توضح هذه المقالة منهجية لإدارة فترات قصيرة من نقص الأكسجين المتقطع للما بعد الولادة يوم 08/01 الماوس أو الفئران الجراء. هذا النهج يثير بشكل فعال على مستوى الأنسجة قوي "فتيلة تأثير" على الخلايا الاصلية العصبية مثقف التي يتم حصادها خلال 30 دقيقة من التعرض نقص الأكسجين.
Extended culture of neural stem/progenitor cells facilitates in vitro analyses to understand their biology while enabling expansion of cell populations to adequate numbers prior to transplantation. Identifying approaches to refine this process, to augment the production of all CNS cell types (i.e., neurons), and to possibly contribute to therapeutic cell therapy protocols is a high research priority. This report describes an easily applied in vivo “pre-conditioning” stimulus which can be delivered to awake, non-anesthetized animals. Thus, it is a non-invasive and non-stressful procedure. Specifically described are the procedures for exposing mouse or rat pups (aged postnatal day 1-8) to a brief (40-80 min) period of intermittent hypoxia (AIH). The procedures included in this video protocol include calibration of the whole-body plethysmography chamber in which pups are placed during AIH and the technical details of AIH exposure. The efficacy of this approach to elicit tissue-level changes in the awake animal is demonstrated through the enhancement of subsequent in vitro expansion and neuronal differentiation in cells harvested from the subventricular zone (SVZ). These results support the notion that tissue level changes across multiple systems could be observed following AIH, and support the continued optimization and establishment of AIH as a priming or conditioning modality for therapeutic cell populations.
والهدف من هذه الطريقة هو تقديم بتكاثر وفعالية نوبات متقطعة من الأكسجين النظامية المحيطة خفضت إلى القوارض حديثي الولادة. الأساس المنطقي لاستخدام نقص الأكسجين المتقطع (IH) لمعالجة بيولوجيا الخلايا الجذعية تنبع من في المختبر تجارب زراعة الخلية التي يتم تبديل O 2 محتوى وسائط النمو. على وجه التحديد، بالمقارنة مع الظروف "القياسية" من 20٪ O 2، ثقافة ممتدة من الجذعية / السلف السكان الخلية الخلايا في 3٪ O 2 النتائج في زيادة انتشار، وانخفاض الخلايا وزيادة الخلايا العصبية 1،2 الغلة.
هذه المجموعة لديها خبرة كبيرة مع إدارة IH النظامية، وأجرت دراسات مستفيضة حول دور IH في اللدونة الجهاز التنفسي 3-7. هذا العمل، وهذا الاكتشاف الأخير الذي IH المزمن زيادة تكوين الخلايا العصبية في الجهاز العصبي المركزي القوارض 10/08، يشكل الأساس لاستكشاف الحادة في الجسم الحينقص الأكسجة كحافز شروط مسبقة (أي قبل الحصاد الأنسجة) على ثقافة اللاحقة من الخلايا الجذعية / السلف العصبية (الشخصيات) 11. بشكل ملحوظ، عندما تعرضت الجراء الماوس إلى وجيزة (<1 ساعة) فترة من نقص الأكسجين الحاد المتقطع (AIH)، والخلايا التي تم حصادها من منطقة subventricular (SVZ) قد ارتفع بدرجة كبيرة القدرة على التوسع كما neurospheres أو خلايا أحادي الطبقة ملتصقة. ارتبط بروتوكول AIH أيضا مع التعبير زيادة من "مصير الخلايا العصبية" عامل النسخ (Pax6).
وفقا لذلك، في الجسم الحي قد توفر بروتوكولات AIH وسيلة ل"رئيس الوزراء" الشخصيات قبل الثقافة. على سبيل المثال، يمكن لتطبيقات هذا النهج تشمل توسيع السكان الخلية قبل الزرع في النظام العصبي المركزي المصاب، أو مجرد زيادة تمايز الخلايا العصبية من الخلايا المستنبتة قبل التجارب في المختبر. وعلاوة على ذلك، لأن هذا هو تسليم النظامية، أيالجهاز، الأنسجة أو الخلايا مرشحة لدراسة مماثلة. ولذلك، فإن البروتوكول كما هو مكتوب ينطبق المحتمل لمجموعة واسعة من الدراسات حول التلاعب الأكسجين المتقطع في الثدييات الصغيرة.
هناك بعض المزايا لهذا النهج. في الأعمال المنشورة آخرين، تم علاج حديثي الولادة كما القمامة مع السد في غرف منخفض الضغط، والذي يسمح لجرعات المزمنة، وأقل معالجة قبل العلاج، وعلى اتصال الأمهات أثناء العلاج 9. النهج الحالي يتجاوز العلاجات المتكررة إلى الأنثى تربية، أو استخدام سد مختلفة لكل تجربة. هذا البروتوكول يسمح أيضا دراسة حديثي الولادة المطابقة القمامة والعمر المتطابقة دقيقة. وتظهر بيانات تمثيلية قوة رئيسية أخرى من هذا البروتوكول، وهي السرعة التي AIH، وتسليمها، ويتسبب استجابة بيولوجية قوية ومتناسقة في البيولوجيا العصبية للخلايا الجذعية. هذا يضع سابقة لهذا البروتوكول للحصول بيولوجيا نسيجيا وعلى المستوى الخلويتغييرات كال أن يغير بيولوجيا الخلية.
سيعرض هذا التقرير الإجراءات التفصيلية استخدامها لتعريض الجراء القوارض إلى AIH فضلا عن التحليل السكاني الخلايا SVZ كما نمت neurospheres.
This work reports the development of a protocol to expose neonatal rodents to AIH. The parameters described here effectively alter in situ neural stem cell biology, which is observable over several rounds of cell passage. Specifically, AIH increases the number of non-adherent neurospheres, the expansion of cells within each neurosphere (refected by sphere diameter), the expansion of adherent NPC populations, and the presence of neuroblasts in both non-adherent and adherent populations. It should be emph…
The authors have nothing to disclose.
The authors acknowledge funding sources responsible for this work: 5K12HD055929 (HHR), 5R01NS080180-02 (DDF).
Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
Mouse plethysmography chambers | Buxco | PLY4211 | |
Flow meter | Porter | F150 | |
Bias flow unit | AFPS | ||
Baseline Gas Mix | Airgas | AIZ300 | Compressed Air |
Hypoxic Gas Mix | Airgas | X03NI72C2000189 | 10% Oxygen, balance nitrogen |
Oxygen Meter | Teledyne | AX-300 |