Ex-Vivo longperfusie (EVLP) heeft toegestaan longtransplantatie bij de mens om meer direct beschikbaar doordat de mogelijkheid om organen te beoordelen en uit te breiden het donorpool geworden. We beschrijven hier de ontwikkeling van een rat EVLP programma en verfijningen die zorgen voor een reproduceerbaar model voor toekomstige uitbreiding.
Het aantal aanvaardbare donorlongen beschikbaar voor longtransplantatie is sterk beperkt als gevolg van slechte kwaliteit. Ex-Vivo longperfusie (EVLP) heeft toegestaan longtransplantatie bij de mens om meer direct beschikbaar doordat de mogelijkheid om organen te beoordelen en uit te breiden het donorpool geworden. Aangezien deze technologie uitbreidt en verbetert het vermogen om potentieel evalueren en de kwaliteit van ondermaatse longen voor transplantatie is een kritieke behoefte. Om deze benaderingen strenger evalueren reproduceerbaar diermodel te worden vastgesteld die het mogelijk maken het testen van verbeterde technieken en beheer van de gedoneerde longen en de long-transplantatie ontvanger. Bovendien, een EVLP diermodel van geassocieerde pathologieën, bijvoorbeeld ventilatie geïnduceerde longbeschadiging (VILI), zou een nieuwe werkwijze om behandelingen voor deze pathologieën evalueren. We beschrijven hier de ontwikkeling van een rat EVLP long programma verfijningen dit method die het mogelijk maken voor een reproduceerbaar model voor toekomstige uitbreiding. We beschrijven ook de toepassing van deze EVLP systeem te modelleren VILI in longen rat. Het doel is om de onderzoeksgemeenschap te voorzien van belangrijke informatie en "parels van wijsheid" / technieken die is ontstaan uit vallen en opstaan en zijn cruciaal voor de oprichting van een EVLP systeem dat is robuust en reproduceerbaar.
Klinische relevantie
Er is momenteel een gebrek aan geschikte longen voor transplantatie beschikbaar met slechts 19% van de longen in staat om op nationaal niveau worden gebruikt die leidt tot langdurige wachtlijst tijd of patiënten sterven wachten op een transplantatie 1. Het tekort kan het gevolg oudere donors, trauma, infecties, multisysteem orgaanfalen en soms gewonden donorlongen bij oogst 2. Bovendien is de long een zwakke orgaan buiten de borstholte en bandtransporttoetsen en conserveringstechnieken kunnen leiden tot verslechtering en niet-levensvatbare longen. Vandaar dat het handhaven en verbeteren van de longen levensvatbaarheid ex-vivo is een belangrijk aandachtspunt in longtransplantatie geneeskunde onlangs geworden.
Ex-vivo longperfusie (EVLP)
Ex-vivo long perfusie (EVLP) heeft zich ontwikkeld om continu perfuseren organen wordt geëvalueerd voor transplantatie en maakt een periode van evaluatie dat alleows voor het potentieel van de long reanimatie of reconditionering. EVLP kan verlengen totaal uit het lichaam orgel ischemische tijd en laat de gedoneerde organen om verdere afstanden 3 reizen. Typisch worden de longen geventileerd bij 50% van de totale longcapaciteit of 20 cmH 2 O piek luchtwegdruk met een fractie van ingeademde zuurstof (FiO2) van 30% tot 50% 4. Behoud oplossing geperfundeerd 40-60 ml / kg (ongeveer 40% van de voorspelde hartdebiet 100 ml / kg) bij mensen en grote dieren 5,6, maar geperfuseerd op ongeveer 20% van de cardiale output voor ratten 7. De opname van STEEN oplossing liet menselijke longen in RT omgevingen reizen zonder ontwikkeling van longoedeem 9. Dit pionierswerk is verfijnd door de Universiteit van Toronto Lung Transplant Program 10-13 en wordt geëvalueerd voor een betere evaluatie van de marginale donorlongen voor transplantatie 14,15. De optimale Ventin en perfusie voorwaarden die nodig zijn om marginale en / of sub-standaard longen regenereren voor transplantatie is niet bekend en is momenteel een actief gebied van onderzoek.
Geïsoleerde longperfusie systemen zijn in kleine dieren veroorzaken longschade, herscheppen luchtwegen en de longen perfuseren met verschillende oplossingen ischemische schade te voorkomen. Onderzoekers hebben een klein diermodel longtransplantatie gemaakt met de geïsoleerde long-perfusie systeem de EVLP protocollen die kunnen worden gebruikt bij mensen en grotere dieren 16-18 nabootsen. Echter, deze experimentele model vele problemen met betrekking tot de verschillende technieken en parameters toegepast om menselijke fysiologie bootsen. In het bijzonder, zijn er vele subtiliteiten in het handhaven van de longen levensvatbaarheid tijdens EVLP. Deze subtiele kunnen ontstaan door verschillen in oogst techniek beademing instellingen perfusaat samenstelling en stroomomstandigheden en canulatie van de long. Theroordat, het doel hier is om de onderzoeksgemeenschap te voorzien van een aantal problemen oplossen en implementatie tips die we leiden hebben gevonden om een robuuste methode voor de uitvoering van EVLP in een knaagdier model.
Systeem monitoring
Welke dingen eruit zien als experiment goed loopt:
Zodra de canules zijn in het circuit is geplaatst en de longen ventilatie- er meerdere manieren om te waarborgen het systeem goed werkt. Er mag geen lekkage van perfusaat de hele lijn. De pulmonale vasculaire weerstand (PVR) betrekkelijk constant blijft (uitgaande van een constante stroom). De zuurstof uitwisseling moeten toenemen zodra de ventilator goed werkt en het uitbreiden van de longen om meer longblaasjes te werven voor de gasuitwisseling. Figuur 12A correct toont geventileerd en doorbloed longen aangesloten op de EVLP circuit binnenin de kunstmatige thorax.
Welke dingen eruit zien als experiment is niet goed draait:
Er zijn een aantal veel voorkomende problemen die de hoogste mate van het optreden tijdens de beginfase van een EVLP experiment hebben gehad. De eerste en eenvoudigste to remedie is een lek in de lijn verlaten van de long. Dit is merkbaar door een pool van perfusaat pooling onder deel van het circuit en het niveau in het reservoir voortdurend afneemt. Controleer en haal buisconnectoren rond het gebied waar gemorst is en inspecteer de buis zelf voor een lek. Als dit lek plaatsvindt vóór de longen, kan het ook bellen introduceren in de longen. Dit moet zo snel mogelijk worden verholpen als luchtbellen in de perfusievloeistof zal resulteren in weefselschade en veroorzaken een significante toename van de PVR. Er kan ook een lek vanuit de long of een van de canules zijn. Dit kan worden veroorzaakt door een slippen van een canule of een obstructie in de uittredende lijn waardoor een drukopbouw. Controleer de positie voor beide canules om ervoor te zorgen noch is uitgegleden of gedraaid. De PA druk moet ook worden gecontroleerd tijdens dit proces, omdat een onmiddellijke stijging in de PA druk is een duidelijk teken dat een obstructie van een soort onlangs heeft plaatsgevonden. Figuur 12Btoont een gescheurde long die verbroken als gevolg van hoge druk. Een lek in de longen zelf kan ook worden veroorzaakt door een scheur in het weefsel. Dit probleem kan wel of niet herstelbaar maar herpositionering en het natrekken van de canules is de beste optie in dit scenario.
Key Learning Points / kansen:
Trial and error ontwikkeling van de ex-vivo longperfusie systeem heeft ons toegelaten om een aantal belangrijke kwesties die we hier schetsen voor een efficiënte uitvoering van de EVLP systeem vergemakkelijken. Ten eerste, met betrekking tot verkrijgen, is het belangrijk dat standaard anesthesietechnieken gevolgd goed verdoven dieren (genoeg verdoving, injectie in het peritoneum) en naleving van alle IACUC beleid vereist. De canules (figuur 13 A, B en C) moeten herhaaldelijk worden gespoeld om eventuele stollen en / of vuil in de pulmonaire vasculat verwijderenure. Met betrekking tot de selectie van dieren, raden we het gebruik van Sprague Dawley of Lewis-ratten met een gewicht van 250-350 g. Speciale aandacht moet worden genomen bij het cannulating ratten met een gewicht dicht tot 250 g, omdat de schepen kleiner en dus veel moeilijker zal zijn om canule zonder verwonden van het vaatstelsel. Indien kleinere ratten, of een muismodel, wordt gebruikt, moet kleiner canule worden gebruikt.
Trachea canule is niet typisch uitdagend zolang de hechting goed is bevestigd dat vooraf een zijden hechtdraad posterieur van de luchtpijp na het ontleden van de omringende fascia en voorafgaand aan cannulatie. Volg deze met een anterieure incisie 1-2 tracheale ringen boven de hechting aan de canule passeren. Tie vierkante knopen tussen de tracheale ringen om te verzekeren binnen een groef voor een betere beveiliging (Figuur 4C). Canulatie van de longslagader (PA) is een grotere uitdaging in vergelijking met de tracheacanule. De volgende stappen werden bij dit onderzoekvoor deze procedure. Ten eerste, pakt het hart apex met een pincet. Pass een pincet in de dwarsrichting sinus en draad een hechting aan de canule in de proximale PA beveiligen. Incise de rechterkamer direct voor de rechter ventrikel outflow tract (RVOT) (Figuur 14A). Na de incisie in de RVOT, wordt de canule worden geleid naar de longslagader uitstroom. Het hebben van de hechtdraad in positie achter de longslagader / aorta voordat het recht ventriculotomy verhoogt de efficiency (figuur 5C). De canule moet worden vastgezet op hun plaats met de hechtdraad om losraken te voorkomen. Een belangrijke complicatie kan optreden als de PA canule niet in de juiste anatomische oriëntatie. De canule kan te ver worden geplaatst en slechts perfuse één tak of mal gepositioneerd met het verdraaien van de hart-long monster na verwijdering uit de borstholte worden. Dit kan gemakkelijk worden georiënteerd naar de oorspronkelijke positie om de juiste hoek van anatomi bewarencal positie. Tenslotte linkeratrium (LA) canule is het meest uitdagende gedeelte van de procedure. De LA canule moet binnen het linkeratrium worden geplaatst. Met de weefsels uiterst bros, rekening te houden met belangrijke kracht of draaien niet gebruiken om een scheur in de longader en linkerboezem die dan zou het experiment unsalvageable voorkomen. De PA canule wordt het best geplaatst voor de LA canule. Een linker ventriculotomy verwijdering van de apex is aangetoond dat de cordae tendinae verstoren en vergemakkelijken de toegang via de mitrale folders. Ook de ventriculotomy gemakkelijker verwijden en visualiseren de mitralisklep en de canule voeren door de mitralisklep. Dilatatie van de mitrale klep annulus met een paar kleine stompe uiteinde pick-ups kunnen worden gedaan om de luchtwegen in de LA (figuur 14B) te visualiseren. Hechtdraad moet achter het hart worden geplaatst voordat infusen. Dit kan eenvoudig worden gedaan door het opheffen van de kern met behulp van een paar small stompe uiteinden pick-ups en het plaatsen van de hechting onder en aan de overkant van het hart. De LA is nu klaar om te worden voorzien van een canule. Voer de LA canule door de opnemers om goed zichtbaar de plaatsing van de canule in het linker atrium. Wees extra voorzichtig niet aan de canule terug in de linker ventrikel te verjagen. De hechting moet dan stevig worden vastgezet aan het myocard van het linker ventrikel. Bevestiging van de hechting aan het linker atrium kunnen afsluiten het gehele of een deel van de canule.
Tijdens de procedure, is het cruciaal dat geen lucht blijven de instroom gedeelte van de inrichting. Significante lucht kan produceren een luchtembolie verhogen PVR (effectief een "air-lock"), die zal resulteren in een veel lagere perfusaat stroom bij een bepaalde druk. Verschillende punten kunnen worden gebruikt om lucht in het systeem te verwijderen. Lucht in het gedeelte uitstroom wordt verwacht en mag geen nadelig effect hebben op de longen. Een varkensmodel voor pulmonaire hypertensie isgetoond aan de pathologie van continue kleine hoeveelheden lucht over een periode van 8 weken opnieuw. De verhoogde lucht vermindert de hoeveelheid perfusie onderhavige terwijl die ontsteking van de omliggende weefsels 19.
De inleiding van perfusie kan optreden wanneer de canule is voltooid maar voordat de buis uit de LA is verbonden met de EVLP lijn. Perfusaatmonsters moeten worden doorlopen om duidelijk uit elke bloedstolsels en dit perfusaat kan legen in de borstwand zonder problemen. Omschakelen van de perfusaat pomp naar de handmatige modus en langzaam verhogen van de doorstroming naar ~ 2 ml / min zorgt voor een nauwkeurige controle van de PA druk. Druk gedurende 20-30 cmH 2 O kan een obstructie aangeven en kijken voor perfusaat verlaten van de LA is ook een indicator, maar dit kan heel moeilijk te zien zijn. Als de druk doet toenemen tot meer dan 20-30 cmH 2 O, stop de pomp en controleer beide canuleringen. Zodra de druk is constant rond de 10-20 cmH 2 O toestaan the perfusaat om door en in de borstholte draaien gedurende 2 minuten. Op dit moment de lijn van de LA kan worden aangesloten op de EVLP circuit. Het perfusaat pompsnelheid kan worden verhoogd tot 5-10 ml / min. Aangezien het fluïdum kop doorloopt het circuit, zal een verhoging van de PA-druk als gevolg van de toename in hoogte van de vloeistof kop en derhalve de statische druk. Indien de vloeistof niet op het hoogste punt kan stromen in de lijn, kan het nodig zijn hetzij toepassen van een zuigkracht op het tegenoverliggende uiteinde van de lijn of trachten het hoogste gedeelte van de lijn te verlagen. Zodra dit probleem is te overwinnen, moet het perfusaat circuleren zonder problemen.
Een aantal zaken moet worden gecontroleerd met betrekking tot de ventilator. Ten eerste kan het verdraaien van bronchiën / luchtpijp en hart-long positie ontstaan als de longen worden meer oedemateus en het gewicht toeneemt. Het is belangrijk dat de canules te blijven in een relatief nauwe anatomische positie, dus veranderen of beide canulee noodzakelijk zijn. Druk of volume gecontroleerde ventilatoren als positief of negatief ventilatie kan worden gebruikt met deze EVLP systeem. Voor de rat model, hebben we gevonden met behulp van positieve druk, volume gecontroleerde ventilatie werkt goed bij teugvolumes tussen 4-10 ml / kg en bij positieve eind-expiratoire druk (PEEP) tussen 2-8 cmH 2 O. Echter, een PEEP van 8 cmH 2 O een mogelijke breuk veroorzaken bij de splitsing van de luchtpijp. Na elk experiment (of aantal experimenten als back-to-back uitgevoerde), de ontluchtingsleiding die naar de luchtpijp te worden gereinigd van bronchoalveolaire lavage (BAL) vloeistof die kan zijn gereisd de luchtpijp. Deze vloeistof zal verharden als links onaangeroerd en kan de ventilatie-lijn volledig te blokkeren.
Het perfusaat samenstelling essentieel voor een succesvolle EVLP experiment. Een 5% dextraan mengsel laat longperfusie dat dicht bij fysiologische omstandigheden handhaaft een stabiele oncotische druk fluïdum b rijdenack in het vaatstelsel om oedeem te voorkomen en voorkomt trombose in de longvaten. Het is belangrijk op te merken dat sommige soorten ratten allergisch dextran waarvan longoedeem 20 kan leiden kan. De inhoud van het perfusaat was consistent in alle experimentele groepen in deze studie ook de dextraangehalte niet confounder zijn. De oncotische druk een kritieke variabele die het potentieel verbeteren of produceren weefsel oedeem. Commercieel verkrijgbare perfusie-oplossingen die zijn geoptimaliseerd voor koude statische opslag of normotherme longperfusies zijn gebruikt bij dit systeem long levensvatbaarheid malen te verhogen. We merken dat sommige van deze oplossingen bevatten albumine en een zorg is de mogelijkheid runderalbumine welke leidt tot een ontstekingsreactie in de knaagdierlong. Hoewel een optimale perfusaat samenstelling een lopend onderwerp van onderzoek, de perfusievloeistof dient rekening te houden met de oncotische druk, de osmotische druk en buffercapaciteit. Wbevelen e de oplossing gebaseerd op een gemodificeerde Krebs-Henseleit oplossing of celkweekmedium. De oncotische druk moet worden gehandhaafd door dextran of albumine, afhankelijk van de toepassing. De perfusie druk en debiet van invloed op het orgel en supra-fysiologische perfusieparameters kan het orgel gevoelig voor mechanische trauma te maken.
Visuele indicatoren tijdens Experiment:
Er zijn vele visuele aanwijzingen en aanduidingen uit real-time data die kunnen worden gebruikt om te bepalen of een EVLP experiment goed functioneert. De long is even groot blijven en leeglopen om hetzelfde volume na elke ademhaling. Er zal ook geen lekken uit de longen zelf. De PVR, longgewicht, en de naleving zal relatief constant blijven. Productie van zuurstof zal constant blijven of licht stijgen.
Er zijn vele visuele indicatoren als de longen gecompromitteerd tijdens een experiment. De long wordt oedemateus eennd groeit snel in omvang en gewicht. De kleur van de longen verandert (van een beige-roze tot wit) en zakken van vloeistof kan worden geïdentificeerd in het weefsel. Indien de trachea of longen breuken van barotrauma of meer distensie, zal er borrelen van het punt van verwonding (figuur 12B). Productie van zuurstof zal afnemen en de PVR en de naleving zal drastisch toenemen als goed.
De mogelijkheden voor het gebruik van een EVLP model op kleine dieren zoals knaagdieren opent de deur voor toekomstige studies betere behandeling van long transplantaties. De kleine diermodel vereist een beter begrip van een longtransplantatie werkelijk nabootsen. Dit model kan worden gebruikt in de toekomst medische behandelingen te verbeteren en vast basislijn parameters voor toekomstig longtransplantatie studies.
The authors have nothing to disclose.
De auteurs willen graag de hulp van Harvard Apparatus, vooral Stephanie Pazniokas, MS (Fysiologie Systems & Regenerative Medicine) erkennen voor hun hulp bij het circuit montage, wijziging en het oplossen van problemen van het perfusiecircuit en XVIVO Perfusie (Daniel Martinelli, CCP, CTP) voor het verstrekken van niet-klinisch gebruik pulmonale plegia.
Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
IPL-2 Basic Lung Perfusion System | Harvard Apparatus | ||
Tweezer #5 stainless steel, curved 11cm | Kent Scientific Corporation | IND500232 | |
Tweezer #5 Dumostar, 11cm | Kent Scientific Corporation | INS500085-A | |
Tweezer #7 Titanium, 12cm tips curved | Kent Scientific Corporation | INS600187 | |
McPherson-Vannas Scissors 8cm, Str 5mm | Kent Scientific Corporation | INS14124 | |
Vannas Scissors 8cm Str 5mm | Kent Scientific Corporation | INS14003 | |
Instrument Sterilization Tray 5" x 7" | Kent Scientific Corporation | INS800101 | |
Heparin 30,000 units per 30mL | APP Pharmaceuticals | Supplied from OSU Pharmacy | |
Ketamine 500mg per 5mL | JHP Pharmaceuticals | Supplied from OSU Pharmacy | |
Xylazine 100mg per 1mL | Akorn | Supplied from OSU Pharmacy | |
10cc insulin syringe 29 Ga x 1/2" needle | B-D | 309301 | |
Hyflex NBR | Ansell | S-17310M | Bite proof gloves |
BL1500 | Sartarius | Practum 1102-1S | Scale |
Large Flat Bottom Restrainer | Braintree Scientific Inc | FB L 3.375 dia x 8.5, 250-500gm rat | Rat tunnel for injection |
Sterling Nitrile Powder-free Exam Gloves, Large | Kiberly-Clark | 50708 | |
Rapidpoint 405 | Siemens | blood gas analyzer | |
Fiberoxygenator D150 | Hugo Sachs Elektronik | PY2 73-3762 | |
LabChart v7.3.7 | ADInstruments | ||
Tracheal cannula | Harvard Apparatus | 733557 | |
Pulmonary Artery cannula | Harvard Apparatus | 730710 | |
Left Atrium cannula | Harvard Apparatus | 730712 | |
Peristaltic Pump | Ismatec | ISM 827B | |
Small Animal Ventilator model 683 | Harvard Apparatus | 55-000 | |
Ecoline Star Edition 003, E100 | Lauda | LCK 1879 | Water Heater |
Tubing Cassette | Cole-Parmer | IS 0649 | |
Connect kit D150 | Cole-Parmer | VK 73-3763 | |
PowerLab 8/35 | ADInstruments | 730045 | |
TAM-A transducer amplifier module type 705/1 | Hugo Sachs – Harvard Apparatus | 73-0065 | |
TAM-D transducer amplifier type 705/2 | Hugo Sachs – Harvard Apparatus | 73-1793 | |
SCP Servo controller for perfusion type 704 | Hugo Sachs – Harvard Apparatus | 732806 | |
CFBA carrier frequency bridge amplifier type 672 | Hugo Sachs – Harvard Apparatus | 731747 | |
VCM ventilator control module type 681 | Hugo Sachs – Harvard Apparatus | 731741 | |
TCM time control module type 686 | Hugo Sachs – Harvard Apparatus | 731750 | |
IL2 Tube set for perfusate | Harvard Apparatus | 733842 | |
Tube set for moist chamber | Harvard Apparatus | 73V83157 | |
Tygon E-3603 Tubing 2.4mm ID | Harvard Apparatus | 721017 | perfusate line entering lung |
Tygon E-3603 Tubing 3.2mm ID | Harvard Apparatus | 721019 | perfusate line leaving lung |
low potassium dextran glucose solution | flushing the lung |