顆粒球機能の変化を評価するために、イメージベースのフローサイトメトリー技術<em>インビトロ</em

注：このメソッドに記述されているすべての血液採取手順はヘルシンキ宣言に従って行われ、被験者のためのUNT治験審査委員会（IRB）により承認された。すべての被験者は正常な体重、彼らは明らかに健康であることを確実にするために、本発明の方法で使用された血液採取のための書面による同意を与えた、と無病。 1.試薬ソース＆準備使用CD66b-APC（クローン＃のG10F5、DF = 1：50）とCD45-APCeFluor780（クローン＃2D1; = 1 DF：50）このアッセイのために。 注：前に研究するために、CD45とCD66b抗体は、他の白血球から最適希釈はっきり解決顆粒球（CD45 + / 66B +）を決定するために、力価測定した（CD45 + / 66b-）11。染色するための希釈した抗体を添加すると、チューブの最終希釈は875だった。 株式Sを購入し、解凍pHrodo赤い色素で標識された黄色ブドウ球菌生体粒子。 1mの濃度でサスペンド滅菌PBSで1ml当たり生体粒子のグラム。アリコートをアッセイに使用するまで-20℃で凍結生体粒子及びストアを希釈する。 ジヒドロエチジウム（DHE）を溶解し、10グラム/ mlの最終濃度までDMSOに、酸素フリーラジカル（ すなわち、酸化的バースト）の存在下で蛍光エチジウムブロマイドに変換される。 それぞれが200mg / mlおよび17.5ミリグラム/ミリリットルの2段階希釈液の無菌PBSと混合（指定されたアッセイのインキュベーション期間は、次の追加の食作用を防止するために使用される）、N-エチルマレイミド。アッセイでは、15 mMの最終濃度を使用する。 N-エチルマレイミドを解凍する際のN-エチルマレイミドを溶液中に残存しないように、37℃のヒートブロックを使用する。 最後の固定工程の後、核DNAを染色するために7AADを使用しています。添加の前に、滅菌PBSで株式7AAD 1:10に希釈する。 2.血液サンプル採取 O / N速い（>炉冷し）とabstenti以下の研究室に到着する科目を掲載身体活動（> 12時間）から上に。 アルコール準備パッドで皮膚を洗浄後、末梢腕静脈に無菌の採血針を挿入します。 市販のヘパリンナトリウムで満たされている避難チューブに血液を収集します。 収集後、被験者の腕に接着剤包帯を適用します。 10回を混合するために、血液チューブを反転してから分析までロッカーに置きます。 3.食作用アッセイ法解凍黄色ブドウ球菌の生体粒子（RT）、DHE（RT）、及びN-エチルマレイミド（37°C）。 無菌フードでの作業中に4個々の1.2ミリリットルチューブに黄色ブドウ球菌の生体粒子の20 Lを追加します。 生体粒子を含む各チューブにDHEの40 Lを追加します。 静かにチューブの底に試薬を収集するためにベンチ表面にチューブをタップします。 生体粒子とDHEで充填されている各チューブに混合の全血100 Lを追加します。 すべての汚染血液を除去するために綿先端アプリケーターで、チューブの内側の端を拭きます。 血液添加後3サイクルのための血液と試薬を混合するために設定された電子ピペットを用いて血液と試薬を混ぜる。 アイスバケットでアッセイチューブを配置し、光から保護するためにカバーしています。 10、20、および40分間のアッセイチューブをインキュベートする。すべてのアッセイチューブが同時に完了を保証するために40分間の管で始まる。 37°Cビード浴中で解凍N-エチルマレイミド。 ピペットで各アッセイチューブに（1.4で上述）N-エチルマレイミドの15リットル、30分インキュベートする。 ピペットCD66b-APCの10 LおよびCD45-APCeFluor780（1.1において上述）で希釈した抗体の10 Lは、60分間インキュベートする。 ピペットで各アッセイチューブにWBC修正/ RBCの溶解液を750 Lは、60分間インキュベートする。 遠心分離機細胞ペレットを収集するためのアッセイチューブ（400×gで10分）。 真空が残留FLを残して、WBC溶解/ RBCの定着液を吸引細胞ペレットを上記のuid体積（100L）。 ピペット（1.5において上述した）希釈7AAD溶液10 Lと50 LのPBSを各アッセイチューブに。 冷蔵庫で1箔でアッセイチューブ、ラップチューブ上のキャリブレーションビーズ（〜25 L）各アッセイチューブに、場所キャップの低下、および場所を追加します。 サイトメーター画像ベースのフローにサンプルチューブをロードし、事前定義されたパラメータを使用して3000顆粒球イベントの最小収集：オートサンプラー、青（488 nmの、60ミリワット）、赤（640 nmの; 100 NW）、SSC（785 nmのを。 8.5 mW）とレーザー（ 図1）。 図1.取得方法＆テンプレート。サンプルは、画像ベースのフローサイトメーター（A）で得た。買収時には、CD66b-APC対明視野アスペクト比のドットプロットを使う、スパイク、キャリブレーションビーズから分離顆粒球に生成されたG INSPIRE V。100.2.292.0ソフトウェア（B）。赤、（640ナノメートル; 100 NW）、SSC（785ナノメートル、8.5ミリワット）レーザ、5000顆粒球の最小値は青オートサンプラー、（60 mWの488 nm）を使用して、各サンプルについて、取得した。ヒストグラムの数は、レーザーの設定とデータの他の側面収集を監視するために取得中に存在していることに注意してください。これらのヒストグラムはすべてオプションと実験室の標準的な操作手順は、品質管理として、それらを必要とする場合にのみ必要である。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。 4.サンプル収集と分析生の画像ファイル（RIF）に補償行列を適用し、画像化されたファイル（CIF）を補う作成するIDEASソフトウェアの自動ソフトウェア補償ウィザードを使用してください。 IDEASソフトウェアで個々のCIFファイルをロードし、顆粒球サブセットを識別するために、次のプロットを生成します。 </LI> 明視野勾配RMS（ 図2A）のヒストグラムを用いて、焦点にあるとみなされた細胞を同定するための最初のゲートを確立する。参照標準として非刺激対照を使用して、各患者試料について、この決定を行う。 明視野のアスペクト比（幅対セルの高さの比）対明視野領域（ 図2B）のドットプロットを使用して、破片およびダブレットから独立した一細胞に二次プロットを使用する。参照標準として非刺激対照を使用して、各患者試料について、この決定を行う。 細胞のきれいな集団が同定されたら、積極的に顆粒球（CD45 + / 66bが+）を識別するCD66b対CD45（ 図2C）のドットプロットを確立する。 S.のための明るいディテール強度の娘プロット（ 図3）を作成します活性化顆粒球のサブセットを識別するために、対酸化的バースト（DHE、y軸）のために明るい詳細強度球菌 （x軸）。 BRを収集チャンネル1と9のIGHTフィールド画像、チャンネル2で生体粒子、DHEチャンネル4で、7AADチャンネル5で、CD66bチャンネル11、およびCD45で12チャンネルで。 図2.分析テンプレート。この図は、焦点（A）であった細胞を同定するために生成された一連のプロット、単一細胞（B）、顆粒球（C）。追加のプロットは活性化顆粒球対非アクティブな顆粒球の3つのサブセットを同定するために使用した。取得した画像ファイルはすべて分析はアイデアV.6ソフトウェアを使用して完成させた。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。