种方法已用于EST2永生化人冠状动脉内皮细胞和类似的结果也与原代人冠状动脉内皮细胞10获得,这表明它不是特定于只是一个特定的细胞系。此外,ADO测定血管内皮细胞的粘附性的这种方法的ption不排除使相同的细胞,以测量标记的免疫细胞的荧光标准粘附试验。总之,这份报告表明,这种方法是通用的,具有包容性,并提供比标准粘附试验更多的信息。
The authors have nothing to disclose.
We are very grateful to Simon Bouffler for his full support and to Public Health England for infrastructure support. This work was supported by Public Health England throughthe National Institute for Health Research (NIHR) grant. This report is work commissioned by the NIHR. The views expressed in this publication are those of the authors and not necessarily those of the NHS, NIHR or the Department of Health. The funders had no role in study design, data collection and analysis, decision to publish, or preparation of the manuscript.
Hepes Buffered Saline Solution (HBSS) | Sigma | H6648 | |
Glass coverslips Round 12mm Diameter | Menzel-Glaser | CB00120RA1 | |
24-well cluster plate | Costar | 3526 | |
Meso-Endo Cell media | Cell Applications | 212-500 | |
Trypsin-EDTA | Sigma | T4174 | |
Soybean trypsin inhibitor | Life Technologies | 17075-029 | |
Cell Tracker Green | Life Technologies | C7025 | |
RPMI | Sigma | R8758 | |
Foetal Calf Serum | Life Technologies | 10500064 | |
Beta glasctosidase Assay kit | CellSignaling | 9860 | |
Fibronectin | Sigma | F0895 |