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Neuroscience

Isolierung von primären murinen Gehirn mikrovaskulären Endothelzellen

Published: November 14, 2014
doi:
10.3791/52204
, , , ,
1Department of Neurology,University of Münster, 2Interdisciplinary Center for Clinical Research (IZKF) Münster, 3Institute of Physiology I — Neuropathophysiology I,University of Münster

Summary

Brain microvascular endothelial cells (BMEC) are interconnected by specific junctional proteins forming a highly regulated barrier separating blood and the central nervous system (CNS), the so-called blood-brain-barrier (BBB). The isolation of primary murine brain microvascular endothelial cells, as discussed in this protocol, enables detailed in vitro studies of the BBB.

Abstract

The blood-brain-barrier is ultrastructurally assembled by a monolayer of brain microvascular endothelial cells (BMEC) interconnected by a junctional complex of tight and adherens junctions. Together with other cell-types such as astrocytes or pericytes, they form the neurovascular unit (NVU), which specifically regulates the interchange of fluids, molecules and cells between the peripheral blood and the CNS. Through this complex and dynamic system BMECs are involved in various processes maintaining the homeostasis of the CNS. A dysfunction of the BBB is observed as an essential step in the pathogenesis of many severe CNS diseases. However, specific and targeted therapies are very limited, as the underlying mechanisms are still far from being understood.

Animal and in vitro models have been extensively used to gain in-depth understanding of complex physiological and pathophysiological processes. By reduction and simplification it is possible to focus the investigation on the subject of interest and to exclude a variety of confounding factors. However, comparability and transferability are also reduced in model systems, which have to be taken into account for evaluation. The most common animal models are based on mice, among other reasons, mainly due to the constantly increasing possibilities of methodology. In vitro studies of isolated murine BMECs might enable an in-depth analysis of their properties and of the blood-brain-barrier under physiological and pathophysiological conditions. Further insights into the complex mechanisms at the BBB potentially provide the basis for new therapeutic strategies.

This protocol describes a method to isolate primary murine microvascular endothelial cells by a sequence of physical and chemical purification steps. Special considerations for purity and cultivation of MBMECs as well as quality control, potential applications and limitations are discussed.

Introduction

Gehirn mikrovaskuläre Endothelzellen (BMEC) bilden Monoschichten, die ein integraler Teil der hochspezialisierten Blut-Hirn-Schranke (BBB) ​​sind. BMECs durch junctional Proteine ​​an einen Basalmembran befestigt verschaltet. Zusammen mit Perizyten, glatte Muskelzellen, Astrozyten Ende Füße und zirkulierenden Blutzellen bauen sie die sogenannte neurovaskulären Einheit (NVU) 1. Gegen den bisherigen Vorstellung von einer undurchlässigen Barriere zwischen Blut und zentralen Nervensystems (ZNS), die NVU ein dynamisches, hoch spezifische und geregelte Schnittstelle, die den Übergang von Fluiden, Moleküle und Zellen zwischen zerebralen Blutgefäße und des ZNS 2 steuert . Eine Dysfunktion oder Dysregulation des NVU kann initiieren und / oder dazu beitragen, eine Vielzahl von neurovaskulären, infektiöse, entzündliche oder degenerative Erkrankungen des ZNS, wie beispielsweise Schlaganfall, HIV-Enzephalopathie, multiple Sklerose, Morbus Alzheimer oder Morbus Parkinson 3-6.

_content "> Die BMEC Monoschicht dicht mit einem Junction-Komplex, der aus dicht verschlossen (TJ) und Adhärenzverbindungen (AJ) 7. Der hohe elektrische Widerstand und die Niederparazelluläre Permeabilität der BBB hauptsächlich auf TJ Proteinen 8. Die TJs sind Komplexe, die durch den Transmembranproteine ​​der claudin und Occludin-Familie, die das Zytoskelett der Endothelzellen durch Adaptermoleküle gebunden sind, gebildet wie die zonulaoccludens (ZO) Proteine ​​ZO1-3 4. Adhärenzverbindungen werden hauptsächlich durch das integrale Membranprotein zusammengebaut Gefäßendothel (VE) -cadherin, das mit dem Zytoskelett via catenins 8 verbunden ist.

Die dichte Abdichtung des BBB verhindert den freien Austausch von Substraten und Zellen zwischen Blut und Liquor. Ausnahmen von dieser Regel sind lipophile, kleine Moleküle mit einem Molekulargewicht <400 Da, die Lage, die BBB von Lipid-vermittelte Diffusion 9 überqueren sind. Der Durchgang der größeren und / oderhydrophile Moleküle, wie Glucose, Aminosäuren, Peptide, Proteine ​​und viele Arzneimittel ist für stark gesteuerte transzellulären Transportsysteme 10, die in fünf Hauptkategorien eingeteilt werden können beschränkt: trägervermittelten Transport, Ionentransport, aktive Ausflusstransport, Rezeptor-vermittelte Transport und Caveolae-vermittelten Transport 4. Diese Transportsysteme unterstützen die Aufrechterhaltung der Homöostase des ZNS, die für eine genaue Signalerzeugung, Transduktion und Integration notwendig ist. Außerdem sind BMECs Lage, den Übergang von unterschiedlichen Molekülen aktiv zu steuern, indem die Expression einer Vielzahl von Ectoenzyme. Diese Enzyme sind an der Zelloberfläche lokalisiert und ändern spezifischen endogenen und exogenen Substraten zu behindern oder Zulassen des Übergangs des BBB 11.

Während das ZNS wurde als Immunprivilegierten Organ für eine langfris Zeit betrachtet, deuten neuere Erkenntnisse eine eher dynamische und dicht geregelten System der Immun surveillance des ZNS. Die BMECs kritisch bei der Regulation der Immunzelltransmigration beteiligt. Durch die Expression der Selektine auf ihrer Oberfläche Lymphozyten selektiv veranlaßt, locker an das Endothel zu befestigen. Die Sekretion von Chemokinen, die mit spezifischen Rezeptoren auf Leukozyten stoßen führt zu der Expression oder Konformationsänderungen von Leukozyten-Integrine, wie LFA-1 (Lymphozytenfunktion-assoziiertes Antigen-1) und VLA-4 (sehr späte Antigen-4). Die Integrine vermitteln eine feste Adhäsion durch Bindung ihrer endothelialen Gegenrezeptoren, zB VCAM-I (vascular cell adhesion molecule), ICAM-I (interzelluläres Adhäsionsmolekül) ermöglicht die Transmigration in das Hirnparenchym zwischen oder über BMECs des BBB 12-14. Diese und andere Befunde unterstreichen die aktive Rolle des Endothels selbst bei der Regulierung der Immunzellmigration.

Weiterhin BMECs als Teil der NVU sind an der Regulation der Hirndurchblutung li beteiligtum lokale neuronale metabolischen Anforderungen nked. Auf Astrozyten Stimulations Endothelzellen vasoaktiven Substanzen wie Stickstoffmonoxid führt zur Entspannung der glatten Gefäßmuskelzellen 15.

Angiogenese und Neurogenese in den Entwicklungs sowie im erwachsenen Gehirn Show parallel Strukturierung und Entwicklung und teilen viele Eigenschaften der Verordnung 1, 4. Endothelzellen werden kritisch in diesen Prozessen 16, 17 beteiligt.

Zusammenfassend BMECs liefern wichtige Funktionen, um eine richtige Entwicklung und das Funktionieren des ZNS zu rechtfertigen. BBB Dysfunktion ist vielen schweren neurologischen Störungen verbunden. Jedoch haben nur wenige Ziele auf der Gehirngefäß Schnittstelle für eine spezifische und effiziente Behandlung 18 identifiziert. In vitro Modellen vereinfacht wurden verwendet, um die Mechanismen in der Funktion und Regulation von komplexen physiologischen Systeme für eine lo beteiligt verstehenng Zeit. Die Isolierung der durch diese Handschrift und der in-vitro-Studie von murinen BMECs beschrieben, angesichts der Vielzahl von spezifischen Maus-Knockout-Stämme, könnte ein weiteres Verständnis der BBB Funktion und Regulation unter physiologischen und pathophysiologischen Bedingungen eröffnen neue therapeutische Wege zu schaffen.

Protocol

Gemäß dem deutschen Recht des Tierschutzes und dirigierte Alle Tierversuche wurden von den lokalen Behörden (";; Fachbereich 87, Tiergesundheit, Tierschutz Recklinghausen, Deutschland LandesamtfürNatur, Umwelt und Verbraucherschutz NRW") zugelassen. 1. Allgemeine Anmerkungen für Mouse Experimente Führen Sie alle Experimente mit Mäusen in Übereinstimmung mit den Richtlinien der jeweiligen Institutional Animal Care und Use Committee. Halten Sie die Mäuse unter keimfreien Bedingungen und es ihnen ermöglichen, den Zugang zu Nahrung und Wasser ad libitum haben. Verwenden Alter und Geschlecht abgestimmt Mäusen der experimentellen Gruppen, weil biologischen Eigenschaften können mit dem Alter und Geschlecht variieren. Wann immer möglich versuchen, zu reduzieren, zu verfeinern oder ersetzen Tierversuche. 2. Herstellung des Percoll Gradient Mischungs 19 ml 1x PBS mit 1 ml 10-fach PBS, 1 ml FCS und 10 ml Percoll. Führen steGiften Filtration in ein Glasrohr (Durchmesser der Filterporen: 0,2 um). Danach speichern die Lösung bei 4 ° C. 3. Herstellung von Endothel Zellmedium und Beschichtung von Zellkulturplatten Endothelzellmedium: Herstellung von 500 ml Medium (. Ca. 20%) 400 ml mischen DMEM-Medium (. Ca. 80%) mit 100 ml PDS, 0,25 ml bFGF (. 20 & mgr; g / ml; ca. 0,05%), 0,5 ml Heparin (100 & mgr; l / ml;. ca. 0,1%) und 0,5 ml pyrumycin (4 mg / ml;. ca. 0,1%). Pyrumycin fügen nur in den ersten 2 Tagen Kultur verwendete Zellkulturmedium. Zuführen Sterilfiltration in ein Glasrohr (Durchmesser der Filterporen: 0,2 um). Danach speichern die Lösung bei 4 ° C. Beschichtung von Zellkulturplatten: 1 ml der Beschichtungslösung, eine Lösung aus 500 & mgr; l ddH 2 O, 400 ul Kollagen IV (0,4 mg / ml) und 100 ul Fibronectin (0,1 mg / ml). Decken Sie die ganze Oberfläche des EACh Vertiefung der Zellkulturplatte mit der Beschichtungslösung. Bewahren Sie die Platte bei 4 ° C über Nacht. 4. Isolierung von murinen Gehirn mikrovaskulären Endothelzellen (MBMEC) Opfern 10 erwachsenen Mäusen (8. – 12. Wochen alten C57BL / 6), durch zervikale Dislokation. Anschließend isolieren die Maus-Gehirne und Speicher in 5 ml PBS (Caveat: Arbeits steril). Entfernen Gehirn stammt, Kleinhirne und thalami mit einer Pinzette. Trennen Hirnhäute durch vorsichtiges Aufrollen die Gehirne auf einem sterilen Löschpapier. Sammeln Sie die resultierende Hirnhäute freien Vorderhirne. Übertragen Sie die Gehirne in ein 50 ml Falcon-Röhrchen mit 13,5 ml DMEM gefüllt. Hackfleisch das Gewebe zuerst mit einer 25 ml Pipette und dann mit einer 10 ml Pipette bis das Medium wird milchig. Dann verdauen das Gewebe mit einer Mischung aus 0,6 ml Kollagenase CLS2 (10 mg / ml in DMEM) und 0,2 ml DNAse (1 mg / ml in PBS) in Dulbeccos modifiziertem Eagle Medium (DMEM) für 1 h bei 37 ° C auf einem Orbital schüttelnr bei 180 rpm. 10 ml DMEM zur Gewebesuspension zugegeben und zentrifugiert, die Zellen bei 1000 × g für 10 min bei 4 ° C. Überstand verwerfen (Caveat: Pellet wird leicht zu verlieren) Um das Myelin bei 1.000 × g für 20 min bei 4 ° C entfernt, das Pellet mit einer 25 ml Pipette in 25 ml BSA-DMEM (20% w / v) (ca. 25 Mal), und zentrifugiert. Entsorgen Sie die obere Myelinschicht (milchig) mit einem gebrochenen Glaspasteurpipette mit größerem Durchmesser, und dann werfen Sie die BSA-Schicht mit einer normalen Pasteurpipette. Das Pellet in 9 ml DMEM und 1 ml Kollagenase / Dispase (Endkonzentration 1 mg / ml) und 0,1 ml DNAse. Verdauen die Lösung für 1 h bei 37 ° C auf einem Orbitalschüttler bei 180 rpm (Einschränkung: verwenden Sie nicht die Pipette resuspendieren – Zellen können verloren gehen). Während der Verdauung, zentrifugieren Sie das Percoll Lösung bei 3.000 × g für 1 h Einrichten des Dichtegradienten mit einer Ultrazentrifuge bei 4 ° C, mit einer Beschleunigung, wiThout Bremse. 10 ml DMEM zu der verdauten Zellsuspension. Zentrifugieren Sie die Suspension bei 1000 g für 10 min bei 4 ° C. Dann den Überstand verwerfen und das Pellet in 2 ml DMEM. Fügen die resuspendierten Zellen vorsichtig auf der Oberseite des Percoll-Gradienten und Zentrifuge bei 700 × g für 10 min bei 4 ° C ohne Beschleunigung und Bremse. Anmerkung: Die Zellen als Wolke in der Interphase sichtbar sind. Nehmen ca. 12 ml der Zwischenphase mit Zellen mit einer langen sterilen Nadel und legen Sie sie in eine neue 50 ml Falcon mit 5 ml DMEM. Zentrifugieren der Zellen erneut bei 1.000 xg für 10 min bei 4 ° C. Anschließend das Pellet in endothelialen Zellmedium (Verwendung ca. 0,2 ml Medium pro 1 cm 2 Oberfläche der Zellkulturplatte). Entfernen Beschichtungslösung aus beschichteten Zellkulturplatten (siehe Schritt 3.2) und spülen Sie jedes gut mit sterilem PBS in zwei aufeinander folgenden Waschschritte. Pflegen Zellkulturen in EndothelzellenZellmedium bei 37 ° C und 5% CO 2 in einem sterilen Inkubator. Ändern Sie das Medium alle zwei bis drei Tage. Split-Zellen bei 90% Konfluenz.

Representative Results

Unmittelbar nach der Isolierung, murine BMECs und kontaminierenden Zellen zu bilden Konglomerate schwebend in dem Zellkulturmedium (1A, Tag 0). Die Behandlung mit pyrumycin führt zu einer Auswahl von Maus BMECs da sie hohe Effluxtransporter wie P-Glykoprotein, was zu einer relativen Resistenz gegen Toxine exprimieren. Kontaminierenden Zellen sind viel anfälliger für Zytotoxizität 19 pyrumycin. Während des Prozesses der pyrumicin Auswahl kontaminierenden Zellen geben apoptotischen oder nekrotischen Zelltod, während MBMECs beginnen, um das Kollagen IV / Fibronektin beschichtete Zellkulturplatten (1A, Tag 1 und Tag 2) zu befestigen. Bis Tag 5 werden die MBMECs vermehren zu einer Dichte von ca.. 80 bis 90%. Sie werden durch die typische spindelförmiges Aussehen aufweist. Bei Konfluenz werden, bilden sie eine Monoschicht aus dicht gepackten, in Längsrichtung ausgerichteten und nicht-überlappenden Kontakt inhibierten Zellen (1A, Tag 5). Durchpyrumicin Auswahl, eine hohe Reinheit von bis zu 99% MBMEC erreicht wird, wie durch die endotheliale Zellmarker CD31 nachgewiesen (PECAM1; 1B). Die MBMECs bilden dicht versiegelten Monoschichten von Tight Junction-Proteinen verbunden. Nach 7-8 Tagen Kultur bauen die endothelialen Zellschichten bis stabile Werte für den elektrischen Widerstand (Erreichen typische Werte zwischen 20 – 30 Ω x cm 2). Und Kapazität (1C) Zu diesem Zeitpunkt, funktionelle Assays wie zell- Migrationsversuche 3, 20,21 und Durchlässigkeitstests, zB mit Evans Blau oder Dextran, durchgeführt werden. Abbildung 1. morphologischen und funktionellen Eigenschaften von Murine BMECs. (A) Repräsentative Zeitverlauf der kultivierten BMECs durch Übertragungslichtmikro angesehenskopie über 5 Tage. Maßstab gilt für alle Bilder. (B) Immunfluoreszenzfärbung für die endotheliale Zellmarker CD31 an Tag 5. CD31 (grün) und DAPI (blau). (C) Zellen wurden für 5 Tage vorkultiviert und dann in einem automatisierten System für die übertragene Analyse der biophysikalischen Eigenschaften (Widerstand und Kapazität). Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Discussion

Blut-Hirn-Schrankenstörung ist ein Markenzeichen von verschiedenen schädlichen ZNS-Erkrankungen, zB ein Ausfall der BBB bei Multipler Sklerose ausgiebig erleichtert die CNS Invasion durch autoreaktive Immunzellen und ermöglicht die Begegnung und Zerstörung der Oligodendrozyten. Bei ischämischen Schlaganfall die Störung der BHS und die anschließende Bildung von Hirnödem sind kritische Faktoren, die sekundäre Infarktwachstum und die Gesamtüberlebenszeit der Patienten 6 zu beeinflussen. Darüber hinaus kann durch Veränderungen der BBB in abgelegenen Gebieten fokalen ischämischen Läsionen sind in der Lage, weit verbreiteten funktionellen Veränderungen des Gehirns induzieren. Allerdings sind die zugrunde liegenden molekularen Mechanismen weitgehend unbekannt 5. Im Gegensatz dazu die hohe Dichte und Vielfalt der Efflux-Transporter in der funktionellen BMECs reduziert die Konzentration von nützlichen Medikamente wie Chemotherapeutika für die Hirnmalignome oder Antibiotika für Infektionskrankheiten. Daher kann ein tieferes Verständnis der Blut-Hirn-barrier Funktion unter physiologischen und pathophysiologischen Bedingungen erforderlich ist, um pharmakologische Mittel, die in der Lage, spezifisch die Sperrfunktion in der favorisierten Richtung 21 zu entwickeln. Zuverlässig in vitro-Modellen der BHS sind unverzichtbare Werkzeuge, um die Regulationsmechanismen auf BBB studieren.

Viele verewigt Gehirn endothelialen Zelllinien wurden eingerichtet und als in vitro-BBB-Modelle 22 eingesetzt. Diese Zelllinien bieten gewisse Vorteile gegenüber Primär BMECs da sie schneller wachsen und bestimmte BBB Eigenschaften halten über mehrere Passagen. Jedoch kann Endothelzelllinien nicht vollständig ersetzen Primärzellen als wichtige Eigenschaften verändert werden, die mit der Übertragbarkeit der Versuchsergebnisse auf die in vivo-Situation zu vermischen. Zum Beispiel die murine Hirn Endothelzelllinie bEnd.5 drückt nur geringe diskontinuierlich verteilten tight junction-Proteine, was zu hohen Paraczellulären Permeabilität 23. BEnd.3, ein weiteres häufig verwendeten murinen Gehirn Endothelzelllinie zeigt dichte und kontinuierliche verteilt tight junctions, eine hohe transendotheliale Widerstand, mehrere Effluxtransporter und niedrige parazellulären Permeabilität. Allerdings bEnd.3 Zellschichten im Vergleich zu Primär BMECs fehlt eine echte Diskriminierung in Bezug auf die Permeation von bestimmten transzellulären und parazellulären Substraten 24.

In Zubereitungen von primären Zellkulturen, können kontaminierenden Zellen signifikant mit der Gültigkeit der experimentellen Befunde stören. In dem beschriebenen Protokoll wird pyrumicin als selektives Agens verwendet für Endothelzellen hohe Reinheit zu erreichen. Trotzdem ist eine regelmäßige Kontrolle der Qualität der Zellkultur zwangsläufig erforderlich, um für eine zuverlässige Experimenten zu gewährleisten. Es gibt mehrere Verfahren für die Qualitätskontrolle, neben typischen morphologischen Eigenschaften von Endothelzellen (siehe 1A), der transendothelial Widerstand gemessen werden kann oder die Expression des endothelialen Zellmarker, wie CD31 (siehe 1B) und von Willebrand-Faktor (vWF) kann ausgewertet werden.

Die Zahl der Gehirn-Endothelzellen aus einer Mausgehirn isoliert ist relativ gering und für mehrere Versuche zu diesem Zweck eine Zellkultur, haben die Gehirne von mehreren Mäusen gepoolt werden. In unserer Erfahrung, müssen mindestens 10 Mäuse für einen Versuch, die abhängig von den Ressourcen der jeweiligen Tiereinrichtung ein begrenzender Faktor sein könnte verwendet werden. Um Bias oder Störfaktoren zu vermeiden, sollte nur Mäuse mit einer identischen genetischen und ökologischen Hintergrund gebündelt. Im Gegensatz dazu Rinder- und Schweinehirn Endothelzellen Präparate bieten eine große Anzahl von Gehirnendothelzellen in einem Gehirn. Doch neben der unkomplizierten Zucht und Gehäuse, der breite und ständig wachsenden Repertoire an verfügbaren transgenen Mäusen macht primären murinen BMECs als idealeModell zur Blut-Hirn-Schrankenfunktion zu untersuchen.

Mehrere wichtige Erkenntnisse über die Funktionen der BBB und die zugrunde liegenden molekularen Mechanismen wurden aus Studien mit 2D Gewebekultursystemen kommen. Kürzlich, 3D-Kultursysteme entwickelt worden 25, wobei Endothelzellen in eine Collagenmatrix damit sie Lumen und Rohrnetze bilden gelegt. Diese neue Zellkultursysteme erlauben eine noch genauere Reproduktion des Gefäßprozessen im intakten Organismus in vivo. Die Einbindung weiterer Zellen der NVU in 3D-Zellkultursystemen, wie Perizyten und Astrozyten könnte revolutionieren die in vitro-Studium der Blut-Hirn-Schrankenfunktion; ersten Modelle wurden erst kürzlich entwickelt 26.

Es gibt einige Empfehlungen für die Problembehandlung. Zunächst sterilen Arbeits ist wesentlich für die Qualität des Endothelzellenkultur. Zweitens sollte pyrumycin nur für Zelle hinzugefügt werdenin den ersten 2 Tagen Kultivierung verwendete Kulturmedium kann mehr Anwendung erhöht MBMEC Zelltod und geringer Qualität Barrierefunktion führen. Drittens sollte die in diesem Protokoll angewendet Enzyme gemäß den Anweisungen des Herstellers verwendet und gespeichert werden; ansonsten ihre ordnungsgemäße Funktion beeinträchtigt werden könnte. Darüber hinaus könnte die Beschichtung von Zellkulturplatten geändert, wenn Endothelzellen nicht zu befestigen. Konzentrationen von Fibronektin und Kollagen könnte verändert werden oder andere Matrixproteine ​​können zu der Beschichtungslösung zugegeben werden. Schließlich, Alter, Geschlecht, Jahreszeit des Jahres und Umweltbedingungen innerhalb der Tierhaltung sind wichtige Faktoren, die die Qualität MBMEC Isolation und Vergleichbarkeit der Versuche beeinflussen könnten. Es sollte sichergestellt werden, dass die Bedingungen vergleichbar unabhängigen Experimenten sind.

Das beschriebene Protokoll sollte als Grundneuroimmunologischen Methode murine BMECs isolieren berücksichtigt werden. Die isolierten Zellen u sein könnteSED für eine Vielzahl von Anwendungen, weitere Einblicke in BBB Funktion, wie Migrationsassays, Gen- und Proteinexpressionsstudien elektro Auswertungen oder Permeabilität Experimenten zu gewinnen. Wie oben erwähnt, können 3D-Zellkultursysteme von BMECs neue Möglichkeiten, um die komplexen Mechanismen in der Regulation der BBB in Zusammenhang mit der NVU beteiligt Studie liefern. Daher wird die Isolierung von primären Endothelzellen eine unschätzbare Technik im Bereich der BBB Forschung in Zukunft so bleiben.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Arbeit wurde vom Interdisziplinären Zentrum für Klinische Forschung (IZKF) Münster (SEED 03/12, SB), der Deutschen Forschungsgemeinschaft (DFG) unterstützt wird, Cells-in-Motion-Exzellenzcluster (EXC 1003 – CIM), Universität Münster (SB und SGM) und von der Else Kröner-Fresenius-Stiftung (2012_A88 SB und SGM). Wir danken Heike Blum für die hervorragenden Abbildungen.

Materials

bFGF Peprotech 100-18B Basic fibroblast growth factor
BSA Sigma Aldrich A9418 Bovine serum albumine
Collagenase CLS2 Worthington LS004176 High relative level of protease activity
Collagenase-dispase Roche 10269638001 Collagenase from V. alginolyticus, Dispase from B. polymyxa
Collagen IV Sigma Aldrich C0543 From Engelbreth-Holm-Swarm murine sarcoma basement membrane
DMEM Sigma Aldrich D5030 Warm in 37 °C water bath before use
DNAse Sigma Aldrich D4513 Deoxyribonuclease I from bovine pancreas
FCS Sigma Aldrich F6178 Fetal calf serum (also named fetal bovine serum)
Heparin Sigma Aldrich H3393 Anticoagulant
PDS First Link UK Ltd. 60-00-850 Plasma-derived serum
Percoll Sigma Aldrich P1644 Warm to room temperature before use
Pyrumycin Sigma Aldrich P8833 Should only be used in first 2 d of culture
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References

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Ruck, T., Bittner, S., Epping, L., Herrmann, A. M., Meuth, S. G. Isolation of Primary Murine Brain Microvascular Endothelial Cells. J. Vis. Exp. (93), e52204, doi:10.3791/52204 (2014).
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