Summary

Zebravis Keratocyte Explantaten naar Collective Cel Migratie en reepithelialization in Cutane Wound Healing Bestudeer

Published: February 25, 2015
doi:

Summary

Zebravis keratocyten migreren celvellen van explantaten en verschaffen een in vitro model voor de studie van de mechanismen van collectieve celmigratie in de context van epitheliale wondgenezing. Deze protocollen detail een effectieve manier om primaire explantkweken stellen voor gebruik in collectieve celmigratie assays.

Abstract

Vanwege hun unieke beweeglijke eigenschappen, vis keratocyten losgekoppeld van explantkweken zijn lang gebruikt om de mechanismen van cel migratie te bestuderen. Wanneer echter explantaten worden vastgesteld, deze cellen gezamenlijk bewegen ook behoud vele eigenschappen die afzonderlijke keratocyten een aantrekkelijke model migratie studeren: hoge snelheden van motiliteit uitgebreide actine-rijk lamellen met een loodrechte actine kabel, en betrekkelijk constante snelheid en trekrichting. In het begin van explantaten, de snelle onderlinge omzetting van cellen migreren individueel met die migreren collectief maakt de studie van de rol van cel-cel adhesie bij het bepalen van de wijze van migratie, en benadrukt de moleculaire banden tussen de twee modi van de migratie. Cellen in latere explantaten verliezen hun vermogen om snel en gezamenlijk migreren als epitheliale naar mesenchymale overgang plaatsvindt en genen geassocieerd met wondgenezing en ontsteking op differentiële expressie. Aldus kan keratocyte explantaten dienen als een in vitro model voor de reepithelialization die tijdens cutane wondgenezing en een uniek systeem om mechanismen van collectieve celmigratie te onderzoeken in het kader van een bepaald programma van genexpressie verandert vertegenwoordigen. Verschillende mutant en transgene zebravis lijnen beschikbaar, waardoor explantaten worden vastgesteld uit vis met verschillende genetische achtergronden. Hierdoor kan de rol van de verschillende eiwitten in deze processen uniek worden aangepakt. De hier beschreven protocollen beschrijven een eenvoudige en effectieve methode voor het vaststellen van deze explantkweken voor gebruik in verschillende assays inzake collectieve celmigratie.

Introduction

Studies van celmotiliteit traditioneel geconcentreerd op individuele migrerende cellen. Keratocyten gekweekte uit vis en amfibie explants hebben bewezen een krachtig model systeem om de mechanismen van celbeweeglijkheid bestuderen met behulp van zowel experimentele en wiskundige modellering benadert 1-6 zijn. Experimenten op individueel migrerende cellen wordt bevorderd door de snelle, glijden beweging van de cellen, terwijl een gelijkmatige vorm, snelheid en richting. In vivo cellen bewegen vaak samen met behoud van cel-cel contacten, vooral tijdens de embryogenese, wondheling en metastase. Zo collectieve cel migratie is een groeiende en steeds meer prominente gebied van onderzoek binnen het gebied van de cel migratie. De collectieve migratie van deze cellen is onlangs beschreven 7 en het heeft vele unieke eigenschappen die het een krachtig systeem van collectieve cel migratie te bestuderen in een wondgenezing model te maken.

ove_content "> Wanneer schalen worden geplukt van een verdoofde volwassen zebravissen, blijft wat epitheelweefsel op de onderkant van de schaal. Als kweekmedium wordt toegevoegd, deze epitheelcellen of keratocyten, migreren snel collectief eenheid van de schaal. De explantaatkweek kan worden gezien als een epitheliale wondgenezing model, waarin de cellen migreren van het explantaat zoals zij in de voorlopige matrix van een wondbed een intact epitheel herstellen. Recente gegevens suggereren dat deze ex vivo kweken bootst vele functies van in vivo wondgenezing in volwassen zebravissen. wondsluiting bekijken 8 vertalen naar een migratie snelheid vergelijkbaar met die waargenomen in de ex vivo systeem 7. Bovendien, in een in vivo model wondgenezing, behandeling met warfarine suggereert dat hemostase heeft geen effect op koers van genezing, terwijl behandeling met hydrocortison immuunrespons verminderen niet reepithelialization 8 vertragen </sup>. Zoals de zebravis bloedt niet wanneer de schaal wordt verwijderd uit het dier, hemostase is geen grote speler. Hoewel we immuuncellen gevonden in explantaten, hebben we de effecten zij zouden kunnen hebben op collectieve celmigratie niet onderzocht.

De hier gepresenteerde protocol beschrijft hoe zebravis keratocyte explantkweken dat consistentie en reproduceerbaarheid voor gebruik in vele biologische assays kan verzekeren. Deze explantkweken zijn bijzonder dwingend in vitro model voor collectieve celmigratie om verschillende redenen. Ten eerste, de zebravis keratocyten zijn primaire cellen die worden gebruikt binnen enkele uren na oprichting explantkweken. Daarom zijn deze cellen niet de morfologische en genexpressie veranderingen geassocieerd met een passage van primaire cellen 9-13 ondergaan. Ten tweede, dit systeem is een model voor de studie van reepithelialization reactie op verwonding 14 en het kader van de respons op verwonding, een epitheliale naar mesenchymale transition (EMT) wordt geïnitieerd zoals blijkt uit veranderingen in genexpressie en herschikkingen van het cytoskelet 14,15. Zo hebben de achtergrond veranderingen in genexpressie en motiliteit die voorkomen in onbehandelde cellen gekarakteriseerd en een context verandert met behandeling interpreteren. Bovendien, de vis keratocyte en de menselijke keratinocyt functioneel gelijkwaardig; zowel de primaire epitheelcellen van hun respectieve soorten en spelen een belangrijke rol in epitheliale wondgenezing. Ten derde, volwassen zebravissen winnen erkenning als modelsysteem voor diverse humane ziekten waaronder 16-18 melanoom en andere kankers 19-21, cutane wondgenezing 8,14 en weefselregeneratie 22-24.

Technische voordelen van dit model systeem zijn even overtuigend. Een groeiend aantal mutant en transgene lijnen zijn verkrijgbaar bij non-profit, gecentraliseerde faciliteiten. Met name de zebravis Mutation Project (ZMP) En het Wellcome Trust Sanger Institute beoogt een knockout allel in elk eiwit coderende gen in de zebravis genoom maken. Momenteel hebben zij gemuteerde 11.892 genen, ongeveer 45% van het genoom, met 24.088 allelen gekarakteriseerd. Daarnaast ZMP accepteert voorstellen en zal knock-outs kosteloos te genereren. Recente werkwijzen gen knockdown in larven en volwassen zebravissen 25-28 flexibiliteit bieden om de functie van ontwikkelings belangrijk genen waarvoor transgene benaderingen problematisch of onpraktisch bestuderen.

Vanwege hun extreem hoge snelheden van beweeglijkheid van ~ 145 um / uur kort na instelling van culturen 29 kunnen assays snel af (gewoonlijk 24 uur of minder). Zoals experimenten snel kan worden afgerond en culturen groeien goed bij RT, een aantal van de technische hindernissen in verband met zoogdiercellen migratie assays waarbij videomicroscopie worden vermeden. Bovendien, in de leeftijd van aanscherping onderzoeksbudgetten, zebrafachtig zijn gemakkelijk en goedkoop onderhouden.

De structuur en het gedrag van de explantatie is complex. Als de vis niet bloeden wanneer de schaal wordt verwijderd, is het onwaarschijnlijk dat meer dan de oppervlakkige epidermale lagen worden verwijderd met de schaal. Keratocyten lijken het overheersende celtype in het explantaat wanneer weegschaal eerst worden verwijderd uit de vis als de meeste cellen blijken vlek met een anti-E-cadherine antilichaam 14. Bovendien is er geen bewijs van fibroblasten in de initiële kweek zoals beoordeeld door de afwezigheid van vimentine kleuring met immunofluorescentie 14. Echter, met herhaalde schaal verwijderen, lijken er tal van neutrofielen in de explantatie (zie video 1). We hebben deze cellen zoals neutrofielen gebaseerd op morfologische waarnemingen van hun grootte, snel motiliteit en de migratie van de cellaag die bij blootstelling aan LPS (gegevens niet getoond). Bovendien, deze cellen vlek helder with een antilichaam tegen neutrofiel cytosol factor en met een verscheidenheid van secundaire IgG antilichamen, wat aangeeft dat zij over grote FcR op hun oppervlak (gegevens niet getoond). Meerdere cellagen aanwezig zijn binnen de explantatie. Confocale microscopie onthult de aanwezigheid van een enkele laag bij bovenrand meer dan twee lagen van keratocyten nabij de schaal neutrofielen zichtbaar boven, onder en tussen de cellen keratocyte vellen.

Op vroege tijdstippen cellen op de rand van de meerlaagse explantaat polariseren, initiëren collectieve migratie van keratocyten van het explantaat op beginsnelheden van ~ 145 um / uur. Het gebied dat door de explantatie snel toe, wat leidt tot cel verspreiden, spanning in het vel, en een verminderde snelheid van tevoren van de voorrand. Rapid interconversies tussen leider en volger cellen worden waargenomen op de voorste rand tijdens de vorming en de sluiting van spontaan gevormde gaten in de plaat 7. Aangezien deEMT proces gestart met de explantatie blijft, het vel fragmenten en de keratocyten verliezen hun gespecialiseerde, snelle beweeglijkheid. Genexpressie en morfologische veranderingen overeenstemming met EMT, wondgenezing en ontstekingsreacties optreden binnen 7 dagen kweken met explantaten wordt nog gedurende ongeveer 10 dagen 14 beschouwd.

Protocol

Dit protocol voldoet aan de AVMA Dierenwelzijn Principes voor de verzorging en het gebruik van proefdieren en is goedgekeurd door de Institutional Animal Care en gebruik Comite (IACUC) in het Midwesten University goedgekeurd. 1. Voorbereiding van de anesthesie, apparatuur, & Media Dechloreren ongeveer 1,5 liter leidingwater met behulp van een commercieel dechlorinating middel (verkrijgbaar bij dierenwinkels) of door te laten water staan ​​voor 24 uur. Verkrijgen drie 1 L b…

Representative Results

Zoals geïllustreerd in figuur 1, kunnen vellen keratocyten opgemerkt migreren uit onder de omvang binnen uren van vaststelling van explantaatkweek. Af en toe kan een individueel migreren keratocyte die weg heeft gebroken van het collectief migreren plaat in acht worden genomen. Bovendien, als het explantaat werd vastgesteld uit een vis die eerder geplukt, zijn er overvloedige neutrofielen migreren door het vel. Bij periodes langer cultuur, de keratocyte vel fragmenten als cellen ondergaan EMT 14.<…

Discussion

De meest kritische stap voor het succes van keratocyte explantaatkweek is waardoor de schaal te houden aan de kweekschaal gedurende ongeveer 2-3 min vóór toevoeging van het kweekmedium. Ongeveer 75% van de schalen zal zich houden en te groeien vellen (het aantal vastgesteld voor elk experiment culturen zullen moeten worden aangepast). Keratocyte vellen geen deel om elke schaal verwijderd uit de vis en in cultuur om verschillende redenen. Eerst DAPI kleuring van explantaten blijkt dat sommige schalen weinig gehechte ce…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door fondsen van het Midwesten University College of Health Sciences Research Faciliteren Grant toegekend aan EEH en Midwesten Universiteit Bureau voor Onderzoek en gesponsorde programma's Intramurale Grant toegekend aan KJL.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
35 mm Glass Bottom Culture Dishes (Poly-D Lysine Coated)  MatTek P35GC-1.5-14-C 1.5 mm  thickness is best for coverslip removal.  14 mm diameter provides more culture area.  
Swiss Jewelers Style Forceps, Integra, Miltex 17-303 VWR 21909-460 We find that narrow, fine forceps work the best for scale removal.  

References

  1. Burton, K., Park, J. H., Taylor, D. L. Keratocytes generate traction forces in two phases. Molecular Biology of the Cell. 10, 3745-3769 (1999).
  2. Keren, K., et al. Mechanism of shape determination in motile cells. Nature. 453, 475-480 (2008).
  3. Lacayo, C. I., et al. Emergence of large-scale cell morphology and movement from local actin filament growth dynamics. PLOS Biology. 5, 233 (2007).
  4. Lee, J., Ishihara, A., Theriot, J. A., Jacobson, K. Principles of locomotion for simple-shaped cells. Nature. 362, 167-171 (1993).
  5. Kolega, J. The Movement of Cell Clusters. J. Cell Sci. 49, 15-32 (1981).
  6. Kolega, J. Effects of mechanical tension on protrusive activity and microfilament and intermediate filament organization in an epidermal epithelium moving in culture. The Journal of Cell Biology. 102, 1400-1411 (1986).
  7. Rapanan, J. L., Cooper, K. E., Leyva, K. J., Hull, E. E. Collective cell migration of primary zebrafish keratocytes. Experimental Cell Research. 326, 155-165 (2014).
  8. Richardson, R., et al. Adult Zebrafish as a Model System for Cutaneous Wound-Healing Research. Journal of Investigative Dermatology. 133, 1655-1665 (2013).
  9. Cheon, H., et al. Increased expression of pro-inflammatory cytokines and metalloproteinase-1 by TGF-b1 in synovial fibroblasts from rheumatoid arthritis and normal individuals. Clinica., & Experimental Immunology. 127, 547-552 (2002).
  10. Sandeman, S. R., Faragher, R. G. A., Allen, M. C. A., Liu, C., Lloyd, A. W. Does MMP-2 expression and secretion change with increasing serial passage of keratocytes in culture. Mechanisms of Ageing and Development. 122, 157-167 (2001).
  11. Schnaper, H. W., et al. Increased expression of extracellular matrix proteins and decreased expression of matrix proteases after serial passage of glomerular mesangial cells. Journal of Cell Science. 109, 2521-2528 (1996).
  12. Tondreau, T., et al. In vitro study of matrix metalloproteinase/tissue inhibitor of metalloproteinase production by mesenchymal stromal cells in response to inflammatory cytokines: the role of their migration in injured tissues. Cytotherapy. 11, 559-569 (2009).
  13. Zimmermann, T., et al. Isolation and characterization of rheumatoid arthritis synovial fibroblasts from primary culture – primary culture cells markedly differ from fourth-passage cells. Arthritis Research. 3, 72-76 (2001).
  14. McDonald, T. M., et al. Zebrafish keratocyte explant cultures as a wound healing model system: differential gene expressio., & morphological changes support epithelial–mesenchymal transition. Experimental Cell Research. 319, 1815-1827 (2013).
  15. Tan, B., Pascual, A., de Beus, A., Cooper, K., Hull, E. TGFb (transforming growth factor b) and keratocyte motility in 24-hour zebrafish explant cultures. Cell Biology International. 35, 1131-1139 (2011).
  16. Barut, B. A., Zon, L. I. Realizing the potential of zebrafish as a model for human disease. Physiological Genomics. 2, 49-51 (2000).
  17. Lieschke, G. J., Currie, P. D. Animal models of human disease: zebrafish swim into view. Nature Reviews Genetics. 8, 353-367 (2007).
  18. Santoriello, C., Zon, L. I. Hooked! Modeling human disease in zebrafish. The Journal of Clinical Investigation. 122, 2337-2343 (2012).
  19. Etchin, J., Kanki, J. P., Look, A. T., Westerfield, M., Detric, H. W., Zon, L. I. . Methods in Cell Biology. 105, 309-337 (2011).
  20. Li, P., White, R. M., Zon, L. I., Westerfield, M., White, H. W., Zon, L. I. . Methods in Cell Biology. 105, 403-417 (2011).
  21. Yen, J., et al. The genetic heterogeneity and mutational burden of engineered melanomas in zebrafish models. Genome Biology. 14, R113 (2013).
  22. Bouzaffour, M., Dufourcq, P., Lecaudey, V., Haas, P., Vriz, S. Fgf and Sdf-1 Pathways Interact during Zebrafish Fin Regeneration. PLoS One. 4, e5824 (2009).
  23. Dufourcq, P., Vriz, S. The chemokine SDF-1 regulates blastema formation during zebrafish fin regeneration. Development Genes and Evolution. 216, 635-639 (2006).
  24. Lee, Y., Grill, S., Sanchez, A., Murphy-Ryan, M., Poss, K. D. Fgf signaling instructs position-dependent growth rate during zebrafish fin regeneration. Development. 132, 5173-5183 (2005).
  25. Hyde, D. R., Godwin, A. R., Thummel, R. In vivo Electroporation of Morpholinos into the Regenerating Adult Zebrafish Tail Fin. Journal of Visualized Experiments. 61, e3632 (2012).
  26. Kizil, C., Iltzsche, A., Kaslin, J., Brand, M. Micromanipulation of Gene Expression in the Adult Zebrafish Brain Using Cerebroventricular Microinjection of Morpholino Oligonucleotides. Journal of Visualized Experiments. 75, e50415 (2013).
  27. Konantz, J., Antos, C. L. Reverse Genetic Morpholino Approach Using Cardiac Ventricular Injection to Transfect Multiple Difficult-to-target Tissues in the Zebrafish Larva. Journal of Visualized Experiments. 88, e51595 (2014).
  28. Rambabu, K. M., Rao, S. H., Rao, N. M. Efficient expression of transgenes in adult zebrafish by electroporation. BMC Biotechnology. 5, 29 (2005).
  29. Rapanan, J. L., Cooper, K. E., Leyva, K. J., Hull, E. E. During collective migration, leader keratocytes generate tension in sheet and may become follower or individually migrating cells. Experimental Cell Research. In press, (2014).
  30. Safferling, K., et al. Wound healing revised: A novel reepithelialization mechanism revealed by in vitro and in silico models). The Journal of Cell Biology. 203, 691-709 (2013).
  31. McDonald, T. M., et al. Matrix metalloproteinases and collective cell migration in 24 primary zebrafish explant cultures: MMP13 plays an inhibitory role and MMP14 may respond to stretch during reepithelialisation. Cell Biology International Reports. 20, 24-36 (2013).
  32. Haage, A., Nam, D. H., Ge, X., Schneider, I. C. Matrix metalloproteinase-14 is a mechanically regulated activator of secreted MMPs and invasion. Biochemical and Biophysical Research Communications. , (2014).
  33. Sire, J. -. Y., Girondot, M., Babiar, O. Marking zebrafish, Danio rerio (cyprinidae), using scale regeneration. The Journal of Experimental Zoology. 286, 297-304 (2000).
  34. Xu, Z., et al. Teleost skin, an ancient mucosal surface that elicits gut-like immune responses. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110, 13097-13102 (2013).
  35. Keren, K., Yam, P. T., Kinkhabwala, A., Mogilner, A., Theriot, J. A. Intracellular fluid flow in rapidly moving cells. Nature Cell Biology. 11, 1219-1224 (2009).
  36. Bereiter-Hahn, J., Strohmeier, R., Kunzenbacher, I., Beck, K., Voth, M. Locomotion of Xenopus epidermis cells in primary culture. Journal of Cell Science. 52, 289-311 (1981).
  37. Nishikawa, A., Shimizu-Nishikawa, K., Miller, L. Isolation, characterization, and in vitro culture of larval and adult epidermal cells of the frog Xenopus laevis. In Vitro Cellula., & Developmental Biology. 26, 1128-1134 (1990).
  38. Schober, M., et al. Focal adhesion kinase modulates tension signaling to control actin and focal adhesion dynamics. The Journal of Cell Biology. 176, 667-680 (2007).

Play Video

Cite This Article
Rapanan, J. L., Pascual, A. S., Uppalapati, C. K., Cooper, K. E., Leyva, K. J., Hull, E. E. Zebrafish Keratocyte Explants to Study Collective Cell Migration and Reepithelialization in Cutaneous Wound Healing. J. Vis. Exp. (96), e52489, doi:10.3791/52489 (2015).

View Video