Mutations that lead to congenital heart defects benefit from in vivo investigation of cardiac structure during development, but high-resolution structural studies in the mouse embryonic heart are technically challenging. Here we present a robust immunofluorescence and image analysis method to assess cardiomyocyte-specific structures in the developing mouse heart.
心臓発生時には、心筋の固有の構造的および機能的サルコメア、収縮筋原繊維、インターカレートされたディスクを含む単位、及びcostameresの生成は、時間と空間内の複数のコンポーネントの協調組み立てが必要です。これらの部品の組立の中断は、発達心臓の欠陥につながる。免疫蛍光染色技術は、筋原線維の成熟を プローブするために、培養心筋細胞において一般的に使用されているが、これをex vivoアプローチが筋細胞が完全に、培養物中の生体内の正常な機械的入力の欠如、及び心内膜の手がかりが存在しないことを差別化するため程度によって制限される。マウス心臓の開発の研究に免疫蛍光技術の適用が望ましいが、より技術的に困難であり、及び方法は、多くの場合、心臓発生の初期段階での筋節を可視化するのに十分な感度と分解能を欠く。ここでは、共免疫染色μに対して堅牢で再現性のある方法を記載ltipleタンパク質または胚性マウス心臓における免疫蛍光染色で同時可視化する蛍光タンパク質へと筋原、介在板、およびcostameresの開発を分析するために、このメソッドを使用します。この方法はさらに、発育心臓欠陥につながる突然変異によって引き起こさ心筋の構造的変化を評価するために適用することができる。
開発中は、心臓の収縮は心筋細胞が正中線に移行し、線形心管1,2を形成した直後に始まる。サルコメアは、心筋細胞内の基本的な収縮単位です。この高度に組織化された細胞骨格構造は、Mライン( 図1)に固定された筋節αアクチニン(S-αアクチニン)とミオシン繊維によってZ-ディスクに固定されたアクチンフィラメントが含まれています。心筋細胞が成熟するにつれて、筋節は、セルにまたがる筋原繊維を形成するために直列に組み立てる。筋原線維は、N-カドヘリンのような接着結合タンパク質は、介在板などの-αアクチニン3としてZディスク要素のサブセットとの過渡的接合を含む細胞-細胞接合構造により心筋の両端に固定されているおよびβカテニン、ギャップ結合タンパク質、およびデスモソーム( 図1)4。縦膜、また、末梢筋原繊維のZディスクに沿ってcostameresを介して細胞膜に付着する。これらの特殊接着斑は、心筋細胞( 図1)4に追加の構造的支持を提供するために、筋原線維、原形質膜および細胞外マトリックスとの間のアンカーを提供する。初期の心臓発生において、心筋細胞、心室の空間に突出しており、比較的成熟した筋原繊維5を含む小柱として知られている指状突起に配置されている。心臓の開発が進むにつれ、サブ心外膜領域中の心筋細胞は、心室壁を含むが、筋節および筋原アセンブリは小柱心筋5,6と比較して遅延され、コンパクトな心筋層を形成するために増殖する。
サルコメアと筋原線維アセンブリのモデルは単純であるが、三次元環境、血流、および他の心臓細胞との接触を欠く培養心筋7-10、上の免疫蛍光研究から主に来る生体内に存在するのです。マウス胚中心部に免疫蛍光を用いて、高分解能の構造研究は、技術的に困難であり、いくつかの研究では、マウス心臓の開発中に介在板とcostameresの出現を検討している。カテニンβ接着結合タンパク質は17.5 11日胚(E)で介在板に局在することが表示され、N-カドヘリンは、生後0日13対E18.5 12によって介在板を表してもよい線状構造に局在し、costameresがで検出されましたE18.5 14が、これらのタンパク質は、以前の発達時点で11-13を拡散し、より連続的な膜分布を表示する。
ここでは、intercalaの出現など、筋原線維と心筋細胞の開発の詳細な分析が可能に区分されたマウス胚の心、の免疫染色および蛍光顕微鏡検査のための簡単で再現性のある方法を説明テッドは早けれE12.5とE16.5で発生期のcostameresとしてディスク。このプロトコルは、筋節形成ならびに筋原線維および心筋細胞成熟に対する変異の効果を精査するために有用であり得る。
最適な組織固定技術と希釈は、経験的に各抗体について決定しなければならない。私たちの手では、スナップ凍結がs-αアクチニン、βカテニン、β1インテグリン、トロポミオシン、タリン(図示せず)とN-カドヘリンを含むいくつかの心筋細胞の抗原に対するPFA固定よりも優れている。対照的に、PFA固定焦点接着キナーゼに対して優れた結果をもたらす(図示せず)。 PFAによって形成されたタンパク質架橋はエピトープをマスクし、抗体結合を制限することができる。抗原回復は、このような場合に必要とされてもよく、抗原回復のための方法は、他の場所20に見出すことができる。 PFA濃度または固定の長さは、経験的に各抗体について、各発達段階で決定された最適な条件で、エピトープのマスキングを低減するために低減することができる。新規抗体または心臓変異を特徴付ける際に適切な陰性対照は、一次抗体対照と「一次抗体なし「共として免疫前血清を含む、使用されるべきであるntrol。ノックアウトマウスの使用が理想的な陰性対照であるが、初期の致死性は、ここで研究されている遺伝子産物の多くはそれらの使用を妨げる。
スライドの穏やかに揺らしがソリューションへのセクションの均一な露光を確保するために、インキュベーション中にあったように、完全に同じ免疫蛍光ブロッキング、抗体、および洗浄溶液で実験およびコントロールスライドを沈めるために十分なボリュームの使用が重要であった。このアプローチは、実験内のセクションとスライドの間に染色技術的変動性を最小限に抑える。コストは、抗体溶液の容量を制限する際に、組織切片を超えたソリューションの流れを制限し、長いインキュベーション中に加湿チャンバー内でスライドを保持するためのPapペンを使用する。マウスモノクローナル一次抗体 – と、したがって抗マウス二次抗体は、 – 使用され、内因性のマウス免疫グロブリンを覆うように第二のブロッキング工程は、非特異的バックグラウンドシグナルを減少させる(ステップ3.4)が必要となる。
適切な顕微鏡と画像処理技術は、生物学的に正確な情報21を得るために重要である。各色について – (16ビット画像65535レベル0)強度ヒストグラムは、各輝度レベルの画素の分布を示す。背景、明るさ、コントラスト、ヒストグラムのピークに隣接する強度表示範囲を設定することにより調整することができる。条件間の有効な比較を行うために、制御および実験条件の間に同じ設定を使用する必要があります。
このプロトコルは、ネイティブのマウス胎児の心臓に心筋細胞の成熟と発展を分析する信頼性の高い方法を提供する。心筋細胞特異的タンパク質の免疫蛍光は、しばしば、開発中に心筋細胞をマークするために使用されているが、いくつかの研究は、筋原線維構造と介在板とcostameres 12-14,22,23の出現の高分解能分析を可能にする技術を使用する。この技術は、 ます。vで使用することができ構造的異常のメカニズムを解明することができる心筋細胞の成熟の変化を同定する手段として、発育心臓欠陥を引き起こす突然変異の評価をIVO。
The authors have nothing to disclose.
The authors would like to thank Drs. Hilary Clay, Stephen Wilson, Anna Payne-Tobin, and James Smyth for helpful discussions. Microscopy was done at the Cardiovascular Research Institute Imaging Core at the University of California, San Francisco. This work was supported by NIH K08 HL105657 (LDW) and NIH HL65590 (SRC).
Name of Reagent/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
Cryomold, Disposable Base Mold, 7×7 mm | Richard-Allen Scientific | 58949 | This size not available from Fisher Scientific |
Cryomold, Disposable Base Mold, 15×15 mm | Fisher Scientific | 22-050-159 | Also available from Richard-Allen Scientific, catalog number 58950 |
Tissue-Tek Optimal Cutting Temperature (OCT) medium 4583 | VWR | 25608-930 | |
2-methyl butane | Sigma | M32631 | |
Paraformaldehyde | Fisher Scientific | T353-500 | Use fresh 4% solution in 1X PBS, pH 7.2-7.4. |
Sucrose | Sigma | S0389 | Use 15% and 30% solutions in 1X PBS. |
Disposable transfer pipette | Fisher Scientific | S30467-1 | |
Superfrost Plus slides | Fisher Scientific | 12-550-15 | "Plus" indicates positively-charged coating and is critical for maintaining tissue adherence to the slide. |
Acetone | Sigma | 179124 | |
Triton X-100 | Sigma | X100 | |
Western Blocking Agent | Roche | 11921673001 | Blocking buffer for immunofluorescence, when secondary antibodies are from different species. Dilute to 1X in PBS. |
Tween 20 | Sigma | P9416 | |
Donkey Anti-mouse IgG (H+L) monovalent Fab fragment | Jackson ImmunoResearch | 715-007-003 | Goat Anti-mouse IgG (H+L) also available. For blocking endogenous immunoglobulins. |
Anti-s-a-actinin antibody | Sigma | A7811 | Mouse monoclonal, clone EA53. Dilute 1:400 for snap-frozen/acetone-fixed sections, dilute 1:300 for PFA-fixed sections. Before incubation on mouse tissue, block endogenous mouse immunoglobulins with anti-mouse IgG (H+L) monovalent Fab fragment. |
Anti-bcatenin antibody | Cell Signaling | 9587s | Rabbit polyclonal. Requires snap-freezing/acetone fixation. Dilute 1:400. |
Anti-b1 integrin antibody | R&D | AF2405 | Goat polyclonal. Dilute 1:200. Snap-frozen/acetone-fixed tissue staining is superior to PFA-fixed tissue. |
Anti-tropomyosin antibody | Developmental Studies Hybridoma Bank, University of Iowa | CH1 | Mouse monoclonal. Requires snap-freezing/acetone fixation. Dilute 1:200. Before incubation on mouse tissue, block endogenous mouse immunoglobulins with anti-mouse IgG (H+L) monovalent Fab fragment. |
Anti-N-cadherin antibody | Santa Cruz | sc-7939 | Rabbit polyclonal. Dilute 1:200. Snap-frozen/acetone-fixed tissue staining is superior to PFA-fixed tissue. |
Anti-talin antibody | Sigma | T3287 | Mouse monoclonal, clone 8d4. Requires snap-freezing/acetone fixation. Dilute 1:200. Before incubation on mouse tissue, block endogenous mouse immunoglobulins with anti-mouse IgG (H+L) monovalent Fab fragment. |
Anti-phosphotyrosine 397 focal adhesion kinase antibody | Invitrogen | 700255 | Rabbit monoclonal antibody. Requires PFA fixation. Dilute 1:500. |
Alexa Fluor 488 Donkey Anti-Mouse IgG (H+L) Antibody | Life Technologies | A-21202 | |
Alexa Fluor 568 Donkey Anti-Rabbit IgG Antibody | Life Technologies | A10042 | |
Alexa Fluor 488 Goat Anti-Mouse IgG (H+L) Antibody | Life Technologies | A-11001 | |
Alexa Fluor 568 Goat Anti-Rabbit IgG (H+L)Antibody | Life Technologies | A-11011 | |
Hoechst 33342 dye | Life Technologies | H3570 | Nuclear stain |
Vectashield | Vector labs | H-1000 | |
Coverslips | Fisher Scientific | 12-548-5M | |
MLC 400B Monolithic Laser Combiner Laser box | Keysight (formerly Agilent) | ||
Clara Interline CCD camera | Andor | ||
Eclipse Ti inverted microscope | Nikon | ||
CSU-X1 Spinning disk confocal scanner unit | Yokogawa | ||
CFI Plan Apochromat 4X air objective | Nikon | Numerical aperture (NA) 0.2, Working distance (WD) 15.7 mm | |
CFI Plan Apochromat VC 60x oil immesion objective (MRD01602) | Nikon | NA 1.4, WD 0.13 mm | |
NIS Elements Imaging Software | Nikon | http://nikon.com/products/instruments/lineup/bioscience/img_soft/index.htm | |
Image analysis software | Fiji | http://fiji.sc/Fiji |