עבודה עם וירוסי אבולה זיהומיות מוגבלת לרמת בטיחות הביולוגית 4 מעבדות. שכפול ושעתוק וירוס-מוסמך כמו חלקיקים המכיל minigenome Tetracistronic (trVLPs) מייצג מערכת דוגמנות מחזור חיים המאפשרת לנו לבנות מודל בבטחה מחזורי זיהומיות מרובים תחת רמת בטיחות ביולוגית 2 תנאים, להסתמך באופן בלעדי על רכיבי נגיף האבולה.
וירוסי אבולה לגרום חום המורגי חמור בבני אדם ופרימטים שאינם בני אדם, עם הרוג שיעורי מקרה גבוהים ככל 90%. אין חיסונים שאושרו או טיפולים ספציפיים למחלה הנגרמת על ידי הווירוסים האלה, ולעבוד עם וירוסי אבולה זיהומיות מוגבלת לרמת בטיחות הביולוגית 4 מעבדות, המגבילים את המחקר בוירוסים אלה באופן משמעותי. מערכות מחזור חיים של דוגמנות מודל מחזור החיים של הנגיף ברמת בטיחות ביולוגית 2 תנאים; עם זאת, עד לאחרונה מערכות כאלה היו מוגבלים לשני היבטים פרטניים של מחזור החיים של הנגיף, או מחזור זיהומיות יחיד. minigenomes Tetracistronic, אשר מורכב של אזורי וירוס האבולה ללא קידוד, גן כתב, ושלושה גני וירוס האבולה מעורבים בהמורפוגנזה, ניצנים, וכניסה (VP40, GP 1,2, וVP24), ניתן להשתמש בם כדי לייצר שכפול ושעתוק חלקיקי -competent כמו וירוס (trVLPs) המכילים minigenomes אלה. trVLPs אלה ברציפות יכולה להדביק תאים המבטאים את אבולהחלבוני נגיף אחראים לשכפול הגנום ושעתוק, ומאפשר לנו מודל בבטחה מחזורי זיהומיות מרובים תחת רמת בטיחות ביולוגית 2 תנאים. חשוב לציין, המרכיבים הנגיפיים של זה מערכות נגזרים אך ורק מוירוס האבולה, ולא מוירוסים אחרים (כמו, למשל, במקרה של מערכות באמצעות וירוסי Pseudotyped), וVP40, GP 1,2 וVP24 אינם ביטוי יתר במערכת זו , מה שהופך אותו אידיאלי ללימוד המורפוגנזה, ניצנים וכניסה, אם כי בהיבטים אחרים של מחזור החיים של הנגיף כגון שכפול הגנום ושעתוק יכולים גם להיות מודל עם מערכת זו. לכן, assay trVLP tetracistronic מייצג את מערכת המודלים מחזור חיים המקיפה ביותר זמינה עבור וירוסי אבולה, ויש לו פוטנציאל עצום לשימוש בחקירת הביולוגיה של וירוסי אבולה בעתיד. כאן, אנו מספקים מידע מפורט על השימוש במערכת זו, כמו גם על תוצאות צפויות.
וירוסי האבולה הם הסוכן סיבתי של קדחת מדממת חמורה בבני אדם ופרימטים שאינם בני אדם עם שיעורי תמותה של עד 90% בהתפרצויות אנושיות 1. אמנם יש כבר התקדמות משמעותית בשנים האחרונות בפיתוח חיסונים, כמו גם טיפולים ספציפיים (בדיקה ב 2,3), אלה אינם מאושרים לשימוש בבני אדם. יש לי חלקיקי נגיף האבולה מראה אופייני דמוי חוט באורך של כ 1 מיקרומטר וקוטר של 96 עד 98 4 ננומטר. צורות nucleocapsid הליבה של החלקיקים הנגיפיים והוא מורכבת מ1) הגנום שאינו מפולח חד גדילים שלילי תחושת RNA, המקודד את הגנים 7 ebolavirus (, 2) nucleoprotein NP, שencapsidates הגנום איור 1), 3 ) המורכב הנגיפי פולימראז בהיקף של L פולימראז וVP35 cofactor, ו4) VP30 activator תעתיק. בנוסף, זה לאחרונה הראה כי VP24 החלבון קשור גם nucleocapsidשל 4. Nucleocapsid מוקף בחלל המטריצה שבה חלבון מטריקס VP40, האחראית על המורפוגנזה וניצנים של virions, ממוקם. חלקיקי נגיף עטופים נוספים, ומשובץ במעטפה שהוא החלבון היחיד משטח GP 1,2, האחראית על קובץ מצורף virion וכניסה.
עבודה עם וירוסי אבולה זיהומיות חייבת להתבצע במעבדה בלימה מקסימלי ברמת בטיחות ביולוגית (מנהלת הליגה) 4 תנאים, המגבילה את העבודה הזאת לכמה מתקנים ברחבי העולם. על מנת ללמוד את הביולוגיה של וירוסים אלה או לפתח תרופות חדשניות בתנאי BSL2, חוקרים מסתמכים גם על ביטוי יתר של חלבוני רקומביננטי וירוס האבולה, או במערכות דוגמנות מחזור חיים, אשר שניהם יכולים להיות עבדו עם בהעדר וירוס האבולה זיהומיות. ביטוי רקומביננטי של חלבוני נגיף האבולה מושגת גם מפלסמידים ביטוי או וקטורים ויראליים. מקרה מיוחד של אסטרטגיה זו הואדור של virions או חלקיקים כמו וירוס המבוסס על וירוסים אחרים מאשר וירוסי אבולה (הנפוץ ביותר רטרווירוסים או stomatitis לפוחי וירוס) בנוכחות recombinantly הביע GP 1,2, שהוביל לדור של חלקיקי Pseudotyped, אשר יכול לשמש כדי לחקור תהליך כניסה של filoviruses ומסך למעכבי כניסה 5. לחלופין, וירוסי רקומביננטי (למשל, וירוס stomatitis שלפוחי) המקודדים את נגיף האבולה GP 1,2 במקום גליקופרוטאין שלהם יכולים להיות שנוצרו ומשמשים ללמוד כניסת וירוסים תחת רמת בטיחות ביולוגית 2 תנאים 6.
מערכות דוגמנות מחזור החיים הן צורות של מערכות גנטיקה הפוכה המציגות את השימוש באנלוגים יקוצצו הגנום נגיף האבולה (minigenomes), אשר בתחילה מיוצרים מcDNA ולאחר מכן משוכפלת ומשועתקת על ידי חלבוני נגיף האבולה סיפקו בטראנס. מערכת minigenome הראשונה לוירוס האבולה פותחה לפני יותר מ -15 שנים 7, ומאז נעשה שימוש כדי ללמוד שכפול הגנום נגיף האבולה ושעתוק (הנסקרת ב 8,9). במערכת זו minigenome monocistronic בהיקף של גן כתב אחד מוקף אזורי קידוד שאינו המסוף של גנום נגיף האבולה (שנקרא מנהיג וקרוון) (איור 1) בא לידי ביטוי בתאי יונקים (בדרך כלל על ידי שעתוק באמצעות RNA פולימראז T7) יחד עם החלבונים הנגיפיים L, VP35, VP30 וNP. Minigenome הוא encapsidated ידי NP, ולאחר מכן משוכפל ומשועתק על ידי חלבוני nucleocapsid האחרים באמצעות אותות cis-משחק מקומי במנהיג והקרוון, שמוביל לפעילות כתב שמשקף שני היבטים של מחזור החיים של הנגיף (איור 2) אלה.
על מנת לבנות מודל צעדים נוספים של מחזור החיים, השעתוק הנגיפי ושכפול-מוסמך חלקיק כמו וירוס-מערכות (trVLP) פותחו, המבוססים על מערכות minigenome קלאסיות, אבל כולליםביטוי dditional של החלבונים הנגיפיים האחרים VP24, VP40 וGP 1,2 מפלסמידים ביטוי 10,11. הנוכחות של VP40 מובילה להיווצרות של trVLPs, אשר נושאת GP 1,2 על פני השטח שלהם, ולבצע nucleocapsid המכיל minigenome בחלק הפנימי. trVLPs אלה יכולים לשמש כדי להדביק תאי מטרה, שגם היה pretransfected עם פלסמידים ביטוי לL, VP35, VP30 וNP, כדי להקל על שכפול ושעתוק של minigenomes הביא לתאי היעד בתוך 11 trVLPs, או שהם תאי מטרה נאיביים (כלומר ללא הבעה מונע פלסמיד של חלבוני נגיף האבולה) 10. כתוצאה מכך פעילות כתב בתאי מטרה, המשקפת את השכפול של minigenomes בתאי מפיק, המורפוגנזה והניצנים של trVLPs, כניסתם לתאי מטרה, ו1) במקרה של תאי מטרת pretransfected גם הגנום שכפול ושעתוק המשני ( כלומר שעתוק על ידי לדרבן חלבונים נגיפייםuced בתאי מטרה) בתאי מטרה, או 2) במקרה של תאי יעד נאיביים גם שעתוק ראשוני (כלומר שעתוק על ידי חלבונים נגיפיים הביאו לתאי יעד בתוך trVLPs) (איור 3). חשוב לציין, מערכות אלה היו בשימוש רק למודל מחזור זיהומיות יחיד, ומסתמך על ביטוי יתר של כל חלבונים הנגיפיים, אשר במקרה של VP24 וVP40 הוא בעייתי במיוחד, שכן חלבונים אלה הוכחו להיות רגולטורים שליליים חזקים של שכפול הגנום ושעתוק כאשר ביטוי יתר מפלסמידים 12,13. יתר על כן, הכנות trVLP מיוצרות במערכות אלה מכילים אחוז גבוה של חלקיקים שאינם מדבקים, שהתחזו אתגרים לאנליזה ביוכימית של trVLPs זיהומיות 14.
כדי להתגבר על בעיות אלה, יש לנו לאחרונה פיתחו מערכת minigenome tetracistronic ש, בנוסף לגן כתב, מכילה גם את הגנים מקודדים לVP40, GP 1,2 וVP24 (איור 1). בדומה למערכת minigenome monocistronic הקלסית, מערכת זו מובילה לייצור של trVLPs שיכול להדביק תאי מטרה (איור 4) 15. עם זאת, בניגוד למערכת minigenome הקלסית, VP40, GP 1,2, וVP24 מיוצרים לאחר שעתוק הגנום הויראלי במקום להיות ביטוי יתר מפלסמידים. כתוצאה מכך, קינטיקה ורמות הביטוי של חלבונים אלה לחקות הרבה יותר הדוקים אלה שנמצאו במהלך מחזור החיים הנגיפיים, וכתוצאה מכך היחס של זיהומיות לtrVLPs שאינו מדבק הוא גדל על 500 פי במערכת זו 15. יתר על כן, באמצעות מערכת זו ניתן הייתה ברציפות מעבר trVLPs המכיל minigenome tetracistronic, דוגמנות מחזורי זיהומיות מרובות. ככזה, trVLPs tetracistronic כרגע מערכת דוגמנות מחזור החיים המקיפה ביותר זמינה ללמוד ביולוגיה נגיף האבולה בתנאי BSL2. כאן, אנו מספקים מידע מפורט על o השימושf מערכת זו, כמו גם על תוצאות צפויות.
Assay trVLP tetracistronic המתואר בכתב היד הזה מאפשר מידול של מחזור החיים של נגיף האבולה על פני מספר מחזורי זיהומיות. חשוב לציין, trVLPs הופק במערכת זו אינה מכיל מידע הגנטי לחלבונים nucleocapsid NP, VP35, VP30, וL, שיחד מרכיבים כמעט 60% מהגנום נגיף האבולה וחיוניים לשכפול נגיף. במקום זאת, חלבונים אלה צריכים להיות מסופקים בתאי המטרה בטראנס מפלסמידים ביטוי, וכל זיהום של תאים לא מבטאים את כל 4 של חלבונים אלה הוא כושל. חשוב לציין, שאין כל ראיות של רקומבינציה הגנטית לfiloviruses, ואין אזורים הומולוגיים המשותפים בין minigenome tetracistronic ופלסמידים הביטוי לחלבוני nucleocapsid. לכן, אין לא שום ראיות מעשיות ולא כל בסיס תיאורטי שיכול לספק לאפשרות של הגנום נגיף האבולה באורך מלא שהניבו שלאחר מכן עלול לגרוםהייצור של נגיפי אבולה זיהומיות, מה שהופך את מערכת זו בטוחה לשימוש בתנאי BSL2.
ישנם שני שלבים קריטיים בassay trVLP tetracistronic שמושפעים מהתנאים ניסוי, כלומר הייצור של trVLPs, והזיהום של תאי יעד עם trVLPs אלה. ייצור של trVLPs תלוי ברמות גבוהות של שכפול minigenome ושעתוק, אשר בתורו תלוי ביעילות transfection גבוהה. יעילות transfection ניתן להעריך בקלות על ידי הכללת שליטת ס, שבו פלסמיד ביטוי לL מוחלף פלסמיד ביטוי קידוד eGFP. שיעורי transfection בתנאים אלה יעלה 50% על ידי בדיקה עם ההודעה transfection 24 שעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי. יתר על כן, תאים צריכים להיות חופשי של mycoplasma, שכן בזיהום mycoplasma הניסיון שלנו באופן דרמטי פוגע שכפול ושעתוק (נתונים שלא פורסמו) minigenome. בשל ce הגבוה transfectability 293LLS הוא הקו הסלולרי של בחירה עבור מבחני trVLP; עם זאת, תאים אלה הם יחסית גרועים רגישים (אם כי לא שבירה לחלוטין) לזיהום בנגיף האבולה 16. ביטוי של גורם מצורף כגון טים-1 משפר את הזיהום של 293 תאים עם trVLPs על פי 100, והוא חיוני להצלחתה של מערכת זו על פני מספר קטעים.
בעוד trVLPs tetracistronic אינו משכפל את עצמו בכוחות עצמם, הם משכפלים את עוצמה בתאים המבטאים את חלבוני nucleocapsid. ככזה, אמצעי זהירות צריכה להיעשות כדי להימנע מצלב זיהומים בין בארות המכילות trVLPs שונה (לדוגמא, עם מוטציות שונות בminigenome). מבחינה טכנית יותר, בשל ההבדל הגדול בין אותות חיוביים ושליליים בassay זה (כ 4 יומנים), הצטלבות בין דגימות בעת מדידת פעילות לוציפראז יכול להיות בעיה; עם זאת, ניתן להימנע מזה בקלות על ידי השארה גם אחד ריק בין כל דגימה בצלחת 96 היטב המשמשת למדידת פעילות לוציפראז.
יש שפע של יישומים אפשריים לtrVLPs tetracistronic. ברור, הם גם מתאימים ללימוד הכניסה של חלקיקי filovirus, שכן יש לי trVLPs זיהומיות המבנה דמוי חוט האופייני filoviruses זיהומיות 14, ומכיל את אותם רכיבים נגיפיים כמו חלקיקי filovirus. חשוב לציין, שהם לא מכילים רכיבים של וירוסים אחרים, כמו במקרה בעת שימוש virions Pseudotyped או חלקיקים כמו וירוס, כמו חלקיקי רטרווירוס נושא GP 1,2, או וירוסי רקומביננטי, כגון וירוס stomatitis שלפוחי רקומביננטי להביע GP 1,2 . הדרישה לגורמי קובץ מצורף בעת שימוש 293 תאים כמו תאי יעד במערכת זו ניתן לנצל כדי מסך וללחקור את תפקידם של גורמי עיקול, ואילו התפקידים של גורמים סלולריים אחרים, כגון אלה העוסקים בשכפול הגנום ושעתוק, כמו גם המורפוגנזה וניצןדינג, ניתן לחקור באמצעות טכנולוגיית RNAi. ההשפעה של מוטציות בחלבונים נגיפיים על מחזור החיים של הנגיף גם ניתן ללמוד, אם כי אחד יש לזכור כי בעוד VP40, GP 1,2, וVP24 באים לידי ביטוי לאחר שעתוק נגיפי, ביטוי של החלבונים הנגיפיים האחרים מושגת מביטוי פלסמידים, כך שהשפעות עקב ביטוי היתר של חלבונים אלה צריכים להילקח בחשבון. כמו כן, יש להקפיד כי מוטציות בminigenome אינן משנות באופן משמעותי את אורכו של minigenome, מאז פעילות כתב מושפעת ישירות minigenome אורך 15. לבסוף, מאז minigenomes tetracistronic הם אנלוגים הגנום הויראלי שנושאים גנים נגיפיים, ומשוכפלים על ידי מורכב פולימראז הנגיפי, זה צריך להיות אפשרי גם בחקר האבולוציה של גנים אלה בתגובה למוטציות בתנאי BSL2. וכך, בעוד מחקרים נוספים עדיין נדרשים בכיוון זה, זה צריך להיות אפשרי, למשל, להציג את הכי מוצלחמוטציות בגנים בתוך trVLPs מעבר minigenome ומאז ועד מוטציות חינם לצוץ.
מגבלה אחת של assay trVLP tetracistronic שיש לזכור היא העובדה כי בזמן שהוא המודלים ביותר במחזור החיים של הנגיף, שעתוק עיקרי בתאי מטרה הוא לא דגם ידי מערכת זו, שכן תאי יעד צריכים לבטא חלבוני nucleocapsid בטראנס על מנת שtrVLPs לשכפל. אם תעתיק ראשוני יש להעריך, ניתן להשתמש בתאי יעד נאיביים 10; עם זאת, במקרה זה אין שכפול הגנום מתרחש בתאי מטרה, ולא trVLPs זיהומיות נוספת מיוצר, להפיל את הזיהום. זו בעיה העיקרית שלא ניתן להתגבר עליהן בלי טיוח trVLPs לחלוטין משכפל את עצמו, על ידי הכללת גנים לחלבוני nucleocapsid לminigenome, אשר יהפוך אותם דה פקטו לוירוסי אבולה רקומביננטי זיהומיות. למעשה, Ebolוירוסים להביע לוציפראז או כתבים אחרים שנוצרו ויכול להיות מנוצל כדי להעריך וללמוד שכפול הגנום ושעתוק 17,18; עם זאת, השימוש בם מוגבל למעבדות BSL4. כמו כן, יש בו כדי לזכור כי בעוד VP40, GP 1,2, וVP24 באים לידי ביטוי מאנלוגי הגנום נגיפי, עמדתם בminigenome (2 nd, 3 rd, ו4 th יחידת תעתיק) אינו זהה ל את עמדתם בגנום הנגיפי (3 rd, 4 th, ויחידת תעתיק 6 th), אשר יכול להשפיע על רמותיהם מוחלטות הביטוי, כמו גם רמות הביטוי היחסית שלהם עם כבוד אחד לשני.
בסך הכל, assay trVLP tetracistronic מייצג את מערכת המודלים מחזור חיים המקיפה ביותר לאיתור וירוסי אבולה זמין עד כה, ומאפשר מודלים של שכפול הגנום ושעתוק, המורפוגנזה חלקיקים וניצנים, וכן התקשרות וenלנסות לתאי מטרה על מחזורי זיהומיות מרובים. ככזה, יש לו פוטנציאל עצום לשימוש בחקירת הביולוגיה של וירוסי אבולה בתנאי BSL2.
The authors have nothing to disclose.
המחברים מודים מאוד לבוב פישר (LV, DIR, NIAID, NIH), שפעל כקריין, כמו גם אוסטין Athman (RTB, DIR, NIAID, NIH) ומייגן מורגן (DOHS, ORS, OD, NIH) ל העזרה שלהם עם מה שהופך את הסרט מלווה את כתב היד הזה. יתר על כן, ברצוננו להודות לאליסון Groseth (LV, DIR, NIAID, NIH) לקריאה ביקורתית של כתב היד. מחקר זה נתמך על ידי תכנית מחקר ביצוע עצמי של NIH, NIAID.
75cm2 cell culture flask | Corning | 430641 | |
DMEM | Sigma | D6546 | preheat to 37°C prior to use |
FBS | Life Technologies | 26140-079 | heat inactivate 30 min @ 56°C |
L-Glutamine | Life Technologies | 25030-081 | 100X |
Pen Strep | Life Technologies | 15070-063 | 100X |
0.25% Trypsin-EDTA | Life Technologies | 25200-056 | |
PBS | 8 g NaCl, 0.2g KCl, 1.44g Na2HPO4, 0.24 g KH2PO4, H2O ad 1 liter; autoclave and store at room temperature | ||
6-well plates | Costar | 3516 | |
Opti-MEM I | Life Technologies | 31985-070 | |
Transit LT1 | Mirus | MIR 2300 | |
Glo lysis buffer | Promega | E2661 | |
Renilla Glo luciferase assay system | Promega | E2720 | |
96-well assay plate (white) | Costar | 3912 | |
Modulus microplate luminometer | Turner Microsystems | 998-9300 |