Summary

ヒト多能性幹細胞における転写因子の過剰発現によって、造血内皮と血液の直接誘導

Published: December 03, 2015
doi:

Summary

This protocol describes the efficient induction of hemogenic endothelium and multipotential hematopoietic progenitors from human pluripotent stem cells via the forced expression of transcription factors.

Abstract

開発中に、造血細胞は、内皮細胞、造血内皮(HE)の専門サブセットから生じます。 in vitroでのモデルHE開発は、内皮、造血転移の機構研究および造血仕様のために不可欠です。ここでは、転写因子の異なるセットの過剰発現を介して、ヒト多能性幹細胞(hPSCs)から彼を効率的に誘導するための方法を説明します。 GATA2およびTAL1転写因子の組み合わせは赤血球と巨核球電位とHEの製造を可能にしながらETV2 GATA1およびGATA2またはTFの組み合わせが、汎骨髄電位HEを誘導するために使用されます。 GATA2およびTAL1の組み合わせにLMO2の添加は、実質的に分化を促進し、赤血球および巨核球細胞の生産を増加させます。この方法では、hPSCsからHE誘導の効率的かつ迅速な手段を提供し、内皮hematopoietiの観察を可能にします培養皿のC推移。プロトコルはhPSCsの導入手順およびHEの形質導入後の分析や血液前駆細胞を含んでいます。

Introduction

自己再生および血液を含む三胚葉の細胞に分化するために、造血開発の機構研究のためにそれらの貴重なツールを作る、血液疾患のモデリング、薬物スクリーニングにヒト多能性幹細胞(hPSCs)のユニークな能力、毒性試験、および細胞の治療法の開発。内皮造血移行1,2を通じて造血内皮(HE)から胚進行中の血液形成するので、培養液中で彼の世代は、造血移行および造血仕様に内皮を制御する分子メカニズムを研究するために不可欠であろう。 HEの研究のための現在の方法は、造血サイトカイン3-5、および造血支持する間質細胞6,7または細胞外の2次元文化のあるhPSCsの共培養を加えた集合体でhematoendothelial分化(したEB)の誘導に基づいています行列やCytokines 8,9。これらの古典的な分化方法は、細胞表面で作用し、最終的にhematoendothelial発展を導く転写プログラムの活性化につながる分子経路のカスケードを開始する外部信号の導入に基づいています。したがって、これらのシステムでhPSCsの分化の効率は、それらの信号の効果的な誘導、核へのシグナル伝達、および特定の転写調節因子の結果として生じる活性化に依存しています。また、従来の分化培養では、彼の研究は、細胞選別を使用して、HE細胞を単離する追加の工程を必要とします。ここでは、造血転写因子の過剰発現によるHEと血液の直接誘導するための単純なプロトコルを記述します。この方法は、面倒なセルソーティングの手順を使用して、HEを単離を必要とせずに、皿および造血への遷移内皮の直接観察では、彼を効率的に誘導することができます。

ヒト多能性幹細胞からのHE及び血液の形成を効率的にわずか数の転写因子(TFS)を過剰発現させることによって誘導することができます。 hPSCsから堅牢な汎骨髄造血を誘導することができるTFの最適な組み合わせは、ETV2およびGATA1またはGATA2が含まれています。対照的に、GATA2およびTAL1の組み合わせがerythromegakaryocytopoiesis 10を誘導します 。 CD73 – –徐々に初期造血マーカーCD43 7の式で定義された造血表現型を獲得HE細胞これらの因子の過剰発現を通じてhPSCsのプログラミングは、インクルードは+ CD43-CAD VEに直接hPSCsを区別します。ヒト多能性幹細胞法の直接のプログラミングのためのこのレンチウイルスベースの方法は、機構研究、造血への遷移内皮の研究、および造血開発と仕様の転写調節のために、彼と血液細胞の生成に適用されます。 Cが、urrentプロトコルは、導入遺伝子の構成的発現を使用して、血液の生産を記載し、同様の結果が変更されたmRNAの10を使用して得ることができました。

Protocol

1.ウイルス調製物および転写因子の組み合わせ ETV2、GATA1、GATA2、TAL1およびLMO2のためのタンパク質をコードするDNA( 表1)を含む PSIN-EF1αレンチウイルス発現プラスミドを含む溶液を準備します。 230ナノメートル、260ナノメートル、および280 nmで分光光度計を用いてUV吸収を記録することにより、レンチウイルス産生のために用いられたプラスミド調製物の濃?…

Representative Results

転写因子の過剰発現によってhPSCsからHE及び血液誘導の概略図は、GATA1またはGATA2組合せで、図1 ETV2に示されている、TAL1 +/- LMO2の組み合わせは主にエリスロ-巨核球造血を誘導GATA2ながら、汎骨髄造血を誘導します。どちらのTFの組み合わせは直接、その後造血分化の明確なスペクトルと血液前駆細胞に変換HE細胞を誘導しました。血液への多能性状態からhPSCsの分化は、彼は平均4日?…

Discussion

TFの過剰発現によるhPSCsの造血分化のための上記の方法、それによってより最大30万血液細胞の産生を可能にする、ヒトES細胞やiPS細胞から彼と骨髄とerytho-magakaryocytic前駆細胞の生成のための迅速かつ効率的なアプローチを表し、 1個の百万多能性幹細胞10。この方法は、複数のhESCと性IPSCライン10で一貫性のある分化を示しました。 ETV2とGATA2、GATA1の要因だけでなく、GATA2およ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Matt Raymond for editorial assistance. This work was supported by funds from the National Institute of Health (U01HL099773, R01HL116221, and P51 RR000167) and The Charlotte Geyer Foundation.

Materials

Table 1. Induction of hPSCs differentiation with trancription factors and analysis of hemogenic endothelium and blood cells.

pSIN4-EF1a-ETV2-IRES-Puro  Addgene Plasmid #61061 Lentiviral Vector
pSIN4-EF1a-GATA2-IRES-Puro  Addgene Plasmid #61063 Lentiviral Vector
pSIN4-EF1a-GATA1-IRES-Puro  Addgene Plasmid #61062 Lentiviral Vector
pSIN4-EF1a-TAL1-IRES-Puro  Addgene Plasmid #61062 Lentiviral Vector
pSIN4-EF1a-LMO2-IRES-Puro  Addgene Plasmid #61064 Lentiviral Vector
Hexadimethrine bromide (Polybrene)  Sigma-Aldrich 107689-10G Cationic polymer used to increase the efficiency of infection
Y-27632 (Dihydrochloride) ROCK inhibitor STEMCELL Technologies 72302 RHO/ROCK pathway inhibitor Inhibits ROCK
StemPro Accutase Cell Dissociation Reagent Life Technologies A11105-01 Cell Dissociation Reagent
Incomplete (growth factor- free) culture medium                                              mTeSR1 Custom formulation  WiCell Research Institute (Madison, WI) MCF Serum-free mTeSR1 medium without bFGF and TGFb 
human SCF Peprotech 300-07 Premium grade
human TPO Peprotech 300-18 Research grade
human FGF-basic Peprotech 100-18B Premium grade
CD144 (VE-cad) FITC BD Biosciences 560411 Endothelial marker (FACS)
CD226 PE BD Biosciences 338305 Hematopoietic (FACS)
CD43 PE BD Biosciences 560199 Hematopoietic (FACS)
CD73 APC R&D Systems FAB5795A Endothelial marker (FACS)
CD45 APC BD Biosciences 555485 Hematopoietic (FACS)
7AAD Life Technologies A1310 Live/Dead assay (FACS)
Paraformaldehyde  Sigma-Aldrich P6148-500G Cell fixation 
Triton X-100  Sigma-Aldrich T9284-500ML  Permeabilization 
FBS Fisher Scientific SH3007003 Fetal bovine serum
Mouse anti-human CD43 BD Biosciences 551457 Pure, primary antibody for Immunofluorescence (IF) staining
Rabbit anti-human VE-cadherin BenderMedSystem BMS158 Primary (IF)
Anti-rabbit Alexa Fluor 488-conjugated JacksonResearch 715-486-152 Secondary (IF)
Anti-mouse Alexa Fluor 594-conjugated JacksonResearch 715-516-150  Secondary (IF)
DAPI nucleic acid stain Life Technologies D1306  Live/Dead assay (IF)
Clonogenic medium MethoCult H4435 Enriched STEMCELL Technologies 4435 CFC-assay
Wright Stain solution Sigma -Aldrich 32857 Staining cytospins

Table 2. hPSCs culture.

Human Pluripotent Stem Cells (hPSCs)  WiCell Research Institute (Madison, WI) hESCs (WA01, WA09) human Embryonic Stem cells; iPSCs (DF-19-9-7T, DF-4-3-7T) transgene-free induced Pluripotent Stem Cells hPSCs are able to self-renew and to differentiate into cells of three germ layers
Complete serum-free medium for culture of hPSCs                                                    mTeSR1 media   WiCell Research Institute (Madison, WI) M500  Serum-free  medium with growth factors for feeder free culture of ESC/iPSCs
Matrigel BD Biosciences/ Corning  356234 Matrix for maintenance of human ESC/iPSCs
DMEM/F-12, powder  Life Technologies 12500-062 Basal Medium 
HyClone Dulbecco's PBS powder Fisher Scientific dSH30013.04 PBS
Dispase II, powder Life Technologies 17105-041 Neutral protease, Cell dissociation

Table 3. Primers for detection of virus genomic integration.

Primer's Name Forward (Fwd)  5’ –>3’ Reverse (Rev) 5’–>3’ Discription 
pSIN EF1a Fwd TTC CAT TTC AGG TGT CGT GA EF1a promoter sequence
GATA1 Rev TCC CTG TAG TAG GCC AGT GC  Coding Region 
GATA2 Rev GGT TGG CAT AGT AGG GGT TG  Coding Region 
TAL1 Rev AGG CGG AGG ATC TCA TTC TT  Coding Region 
LMO2 Rev GGC CCA GTT TGT AGT AGA GGC  Coding Region 
ETV2 Rev GAA CTT CTG GGT GCA GTA AC   Coding Region 

References

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Elcheva, I., Brok-Volchanskaya, V., Slukvin, I. Direct Induction of Hemogenic Endothelium and Blood by Overexpression of Transcription Factors in Human Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (106), e52910, doi:10.3791/52910 (2015).

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