We describe methods of manipulating Xenopus laevis immature oocytes, in vitro maturation of oocytes to eggs, and intracytoplasmic sperm injection. This protocol allows degradation of some maternal proteins and overexpression of genes of interest at fertilization, and hence is valuable to study roles of specific factors in early embryonic development.
Amphibian eggs have been widely used to study embryonic development. Early embryonic development is driven by maternally stored factors accumulated during oogenesis. In order to study roles of such maternal factors in early embryonic development, it is desirable to manipulate their functions from the very beginning of embryonic development. Conventional ways of gene interference are achieved by injection of antisense oligonucleotides (oligos) or mRNA into fertilized eggs, enabling under- or over-expression of specific proteins, respectively. However, these methods normally require more than several hours until protein expression is affected, and, hence, the interference of gene functions is not effective during early embryonic stages. Here, we introduce an experimental system in which expression levels of maternal proteins can be altered before fertilization. Xenopus laevis oocytes obtained from ovaries are defolliculated by incubating with enzymes. Antisense oligos or mRNAs are injected into defolliculated oocytes at the germinal vesicle (GV) stage. These oocytes are in vitro matured to eggs at the metaphase II (MII) stage, followed by intracytoplasmic sperm injection (ICSI). By this way, up to 10% of ICSI embryos can reach the swimming tadpole stage, thus allowing functional tests of specific gene knockdown or overexpression. This approach can be a useful way to study roles of maternally stored factors in early embryonic development.
Xenopus laevis geliştirme 1 incelemek için yaygın olarak kullanılan, güçlü bir model organizmadır. Xenopus yumurta ve bol (memeli meslektaşları karşılaştırma yaklaşık 0.1 mm olmak, yaklaşık 1.2-1.4 mm) alışılmadık büyük olmasıdır. Yumurta (4,000-8,000 hücreleri ile sahnede 8-8,5 meydana gelen, MBT) orta-blastula geçiş kadar embriyo gelişimini götürmek için yeterli olan anne sentezlenmiş ve depolanan bileşenler içerir. MBT sonra daha da geliştirilmesi doğrudan embriyonik gen ürünleri üreten zigotik genom aktivasyonu, eşlik ediyor.
Çeşitli çalışmalar gelişimi için önemli anne faktörlerini belirlemeyi amaçladık. Birçok çalışma, anne proteinlerin durum bozunma gastrula aşamasında 2-4 de gözlenebildiği döllenmiş embriyolar haline morfolino oligonükleotitler de dahil olmak üzere anti-his oligonükleotidler (oligos) enjeksiyonu dayanır. Alternatif olarak, mRNAlar döllenmiş em enjekte edilirbryos gen fonksiyonlarını rahatsız veya aşın proteinlerin kaderlerini izlemek için. Bununla birlikte, tek bir hücre aşamasında embriyoların içine enjeksiyon normal MBT önce çok erken evrelerinde maternal protein ifade seviyelerini etkilemez.
Heasman ve Wylie, bu sorunu aşmak için 5 konak aktarma yöntemi kurdu. Bunların bir yöntemde, el defolike oosit antisens oligoları ile enjekte edilir ve ana kadın 6 transfer edilir. Erken dönemde embriyo gelişimi olarak azaldı proteinlerin rolleri incelenmiş böylece proteinler Fertilizasyondan önce aşağı regüle edilir. 7 'da gözden geçirilen bu anne tüketme yöntemi olup, anne proteinlerin çeşitli benzersiz gelişim roller belirlenmesine yol açmıştır.
Döllenme önce mRNA anne tükenmesi ya da aşırı ifadesi manuel defolliculation ve ev sahibi transferi olmadan elde edildiği, bu raporda, biz ayrıntı bizim yeni geliştirilen yöntem, içinde8. Manuel defolliculation zaman ve konak transferi bir sürü genellikle böylece anne tükenme yöntemi sık kullanımı engelleyici, usta teknikleri ve hayvan cerrahisi için özel lisans ihtiyacı gerektirir. Defolliculation ve ev sahibi transferi sırasıyla, enzimatik defolliculation 9,10 ve intrasitoplazmik sperm enjeksiyonu (ICSI) 11-13 ile ikame edilir. Yumurta ICSI başlangıçta transgenik kurbağalar 12 üretmek için kullanıldı. Sperm ve embriyonik çekirdekleri ayrıca in vitro olgunlaşması amfibi oosit 11,14,15 nakledildi. Burada, biz in vitro olgunlaştı oosit sperm enjekte etmek bizim adım adım yöntemi göstermek antisens oligolar veya mRNA ile ön-enjekte.
Biz burada detay anne faktörleri tüketmek ya da döllenme öncesi dışsal faktörleri aşırı ifade için yeni bir yöntem. Bu sistem iki microinjections gerektirir, ancak bunun yerine ev sahibi transferi yöntemi 7,17 kullanılan kurbağa ameliyatı, atlar. Bu hayvan bakımı açısından kurbağa ameliyatı adımı kaldırmak için en uygunudur. Dahası, biz deneylerin başarısını etkileyen bir faktör biyolojik kurtulmak anlamına transfer deneyleri için ev sahibi kadın kurbağa kalitesi dikkate almak zorunda değilsiniz. Bu nedenle, bu sistemde PMSG-prime kurbağa elde edilen oosit kalitesi başarılı deneyler için anahtar önemli bir biyolojik faktördür. oosit kalitesi yumurtalık veya sonrasında defolliculation toplandıktan sonra yargılanabilir. Herhangi bir anormallik bu aşamada görülürse, yeni bir kurbağa başka yumurtalık toplamak için en uygunudur. Eğer oosit kalitesini kontrol edebilirsiniz başka nokta oosit olgunlaşması peşinde. Eğer progesteron az% 80E-tedavi oosit olgunlaşma belirtileri gösteriyor, daha fazla analiz için embriyo yeterli sayıda elde etmek mümkün olmayabilir. enzimatik defolliculation yerine kılavuzu defolliculation kullanımı da defolliculation için gerekli emek azaltmak için bu sistemi kullanan bir başka avantajdır. Ancak, manuel defolliculation enzimatik tedaviden daha iyi bir gelişme verebilir ki hala mümkün.
Şekil 3'te gösterildiği gibi, in vitro olarak yaklaşık% 10, yüzme larva dönemini ulaşabilir oosit olgunlaşması. Bu veriler, 8 ve yeni enjeksiyon deneyleri rapor da dahil olmak üzere 13 bağımsız deneyden toplanan. Sunucu aktarma yöntemi transfer oosit% 30-60 neurula aşamasına 17 ulaşabilirsiniz beri anlamlı veri elde etmek için her tedavi 75-150 oosit ihtiyacı var. Önerilen yöntem, normal bölünen embriyolar, yaklaşık% 40-60 ulaşabildiklerinden her bir deney grubu 200-300 oosit ile başlarkas tepki aşaması. Bu veriler her iki yöntem de makul bir gelişim hızı desteklediğini gösteriyor. Biz şimdiye kadar bu yaklaşım metamorfoz ile gelişimini destekler belirten, bu tekniği kullanarak kontrol mRNA enjekte ve kontrol antisens oligo-enjekte oosit 10 canlı kurbağa almış.
Bizim oosit manipülasyon-ICSI yöntemi yakında döllenmeden sonra, çok erken embriyonik gelişimi sırasında maternal faktörlerin rolünü test etmek için bir fırsat sağlar. Buna ek olarak, gübreleme öncesi kromatin değiştirici faktörlerin ekspresyonu mümkün gelişimi için gerekli olan anne kromatin durumlarını anlamak için gübreleme öncesi anne kromatin pişmanlık yapabilir. Bu strateji, aynı zamanda bu bile gübreleme önce ifade edilebilir beri Transkripsiyon aktivatörü gibi efektör nükleaz (TALEN) 18,19 ve CRISPR / CAS9 20,21 olarak mevcut gen düzenleme sistemleri ile de çalışabilir. Bu nedenle, yeni bir yaklaşım potenti vardırark gelecek bir çok uygulama için kullanılır.
The authors have nothing to disclose.
We are grateful to Gurdon laboratory members for useful discussion. K.M. is a Research Fellow at Wolfson College and is supported by the Herchel Smith Postdoctoral Fellowship and the Great Britain Sasakawa Foundation. Gurdon laboratory is supported by grants from the Wellcome Trust (RG69899) and MRC to J.B.G.
Name of Reagent/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
Pregnant Mare Serum Gonadotropin (PMSG) | MSD Animal Health | Vm 01708/4309 | PMSG-Intervet 5000iu powder and solvent for solution for injection |
Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate salt (MS222) | Sigma | A5040 | For anesthesia |
Liberase TM Research Grade | Roche | 05 401 127 001 | For oocyte defolliculation. Store at -20oC |
Drummond Nanoject | Drummond Scientific Company | 3-000-205/206 | For microinjection |
glass capillary | Alpha laboratories | 7” Drummond #3-000-203-G/XL | For microinjection |
Micropipette Puller | SUTTER Instrument | Model D-97 | For microinjection |
UltraPure Agarose | Invitrogen | 16500-500 | For invitro maturation and ICSI |
14 ml ultra-clear centrifuge tube | Beckman Coulter United Kingdom Ltd | 344060 | For sperm purification |
OptiPrep Density Gradient Medium (Iodixanol) | Sigma | D1556 | For sperm purification |
Digitonin | Sigma | D141 | Cell permeabilization reagent |
Shaker | Hybaid | HB-SHK-1 | For oocyte defolliculation. |
Dissecting microscope (Stereo zoom microscope) | ZEISS | Semi SV6 | For oocyte collection and microinjection |
50 μm pore filter | CellTrics | 04-0042-2317 | For sperm purification |
Ultracentrifuge | Beckman Coulter | Optima L-100XP | For sperm purification |
50 ml centrifuge tube | Cellstar Greiner Bio-One | 227261 or 210261 | Oocyte collection and defolliculation reaction |
15 ml centrifuge tube | FALCON | 352097 | For sperm purification |
90 mm Petri dish | Thermo Scientific | 101VR20/C | |
Easy-Grip Cell Culture Dish, 60×15 mm | FALCON | 353004 | |
Easy-Grip Cell Culture Dish, 35×15 mm | FALCON | 351008 |