A PCR-based protocol was adapted to detect Cronobacter spp., Salmonella enterica, and Listeria monocytogenes from body surfaces and alimentary canals of individual wild-caught flies. The goal of this protocol is to detect and isolate bacterial pathogens from individual insects collected as part of an environmental sampling program during foodborne outbreak investigations.
There is unanimous consensus that insects are important vectors of foodborne pathogens. However, linking insects as vectors of the pathogen causing a particular foodborne illness outbreak has been challenging. This is because insects are not being aseptically collected as part of an environmental sampling program during foodborne outbreak investigations and because there is not a standardized method to detect foodborne bacteria from individual insects. To take a step towards solving this problem, we adapted a protocol from a commercially available PCR-based system that detects foodborne pathogens from food and environmental samples, to detect foodborne pathogens from individual flies.Using this standardized protocol, we surveyed 100 wild-caught flies for the presence of Cronobacter spp., Salmonella enterica, and Listeria monocytogenes and demonstrated that it was possible to detect and further isolate these pathogens from the body surface and the alimentary canal of a single fly. Twenty-two percent of the alimentary canals and 8% of the body surfaces from collected wild flies were positive for at least one of the three foodborne pathogens. The prevalence of Cronobacter spp. on either body part of the flies was statistically higher (19%) than the prevalence of S. enterica (7%) and L.monocytogenes (4%). No false positives were observed when detecting S. enterica and L. monocytogenes using this PCR-based system because pure bacterial cultures were obtained from all PCR-positive results. However, pure Cronobacter colonies were not obtained from about 50% of PCR-positive samples, suggesting that the PCR-based detection system for this pathogen cross-reacts with other Enterobacteriaceae present among the highly complex microbiota carried by wild flies. The standardized protocol presented here will allow laboratories to detect bacterial foodborne pathogens from aseptically collected insects, thereby giving public health officials another line of evidence to find out how the food was contaminated when performing foodborne outbreak investigations.
Insectos juegan un papel importante en la transmisión de enfermedades relacionadas con los alimentos, ya que pueden propagarse patógenos a los alimentos o con las superficies y utensilios 1. Entre los insectos, moscas, cucarachas y hormigas exhiben comportamientos que favorecen la propagación de agentes patógenos transmitidos por los alimentos. Estos comportamientos incluyen una asociación con la materia en descomposición, basura y heces, (edificios) que entran endofilia y synanthropy (convivir con los humanos) 2. .. Los patógenos transmitidos por los alimentos, como Salmonella spp, Listeria monocytogenes, Campylobacter spp, Escherichia coli O157: H7, y los miembros del género Cronobacter (antiguamente Enterobacter sakazakii) se han notificado a ser transmitida por insectos 3-5. Suciedad sinantrópicas moscas mecánicamente extendió bacterias transmitidas por los alimentos mediante la transferencia de patógenos de sus superficies corporales contaminados. Sin embargo, la presencia de patógenos transmitidos por los alimentos en el tubo digestivo de las moscas puede ser hasta tres vecesmayor que la observada en sus superficies del cuerpo (cuerpo, la cabeza, las piernas y alas) 5. Patógenos transmitidos por alimentos también pueden permanecer en canal alimentario de la mosca para una mayor longitud de tiempo que en la superficie del cuerpo 6,7 y en algunos casos, que son capaces de multiplicarse, colonizando 4,8,9 tracto digestivo de la mosca. Esto aumenta el potencial vector de las moscas, ya que pueden extenderse más patógenos transmitidos por alimentos a través de la defecación y la regurgitación 10,11.
Hoy en día, hay mejores sistemas de vigilancia que son capaces de detectar los brotes de enfermedades transmitidas por los alimentos con mayor rapidez. Durante la realización de investigaciones de brotes de origen alimentario, los funcionarios de salud pública buscan el alimento que puede ser la fuente (s) o vehículo (s) de la infección. Los investigadores también pueden realizar una evaluación ambiental de la instalación (o instalaciones) que participan para averiguar cómo se contaminó la comida y pueden recoger muestras como parte de la investigación 12. Despite la gran cantidad de literatura científica acerca de los insectos como portadores de agentes patógenos transmitidos por los alimentos, la vinculación de los insectos como vectores del patógeno causando un brote de enfermedades transmitidas por alimentos en particular ha sido un reto. Esto es principalmente porque los insectos no están siendo recogidos asépticamente como parte de los programas de muestreo ambiental durante las investigaciones de brotes de origen alimentario. Para incluir insectos, en particular aquellos que exhiben comportamientos que favorecen la propagación de agentes patógenos transmitidos por los alimentos, como parte de un procedimiento de toma de muestras ambientales, un protocolo estandarizado, rápida, sensible y fiable para detectar agentes patógenos transmitidos por los alimentos de un solo insecto tiene que estar en su lugar.
Técnicas de chapado tradicionales para la detección de patógenos transmitidos por los alimentos de los insectos son laboriosos y dependen del crecimiento competitivo de las bacterias diana en diferentes medios de cultivo para superar el rápido crecimiento de la microbiota comensal innata del insecto. La mayoría de los estudios que se han asociado con los insectos bapatógenos cterial han aumentado la sensibilidad del método por la puesta en común juntos varios insectos en lugar de identificar la presencia de patógenos en una base por individuo. Por lo tanto, esos estudios no diferencian la parte del cuerpo del insecto donde se encontraron los patógenos 13-18. La capacidad de identificar si los patógenos alimentarios se encuentran en la superficie corporal o en el tubo digestivo de un insecto individual es importante, ya que esto puede tener implicaciones epidemiológicas y puede dar lugar a diferentes estrategias de mitigación. Como vectores mecánicos, las moscas que se posan en los alimentos durante un corto tiempo sólo podrán transferir los niveles bajos de bacterias de su superficie corporal, mientras que aquellas moscas que regurgitan y defecar en la comida de aumentar la probabilidad de transferencia de patógenos a niveles potencialmente altos de infección. En consecuencia, es importante para estimar la prevalencia de un patógeno de transmisión alimentaria por un insecto individual y para diferenciar la parte del cuerpo de ese insecto donde el p bacteriana athogen se encuentra.
A pesar de que cada vez más se están implementando el uso de métodos independientes del cultivo para detectar agentes patógenos transmitidos por los alimentos, que no se han utilizado comercialmente para detectar agentes patógenos transmitidos por los alimentos de un solo insecto. Actualmente, no se validan protocolos moleculares que están disponibles comercialmente para la detección rápida de patógenos transmitidos por los alimentos de los alimentos que están siendo utilizados por la industria y los organismos reguladores. Estos métodos incluyen sistemas basados en ADN para la detección de patógenos en una variedad de muestras de alimentos. Aunque los protocolos moleculares son más rápidos que los métodos tradicionales de galvanoplastia, el enriquecimiento de la muestra aún se requiere para obtener el nivel de sensibilidad de 10 2 unidades formadoras de colonias (UFC) de los patógenos bacterianos necesario en la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) Métodos basados en 19. Además, se necesita el aislamiento de colonias bacterianas puras a partir de muestras positivas por PCR para confirmar el patógeno mediante métodos adecuados.
contenido "> El objetivo de este protocolo es estandarizar un sistema basado en la PCR disponible comercialmente usado para detectar patógenos en muestras alimentarias y ambientales para la detección de bacterias transmitidas por los alimentos a partir de la superficie del cuerpo y el tubo digestivo de una sola mosca y aislar aún más a los patógenos de la sensibilidad samples.The del protocolo descrito aquí se calibró primero con la casa de adultos criados en el laboratorio moscas (Musca domestica) que fueron alimentados experimentalmente con diluciones en serie de cada patógeno bacteriano. El protocolo estandarizado se utilizó posteriormente para estudiar 100 silvestre moscas de la presencia de agentes patógenos transmitidos por los alimentos de sus superficies corporales y / o tubos digestivos. Este protocolo estandarizado permitirá laboratorios de salud pública para la detección de amenazas para la salud que plantean los insectos, lo que permite la posibilidad de proceder a su recogida como parte del programa de muestreo ambiental al realizar transmitidas por los alimentos investigaciones de brotes.Estudios previos que han detectado los patógenos alimentarios de insectos silvestres han utilizado una gran variedad de protocolos que podrían no incluir la información necesaria para evaluar con precisión el riesgo relacionado con la comida de la presencia de una sola mosca en los alimentos o en entornos relacionados con la alimentación, 13,15 23,24. Aquí, hemos demostrado que el uso de este protocolo estandarizado, es posible detectar y aislar Cronobacter spp., S. enterica, y L. monocytogenes a partir de la superficie del cuerpo y el tubo digestivo de las moscas individuales capturados en el medio silvestre. Dado que los insectos pueden llevar a un bajo número de patógeno de transmisión alimentaria objetivo y un alto número de otra microbiota indígena 25,26, este protocolo requiere enriquecimiento primario (y, a veces secundario) de las muestras en medios de cultivo específicos para aumentar la sensibilidad de la detección del patógeno alimentario objetivo . Los resultados del sistema de detección basado en la PCR-se obtuvieron dentro de aproximadamente 30 horas (para la detección de Cronobacter spp. y S. enterica) y 48 h (para la detección de L. monocytogenes) inicialmente después de procesar las muestras. Por lo tanto, este protocolo es fiable, así como un rápido y lo suficientemente sensibles como para detectar una sola mosca de la presencia de agentes patógenos transmitidos por los alimentos.
Confirmación de los resultados de PCR positivos y el aislamiento de bacterias viables es parte del procedimiento operativo estándar de muchos laboratorios. Además, para los propósitos de epidemiología, se requieren cultivos bacterianos puros de las muestras positivas por PCR para confirmar aún más y el serotipo del patógeno transmitidas por los alimentos usando bioquímicos, inmunológicos, o métodos genéticos. Aunque no se observaron falsos positivos en la detección de S. enterica y L. monocytogenes de las partes del cuerpo de las moscas silvestres capturados individuales, el uso de este protocolo, se encontraron a una tasa de 50% de falsos positivos para Cronobacter spp. Esto sugiere que el sistema de detección basado en la PCR-para el género Cronobacter pueden reaccionar de forma cruzada con otras enterobacterias presentes entre la microbiota muy complejo realizado por las moscas. Por lo tanto, el aislamiento y la purificación de colonias puras del género Cronobacter partir de muestras de PCR-positivos requieren chapado más selectivo que los otros patógenos evaluados.
Este protocolo principalmente se ha estandarizado para detectar moscas silvestres capturados individuales para la presencia de Cronobacter spp., S. enterica, y L. monocytogenes utilizando un sistema de detección basado en la PCR comercial. Sin embargo, este protocolo también se adapta fácilmente para detectar partes del cuerpo de moscas individuales para la presencia de otros patógenos transmitidos por los alimentos, tales como E. coli enterohemorrágica O157: H7 (utilizando el E. coli O157: H7 kit de ensayo estándar de MP o la E. coli O157: H7 kit de ensayo en tiempo real) y el shiga toxigénica E. coli (STEC) grupo (mediante el paquete de STEC en tiempo real), sensibilidades obteniendo> 80% (despublicardatos ed). Además, este protocolo puede potencialmente ser adaptado para detectar agentes patógenos transmitidos por los alimentos de otros insectos que son vectores de enfermedades (cucarachas y hormigas) conocidos, pero se necesita más investigación en esta área.
Las investigaciones de brotes enfermedades transmitidas por alimentos son muy dinámicos y comprenden un proceso de varios pasos que pueden variar en función de la situación específica y el medio ambiente local siendo investigados 12,27. Estas investigaciones son importantes porque proporcionan inmediata protección de la salud pública mediante la prevención de futuras enfermedades. Además, estas investigaciones pueden dilucidar nuevos mecanismos por los cuales los microorganismos transmitidos por los alimentos se reparten, y plantear preguntas importantes que conducen a nuevas áreas para la investigación 28. Las técnicas de investigación, así como los protocolos estandarizados, rápidas y sensibles son necesarios para la detección de patógenos transmitidos por los alimentos de insectos individuales. Este protocolo estandarizado abre la oportunidad de recoger asépticamente insectos como moscas, which pueden vector del patógeno bacteriano transmitidas por los alimentos, como parte de un programa de muestreo ambiental. La información epidemiológica que se pueden obtener de esto sería de utilidad en la construcción de una imagen precisa de los mecanismos de transmisión de microorganismos patógenos por insectos (por ejemplo, la duración del tiempo de exposición: una mosca por el aterrizaje contra moscas aterrizar, defecar, y regurgitando).
Finalmente, a pesar de que el sistema de detección basado en la PCR comercial descrito aquí es práctico de usar y simplifica amplificación por PCR y la visualización de un amplicón nivel de género, no es de ninguna manera el único sistema apropiado. El lisado de las muestras enriquecidas alternativamente podría ser utilizado para la detección de la presencia de agentes patógenos transmitidos por los alimentos mediante el uso de pares de cebadores específicos de especie públicamente disponibles. Sin embargo, la sensibilidad de detección debe demostrarse antes de su uso.
The authors have nothing to disclose.
Thanks to Ben D. Tall, Yi Chen, and Thomas Hammak from the U.S. Food and Drug Administration (FDA), Center for Food Safety and Applied Nutrition (CFSAN) for critically reviewing the manuscript. The authors also thank Hannah Lee (research internship program, Joint Institute for Food Safety and Applied Nutrition (JIFSAN), University of Maryland) for laboratory assistance and David Weingaertner (FDA, CFSAN) for preparing the figure of the schematic overview shown in the video.
Bismuth sulfite (BS) agar | Fisher Scientific | R452402 | *Multiple suppliers. |
Brain heart infusion (BHI) broth | Becton, Dickson and Company | 299070 | *Pre-warmed to 37°C. Multiple suppliers. |
Brilliance Listeria agar (BLA) | Fisher Scientific | CM1080B | *Multiple suppliers. |
Buffered peptone water (BPW) | Becton, Dickson and Company | 212367 | *Pre-warmed to 37°C or 42°C. Multiple suppliers. |
Brilliance Cronobacter agar (Druggan-Forsythe-Iversen formulation/DFI) | Fisher Scientific | CM1055B | *Multiple suppliers. |
chromID Sakazakii Agar | bioMérieux | 43741 | *Call for information: 800.682.2666 |
R & F Enterobacter sakazakii (Cronobacter) Chromogenic Plating Medium | R & F Laboratories | Various | *Call for information: +1.630.969.530 |
R & F Enterobacter sakazakiii Enrichment Broth and supplement | R & F Laboratories | Various | *Call for information: +1.630.969.530 |
Hektoen enteric (HE) agar | Fisher Scientific | OXCM0419B | *Multiple suppliers. |
24 Listeria enrichment broth (24LEB) | Oxoid | CM1107 | *Freshly prepared at room-temperature. Multiple suppliers. |
Listeria selective enrichment supplement | Oxoid | SR0243 | *Multiple suppliers. |
Novobiocin | Fisher Scientific | OXSR0181E | *Multiple suppliers. Store at 2-8 °C |
Vancomycin hydrochloride hydrate | Sigma Aldrich | 861987 | Store at 2-8 °C |
Cefsulodin sodium salt hydrate | Sigma Aldrich | C8145 | Store at 2-8 °C |
Rappaport-Vassiliadis (RV) medium | Fisher Scientific | CM0669B | *Multiple suppliers. |
Tetrathionate (TT) Broth | Becton, Dickson and Company | 249120 | *Multiple suppliers. |
Trypticase soy agar (TSA) | Becton, Dickson and Company | 236930 | *Multiple suppliers. |
Xylose lysine desoxycholate (XLD) agar | Becton, Dickson and Company | 221284 | *Multiple suppliers. |
API Biochemical identification system | bioMérieux | Various | *Call for information: +1.800.682.2666 |
VITEK 2: Product Safety | bioMérieux | Various | *Call for information: +1.800.682.2667 |
BAX System Q7 | DuPont | N/A | |
BAX E. sakazakii Standard assay kit | DuPont | D11801836 | * |
BAX L. monocytogenes 24E assay kit | DuPont | D13608125 | * |
BAX Salmonella 2 Standard assay kit | DuPont | D14368501 | * |
Capping tool | DuPont | D11677028 | |
Decapping tool | DuPont | D11134095 | |
PCR tube rack/holder | DuPont | D12701663 | |
Featherweight forceps, wide tip | BioQuip | 4750 | Sterilize before use. Multiple suppliers. |
Fine point, straight tip forceps | BioQuip | 4731 | Sterilize before use. Multiple suppliers. |
Zirconia/silica beads, 0.5 mm | Bio Spec Products, Inc. | 11079105z | Multiple suppliers. |
Petri dishes – 60X15mm | Fisher Scientific | 08-772B | Multiple suppliers. |
Disposable inoculating loops, 10µL | Fisher Scientific | 22-363-606 | Multiple suppliers. |
L-shaped cell spreaders | Fisher Scientific | 14-665-230 | Multiple suppliers. |
Microcentrifuge tubes, 2 ml | Fisher Scientific | Various | Sterilize before use when needed. Secure lid is preferred. Multiple suppliers. |
Cluster tubes | Fisher Scientific | 05-500-13 | |
Cluster tubes caps | Fisher Scientific | 05-500-23 | |
Sodium hypochlorite (Liquid chlorine bleach) | N/A | N/A | *Dilute to 0.05% with water. Multiple suppliers. |
Sterile deionized water | N/A | N/A | Multiple suppliers. |
Sterile distilled water | N/A | N/A | Multiple suppliers. |
Ethyl alcohol 190 proof | N/A | N/A | *Dilute to 70% with water when needed. Multiple suppliers. |
Genie cell disruptor, 120V – for 1.5ml and 2.0ml microtubes | Scientific Industries, Inc. | SI-D238 | Multiple suppliers. |
Heating block | N/A | N/A | Multiple suppliers. |
Cooling block | N/A | N/A | Multiple suppliers. |
Recirculating water bath | N/A | N/A | Multiple suppliers. |
Stereo microscope | N/A | N/A | Multiple suppliers. |
Centrifuge | N/A | N/A | Multiple suppliers. |
Incubator | N/A | N/A | Multiple suppliers. |