This protocol describes the efficient induction of hemogenic endothelium and multipotential hematopoietic progenitors from human pluripotent stem cells via the forced expression of transcription factors.
Tijdens de ontwikkeling hematopoietische cellen ontstaan uit een gespecialiseerde subset van endotheelcellen, hemogenic endotheel (HE). Modeling HE ontwikkeling in vitro is essentieel voor mechanistische studies van de endotheel-hematopoietische overgang en hematopoietische specificatie. Hier beschrijven we een werkwijze voor de efficiënte inductie van HE uit humane pluripotente stamcellen (hPSCs) door de overexpressie van verschillende sets van transcriptiefactoren. De combinatie van ETV2 en GATA1 of GATA2 TF wordt gebruikt voor HE induceren met pan-myeloïde potentieel, terwijl een combinatie van GATA2 en Tal1 transcriptiefactoren maakt de productie van HE met erythroïde en megakaryocytische potentieel. De toevoeging van LMO2 om GATA2 en Tal1 combinatie aanzienlijk versnelt differentiatie en verhoogt erytroïde en megakaryocytische cellen productie. Deze werkwijze verschaft een efficiënte en snelle manier van HE-inductie uit hPSCs en maakt de waarneming van de endotheel-hematopoietic overgang in een cultuur schotel. Het protocol bevat procedures hPSCs transductie en post-transductie analyse van HE en bloed voorlopers.
Het unieke vermogen van humane pluripotente stamcellen (hPSCs) om te hernieuwen en te differentiëren tot cellen van de drie kiembladen, met inbegrip van bloed, maken ze een waardevol instrument voor de mechanistische studies van hematopoietische ontwikkeling modellering van bloedziekten, drug screening, toxiciteit studies, en de ontwikkeling van cellulaire therapieën. Omdat de vorming van bloed in het embryo opbrengsten van hemogenic endotheel (HE) door een endotheliale hematopoietische overgang 1,2, de opwekking van HE in culturen zou essentieel om de moleculaire mechanismen reguleren van de endotheelcellen aan hematopoietische overgang en hematopoietische specificatie te bestuderen. Huidige werkwijzen voor het onderzoeken van HE zijn gebaseerd op de inductie van differentiatie in hematoendothelial aggregaten (EBS) met toevoeging van hematopoïetische cytokinen 5/3 en co-kweek van hPSCs met hematopoiese-ondersteunende stromale cellen 6,7 of tweedimensionale kweken met extracellulaire matrices en cytokines 8,9. Deze klassieke differentiatie methoden zijn gebaseerd op de introductie van externe signalen handelen op het celoppervlak en het initiëren van cascades van moleculaire mechanismen die uiteindelijk leiden tot de activering van transcriptie programma begeleiden hematoendothelial ontwikkeling. Derhalve de efficiëntie van hPSCs differentiaties in deze systemen is gebaseerd op een effectieve inductie van die signalen, signaaltransductie naar de kern en de resulterende activatie van specifieke transcriptiefactoren. Daarnaast is de studie van HE gebruikelijke differentiatie culturen vereist de extra stap van het isoleren van cellen met behulp HE celsortering. Hier beschrijven we een eenvoudig protocol voor rechtstreekse inductie van HE en bloed door overexpressie van hematopoietische transcriptiefactoren. Deze werkwijze maakt een efficiënte inductie van HE in een schotel en directe observatie van de endotheliale hematopoietische overgang zonder de noodzaak van isolatie van HE via een omslachtige procedure celsortering.
Vorming van HE en bloed van humane pluripotente stamcellen efficiënt worden geïnduceerd door overexpressie enkele transcriptiefactoren (TF). De optimale combinatie van TFs kan induceren robuuste pan-myeloïde hematopoiese van hPSCs omvat ETV2 en GATA1 of GATA2. In tegenstelling, een combinatie van GATA2 en Tal1 induceert erythromegakaryocytopoiesis 10. Programmering hPSCs door de overexpressie van deze factoren onderscheidt hPSCs direct naar VE-cad + CD43 – CD73 – HE cellen die geleidelijk verwerven van de hematopoietische fenotype bepaald door de expressie van de vroege hematopoietische marker CD43 7. Deze lentivirale methode voor de rechtstreekse programmering van humane pluripotente stamcellen methode is toepasbaar voor het genereren van HE en bloedcellen voor mechanistische studies, studies van endotheliale hematopoietische overgang en transcriptieregulatie van hematopoietische ontwikkeling en specificatie. Hoewel de cUIDIGE protocol beschrijft bloedproductie via constitutieve expressie van de transgenen, soortgelijke resultaten kunnen worden verkregen met gewijzigde mRNA 10.
De hierboven beschreven werkwijze voor hematopoëtische differentiatie van hPSCs door overexpressie van TFs, is een snelle en doeltreffende benadering voor het genereren van HE en myeloïde en erytho-magakaryocytic progenitoren hESCs en iPSCs, waardoor de productie van maximaal 30 miljoen bloedcellen 1 miljoen pluripotente stamcellen 10. Deze methode tentoongesteld consistente differentiatie in meerdere hESC en iPSCs lijnen 10. Tijdens de differentiatie door ETV2 en GATA2, GATA1 factoren evenals GA…
The authors have nothing to disclose.
We thank Matt Raymond for editorial assistance. This work was supported by funds from the National Institute of Health (U01HL099773, R01HL116221, and P51 RR000167) and The Charlotte Geyer Foundation.
Table 1. Induction of hPSCs differentiation with trancription factors and analysis of hemogenic endothelium and blood cells.
pSIN4-EF1a-ETV2-IRES-Puro | Addgene | Plasmid #61061 | Lentiviral Vector |
pSIN4-EF1a-GATA2-IRES-Puro | Addgene | Plasmid #61063 | Lentiviral Vector |
pSIN4-EF1a-GATA1-IRES-Puro | Addgene | Plasmid #61062 | Lentiviral Vector |
pSIN4-EF1a-TAL1-IRES-Puro | Addgene | Plasmid #61062 | Lentiviral Vector |
pSIN4-EF1a-LMO2-IRES-Puro | Addgene | Plasmid #61064 | Lentiviral Vector |
Hexadimethrine bromide (Polybrene) | Sigma-Aldrich | 107689-10G | Cationic polymer used to increase the efficiency of infection |
Y-27632 (Dihydrochloride) ROCK inhibitor | STEMCELL Technologies | 72302 | RHO/ROCK pathway inhibitor Inhibits ROCK |
StemPro Accutase Cell Dissociation Reagent | Life Technologies | A11105-01 | Cell Dissociation Reagent |
Incomplete (growth factor- free) culture medium mTeSR1 Custom formulation | WiCell Research Institute (Madison, WI) | MCF | Serum-free mTeSR1 medium without bFGF and TGFb |
human SCF | Peprotech | 300-07 | Premium grade |
human TPO | Peprotech | 300-18 | Research grade |
human FGF-basic | Peprotech | 100-18B | Premium grade |
CD144 (VE-cad) FITC | BD Biosciences | 560411 | Endothelial marker (FACS) |
CD226 PE | BD Biosciences | 338305 | Hematopoietic (FACS) |
CD43 PE | BD Biosciences | 560199 | Hematopoietic (FACS) |
CD73 APC | R&D Systems | FAB5795A | Endothelial marker (FACS) |
CD45 APC | BD Biosciences | 555485 | Hematopoietic (FACS) |
7AAD | Life Technologies | A1310 | Live/Dead assay (FACS) |
Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | P6148-500G | Cell fixation |
Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T9284-500ML | Permeabilization |
FBS | Fisher Scientific | SH3007003 | Fetal bovine serum |
Mouse anti-human CD43 | BD Biosciences | 551457 | Pure, primary antibody for Immunofluorescence (IF) staining |
Rabbit anti-human VE-cadherin | BenderMedSystem | BMS158 | Primary (IF) |
Anti-rabbit Alexa Fluor 488-conjugated | JacksonResearch | 715-486-152 | Secondary (IF) |
Anti-mouse Alexa Fluor 594-conjugated | JacksonResearch | 715-516-150 | Secondary (IF) |
DAPI nucleic acid stain | Life Technologies | D1306 | Live/Dead assay (IF) |
Clonogenic medium MethoCult H4435 Enriched | STEMCELL Technologies | 4435 | CFC-assay |
Wright Stain solution | Sigma -Aldrich | 32857 | Staining cytospins |
Table 2. hPSCs culture.
Human Pluripotent Stem Cells (hPSCs) | WiCell Research Institute (Madison, WI) | hESCs (WA01, WA09) human Embryonic Stem cells; iPSCs (DF-19-9-7T, DF-4-3-7T) transgene-free induced Pluripotent Stem Cells | hPSCs are able to self-renew and to differentiate into cells of three germ layers |
Complete serum-free medium for culture of hPSCs mTeSR1 media | WiCell Research Institute (Madison, WI) | M500 | Serum-free medium with growth factors for feeder free culture of ESC/iPSCs |
Matrigel | BD Biosciences/ Corning | 356234 | Matrix for maintenance of human ESC/iPSCs |
DMEM/F-12, powder | Life Technologies | 12500-062 | Basal Medium |
HyClone Dulbecco's PBS powder | Fisher Scientific | dSH30013.04 | PBS |
Dispase II, powder | Life Technologies | 17105-041 | Neutral protease, Cell dissociation |
Table 3. Primers for detection of virus genomic integration.
Primer's Name | Forward (Fwd) 5’ –>3’ | Reverse (Rev) 5’–>3’ | Discription |
pSIN EF1a Fwd | TTC CAT TTC AGG TGT CGT GA | — | EF1a promoter sequence |
GATA1 Rev | — | TCC CTG TAG TAG GCC AGT GC | Coding Region |
GATA2 Rev | — | GGT TGG CAT AGT AGG GGT TG | Coding Region |
TAL1 Rev | — | AGG CGG AGG ATC TCA TTC TT | Coding Region |
LMO2 Rev | — | GGC CCA GTT TGT AGT AGA GGC | Coding Region |
ETV2 Rev | — | GAA CTT CTG GGT GCA GTA AC | Coding Region |