Naïve CD4+ T cells polarize to various subsets depending on the environment at the time of activation. The differentiation of naïve CD4+ T cells to various effector subsets can be achieved in vitro through the addition of T cell receptor stimuli and specific cytokine signals.
Antigen inexperienced (naïve) CD4+ T cells undergo expansion and differentiation to effector subsets at the time of T cell receptor (TCR) recognition of cognate antigen presented on MHC class II. The cytokine signals present in the environment at the time of TCR activation are a major factor in determining the effector fate of a naïve CD4+ T cell. Although the cytokine environment during naïve T cell activation may be complex and involve both redundant and opposing signals in vivo, the addition of various cytokine combinations during naive CD4+ T cell activation in vitro can readily promote the establishment of effector T helper lineages with hallmark cytokine and transcription factor expression. Such differentiation experiments are commonly used as a first step for the evaluation of targets believed to promote or inhibit the development of certain CD4+ T helper subsets. The addition of mediators, such as signaling agonists, antagonists, or other cytokines, during the differentiation process can also be used to study the influence of a particular target on T cell differentiation. Here, we describe a basic protocol for the isolation of naïve T cells from mouse and the subsequent steps necessary for polarizing naïve cells to various T helper effector lineages in vitro.
Концепция различных линий или подмножеств CD4 + Т-хелперов (Th) клетки была примерно со второй половины 20-го века 1. Распознавание антигеном в присутствии костимуляторных сигналов приводит в нескольких раундах клеточной пролиферации и дифференцировки в конечном итоге в эффектора Th-клеток. Тип Th клетки, генерируемого в ходе этого процесса зависит от окружающей среды цитокинов, присутствующих во время активации 2. Первоначально наивные Th клетки думал поляризовать в 2 различных линий следующих T-клеточного рецептора (TCR) активации, костимулирующего CD28 перевязки и цитокинов сигнализации. Тип 1-хелперы (Th1) характеризуются эффекторной производства цитокина IFN & gamma; а также их потребности в ИЛ-12 сигнализации в процессе дифференциации 3,4. В конце концов выяснилось, что дифференцированные клетки Th1 имеют генетический профиль, который наиболее отчетливо характеризуется бу выражение T коробки фактора семья транскрипции, Tbx21 (T-бет), который считается мастером регулятором генетической программы Th1 5. Кроме того, ИЛ-12, а также может способствовать IFN & gamma; Т-прогноз выражение 6,7. В иммунного ответа, Th1-клетки играют важную роль в защите организма против внутриклеточных патогенов, а также сильных промоторов аутоиммунного воспалительного процесса. В отличие от этого, тип 2-хелперы (Th2) требуют IL-4 по их развитием и эффекторные цитокины, включая IL-4, IL-5 и IL-13, имеют важное значение для приведения ответов В-клеточные и являются патогенными при аллергии 8, 9. Как Th1 клеток, Th2 клетки были обнаружены, чтобы выразить свою собственную регулятор мастер транскрипции, называют GATA-3 10,11. Интересно, что присутствие поляризующих цитокинов и генерации конкретного Th линии являются антагонистами к развитию других 2,12, предполагая, что только подмножество частности че может стать доминирующим в ходе иммунного ReОтклик.
Поскольку идентификации клонов Th1 и Th2, дальнейшая работа показала, еще более уникальным подмножества Т-хелперных клеток, в том числе фолликулярной помощника (TFH), IL-9-продуцирующих (Th9), и IL-22-продуцирующие (Th22) (последнее рассмотрены в 13). Для целей в пробирке экспериментов дифференциации, этот протокол будет сосредоточена только на два дополнительных Th подмножества, называемые регуляторные Т-клетки (Treg) и Ил-17 по производству CD4 + Т-клетки (TH17). CD25 + регуляторных Т-клеток может происходить естественным (nTreg) в тимусе; Наивные клетки Th также могут быть вызваны (iTreg), чтобы стать регулирования на периферии (обзор 14,15). Оба типа регуляторных Т-клеток выразить характеристика транскрипционный фактор, названный forkhead P3 коробка (FOXP3), которая имеет решающее значение для их эффекторных механизмов подавления, которые включают растворимые противовоспалительное производства посредника, IL-2 потребления, а ячейку контактно-зависимые механизмы 14,15. Отсутствие Foxp3 Результаты выражение в тяжелой, полиорганной аутоиммунных расстройств называется иммунной нарушения, так polyendocrinopathy, энтеропатия, с Х-хромосомой синдром (IPEX), что свидетельствует о критической роли этого Th подмножества в решении воспаление и регулирования периферической толерантности к собственным антигенам 16. В пробирке, наивные CD4 + Т-хелперы до регулировать Foxp3 и стать привержены программы Treg при стимуляции IL-2 и TGF-β 14,15. Там может быть умеренной до значительной пластичности в CD4 + Т-клеточных поколений, особенно при рассмотрении только продукцию цитокинов (обзор в 17,18). Тем не менее, для целей в пробирке протоколов дифференциации, мы будем обсуждать каждое из подмножеств как уникального рода.
Недавно подмножество Th17 клеток, которые производит цитокин IL-17 была определена в качестве уникального линии с про-воспалительных функций, особенно патогенные во время аутоиммунного воспаления 19-21, Th17 клетки экспрессируют уникальный транскрипционный фактор, названный ретиноидов, связанные с гамма-рецептор сирота т (RORγt), который координирует генетическую программу 22 Th17. TGF-beta является важным для генерации Th17 линии через индукции RORγt. Тем не менее, влияние сигналов TGF-beta, как полагают, вызывают только Th17 приверженность при синергизма с IL-6 (обзор в 12). Дальнейшие исследования показали, что множество других сигналов, которые могут положительно регулируют Th17 приверженность, в том числе ИЛ-1β, увеличение натрия и TLR сигнализации 23-26. Другие отчеты предполагают, что патогенные клетки Th17 в естественных условиях являются те, которые фактически обходить сигнализации TGF-beta, а вместо этого полагаются на сочетание ИЛ-1, ИЛ-6 и ИЛ-23 для их дифференциации 27. Таким образом, Th17 клетки могут быть получены из различных сигнальных путей; для целей настоящего протокола, часто используемых (TGF-beta и IL-6) путь для Th17 коммитированиебудут представлены.
Протоколы дифференцирования, описанные ниже, для всех эффекторных линий зависит от фиксированного антитела, стимулов для TCR и CD28 на протяжении всего хода эксперимента. Тем не менее, другие показали, что TCR-активации с антиген-представляющих клеток 28 или сшивающий анти-CD3 и анти-CD28 антител с антителом хомячка в течение 2 дней 29 также весьма эффективным средством индукции генерацию различных Th подмножеств. Протокол, представленные здесь основывается на ранее сообщалось о способах выделения мышиных CD4 + Т-клеток из вторичных лимфоидных органов 30 и генерации клетки Th17 31. Одним из основных отличий является то, что этот протокол основан на использовании клеточного сортера, чтобы изолировать наивных CD4 + Т-клеток от лимфоидных тканей. Тем не менее, многие компании сейчас предлагают для экспресс разделения, который может обогатить для простых CD4 + Т-клеток, которые могут быть в состоянии обойти требование пили сортировки в зависимости от эксперимента. Методы и реагенты, представленные в этом протоколе то, что мы обычно используем и нахожу, чтобы быть наиболее эффективным. Однако, имейте в виду, что альтернативные реагенты и методологии существуют для многих из шагов, представленных ниже, и это до индивидуального лаборатории, чтобы определить, что будет работать лучше для своих целей.
В то время как селезенка содержит наивные Th клетки, доля этой группы населения в лимфатических узлах гораздо выше. Неправильное выявление и устранение лимфатических узлов в этом протоколе приведет к плохим выходом наивных клеток. Это может быть особенно трудно у пожилых мышей и мышей-?…
The authors have nothing to disclose.
Авторы хотели бы поблагодарить всех членов лаборатории Рейнольдса, при Розалинд Франклин университета медицины и науки, а также лабораторию Чен Донг в Университете Техаса MD Anderson онкологическом центре для оптимизации этого протокола. Эта работа была поддержана грантом на JMR из Национального института здоровья (K22AI104941).
Complete RPMI: | Warm in a 37 oC water bath before use | ||
RPMI 1640 Media | Life Technologies | 11875119 | |
10 % FBS | Life Technologies | 26140-079 | |
1000X 2-mercaptoethanol | Life Technologies | 21985023 | |
100X Pen/Strep | Life Technologies | 15140122 | |
100X L-glutamine | Life Technologies | 25030081 | |
120 micron nylon mesh | Amazon | CMN-0120-10YD | Cut into 2 cm2 squares and autoclave |
Alternative: 100 micron cell strainers | Fisher | 08-771-19 | Alternative to cutting nylon mesh |
autoMACS running buffer | Miltenyi | 130-091-221 | Warm in a 37 oC water bath before use |
autoMACS rinsing solution | Miltenyi | 130-091-222 | Warm in a 37 oC water bath before use |
CD4 beads | Miltenyi | 130-049-201 | |
ACK lysis buffer | Life Technologies | A10492-01 | |
Cytokines: | |||
Human (h) IL-2 | Peprotech | 200-02 | |
Recombinant mouse (rm) IL-4 | Peprotech | 214-14 | |
rmIL-6 | R & D Systems | 406-ML-025 | |
rmIL-12 | Peprotech | 210-12 | |
hTGFb | R & D Systems | 240-B-010 | |
Antibodies: | |||
2C11 (anti-CD3) | BioXcell | BE0001-1 | |
37.51 (anti-CD28) | BioXcell | BE0015-1 | |
11B11 (anti-IL-4) | BioXcell | BE0045 | |
XMG1.2 (anti-IFNg) | BioXcell | BE0055 | |
anti-CD62L-FITC | BioLegend | 104406 | Use at 1:100 |
anti-CD25-PE | BioLegend | 102008 | Use at 1:400 |
anti-CD4-PerCP | BioLegend | 100434 | Use at 1:1000 |
anti-CD44-APC | BioLegend | 103012 | Use at 1:500 |
Phorbol 12-myristate 13 acetate (PMA) | Sigma-Aldrich | P-8139 | Prepare a stock at 0.1 mg/ml in DMSO and freeze aliquots at -20 oC |
Ionomycin | Sigma-Aldrich | I-0634 | Prepare a stock at 0.5 mg/ml in DMSO and freeze aliquots at -20 oC |
Brefeldin A | eBioscience | 00-4506-51 | Use at 1:1000 |