Neuron migration is regulated by numerous cell autonomous and non-cell autonomous factors. This protocol shows how in utero electroporation can be used to determine whether a phenotype in a transgenic mouse is due to disruption of a cell intrinsic mechanism or impairment of interaction between the neuron and its environment.
Deleção genética utilizando o sistema Cre-Lox em linhas de camundongos transgênicos é uma poderosa ferramenta usada para estudar a função da proteína. No entanto, exceto nos modelos Cre muito específicos, a eliminação de uma proteína em toda uma população tecido ou célula muitas vezes leva a fenótipos complexos resultantes de múltiplos mecanismos de interação. A determinação de se um fenótipo resultados de ruptura de um mecanismo autónomo célula, o que é intrínseco à célula em questão, ou a partir de um mecanismo autónomo não-célula, o que resulta do prejuízo do ambiente da célula que, pode ser difícil de discernir. Para se conhecer a função da proteína num contexto in vivo, in utero electroporação (IUE) permite que a deleção do gene em um pequeno subconjunto de células dentro do córtex desenvolvimento ou alguma outra região do cérebro seleccionado. IUE podem ser utilizados para visar áreas específicas do cérebro, incluindo o telencéfalo dorsal, telencéfalo medial, hipocampo, ou eminência ganglionar. Esta observação facilita of as consequências da deleção do gene da célula autônoma no contexto de um ambiente saudável. O objetivo deste protocolo é para mostrar como IUE pode ser usado para analisar um defeito na migração radial em uma linha de camundongo transgênico floxed, com ênfase na distinção entre os celulares efeitos autônomos autónomos e não celulares de eliminação de proteína. Ao comparar o fenótipo resultante da deleção do gene dentro de todo o córtex contra deleção do gene da IUE mediada por uma população de células limitado, um maior conhecimento sobre a função da proteína no desenvolvimento do cérebro do que pode ser obtido utilizando qualquer técnica de isolamento.
Migração radial é um processo fundamental para o desenvolvimento cortical precoce. Ele depende de uma variedade de factores celulares autónomos, tais como saída correcta mitótico e diferenciação neuronal, da polaridade celular, regulação da dinâmica do citoesqueleto e expressão de receptores transmembranares, bem como não-celulares factores autónomos, tais como a formação do andaime glial radial e secreção de orientação migratória moléculas 1-3. Uma vez que a interrupção de qualquer destes mecanismos pode prejudicar a migração neuronal num modelo de ratinho transgénico 4-8, determinando a causa subjacente a um defeito na migração pode ser um processo complexo e difícil. No útero electroporação (IUE) pode ser utilizado para complementar e simplificar interpretação do fenótipo de um modelo genético de knock-out e assim elucidar mecanismos importantes necessários para a migração radial 7,9-11.
No útero electroporação (IUE) é o processo pelo qual um plasmídeo carryi ng tanto um gene de interesse e um repórter é injectado no ventrículo do cérebro de um embrião de ratinho ou de rato e, em seguida, arrastada para as células que revestem o ventrículo através da utilização de uma corrente eléctrica 12-14. Isto permite ao investigador para analisar o efeito de cima ou para baixo regulação de um gene de interesse no desenvolvimento ou função de neurónios electroporadas. Seguindo IUE, cérebros podem ser processados por imuno-histoquímica 7,9-11, eletrofisiologia 15 ou cultura celular 16,17. A principal vantagem da IUE é que permite a manipulação é altamente específica da expressão do gene. Além disso, IUE pode ser utilizado como alvo uma região específica do cérebro em desenvolvimento por meio de uma corrente dirigida (Figura 2). IUE também pode ser utilizado para atingir um tipo de célula específico através da injecção de plasmídeos que transportam os genes sob o controle de diferentes promotores ou sistemas de activação plasmídeo (expressão do gene da tetraciclina é induzido um exemplo) 10,18-21.
jove_content "> IUE pode ser usado em conjunto com o sistema de excisão de genes mediada por Cre-Lox 7-9,11,22. Um plasmídeo contendo um gene que codifica a mensagem para a proteína Cre pode ser electroporada em um embrião homozigótica para o alelo floxed ( em que as regiões do gene ou ADN específicas estão flanqueados por dois locais loxP para recombinação de ADN mediada Cre). Cre irão então induzir a recombinação do gene de interesse, especificamente em precursores neuronais electroporadas, gerando um knock-out do efeito de floxed allele.The proteína knockdown sobre migração e desenvolvimento dentro dos neurônios individuais neural pode então ser estudado. Eletroporação de Cre induz recombinação em apenas uma pequena população de células afetadas, deixando o ambiente de suporte intacta. Em contraste, a expressão tecido específico de Cre sob o controle de um tipo específico de célula promotor, ocorre ao longo de todo o tecido, de modo que ambos os neuroblastos migram e o ambiente circundante poderia ser afectada. Assim, juxtaposition dessas duas abordagens podem determinar se um determinado defeito migração é devido à célula mecanismos não-autónomos autônomos ou celulares. Migração com defeito em ambos os sistemas experimentais sugerem que o fenótipo resultados observados de um mecanismo autônomo celular; migração normal após a electroporação de Cre com migração defeituoso em um modelo Cre específica para tecidos indica que o gene de interesse está a actuar através de um mecanismo autónomo não-célula.IUE também pode ser usado para realizar experimentos de resgate por electroporating potenciais genes que interagem em knock out animais 7,9,10. Por exemplo, um investigador poderia tentar recuperar um fenótipo migração num modelo transgénico por electroporating um alvo a jusante e determinar se o defeito de migração é corrigida nos neurónios electroporadas. Isto tem a vantagem adicional de que um resgate com êxito indica que a migração normal pode ser restaurada através da manipulação de expressão de proteína numa specas neurónio, embora o ambiente circundante é ainda deficiente para o gene alvo. Mais uma vez, esta abordagem é mais tempo e de custo eficaz do que cruzar ou a geração de linhagens transgênicas, com o benefício adicional de determinar se o mecanismo defeituoso é célula autônoma.
IUE pode ser usado para controlar a migração de neurónios através de electroporação de um plasmídeo repórter em knock out embriões (Figura 4C). Como apenas os neurónios que revestem o ventrículo no momento da cirurgia são electroporadas 17, IUE pode ser usado para seguir os neurónios carregados em um momento específico, com a vantagem da visualização da sua morfologia in vivo.
Finalmente, é possível utilizar IUE alvo regiões do cérebro tais como o telencéfalo ou medial dorsal, hipocampo ou eminência ganglionar (Figura 2). Isso dá aos pesquisadores o poder de investigar a função do gene em um independente de complicações resultado específico áreaPasso da proteína knockdown em estruturas vizinhas.
Proteína do retinoblastoma (pRb), p107 e p130 compreendem a família de proteínas de bolso e são bem reguladores de saída do ciclo celular estabelecida. No entanto, há evidências crescentes de que estas proteínas regulam também aspectos independentes do ciclo celular de desenvolvimento neural. Como mostramos anteriormente, pRb e p107 desempenham um papel crucial em ambos tangencial 4,23 e migração radial 6. Aqui, demonstramos o papel da proteína de bolso pRb e membros da família p107 sobre a migração neuronal 6 para exemplificar o uso de electroporação in utero de Cre num modelo transgénico. Em resumo, IUE fornece uma maneira poderosa de analisar os efeitos de células autônomas de deleção do gene (ou sobre-expressão). Quando combinado com tecido específico nocautear modelos, IUE pode fornecer informações adicionais sobre os mecanismos que controlam a migração neural.
Dois dos principais desafios na realização em electroporations útero são: 1) prevenção de mortalidade do embrião e 2) diminuir a variabilidade entre electroporations. Um dos fatores mais importantes na prevenção de letalidade é a qualidade da agulha, como agulhas grossas infligir mais danos ao embrião. Quando o corte da agulha, de manter a ponta tanto tempo quanto possível, enquanto que permite ainda uma gota visível de 0,1-0,2 uL de fluido apareça na sequência de uma bomba do pé da pá…
The authors have nothing to disclose.
We are indebted to Pierre Mattar and Freda Miller for their assistance with the in utero electroporation and to Noel Ghanem and Bensun Fong for creating diagrams. We thank Linda Jui and Jason G. MacLaurin for excellent technical assistance. Equipment was supported by the Centre for Stroke Recovery.
This work was supported by a scholarship from HSFO and OGS to D.S.S. and a CIHR grant to R.S.S.
Table 1: Equipment and Materials | ||||
Product Name | Company | Catalog Number | Description | |
ECM 830 Square Wave Electroporator | BTX Harvard Apparatus | 45-0052 | Electroporator only – buy cables separately (45-0204) | |
1250FS Footswitch for ECM 830 | BTX Harvard Apparatus | 45-0211 | Foot paddle is necessary for hands-free electroporation | |
Tweezertrodes | BTX Harvard Apparatus | 45-0489 (5mm) 45-0488 (7mm) | Platinum forcep style electrodes | |
Femtojet | Eppendorf | 920010504 | Microinjector | |
Griphead 0 | Eppendorf | 920007414 | Holds the pulled needle | |
Universal Capillary Holder | Eppendorf | 920007392 | Connects griphead to tube | |
Injection Tube | Eppendorf | 920007431 | Connects capillary holder to Femtojet | |
Foot Control | Eppendorf | 920005098 | Foot paddle for hands-free injection | |
Microloader Tips | Eppendorf | 930001007 | Tips for loading the pulled capillary tubes | |
Plasmid Mega Kit | Qiagen | 12181 | 5 QIAGEN-tip 2500, Reagents, Buffers | |
Fast Green FCF | Sigma-Aldrich | F7252-5G | Non-toxic dye | |
Extra Fine Bonn Scissors | Fine Science Tools | 14084-08 | For trimming the needles | |
Bonn Strabismus Scissors | Fine Science Tools | 14084-09 | ||
Graefe Forceps | Fine Science Tools | 11050-10 | Straight | |
Colibri Retractors | Fine Science Tools | 17000-03 | ||
Stapler | Fine Science Tools | 12031-07 | For 7mm clips | |
Castroviejo Needle Holder | Medical Tools | SNH-6737 | Straight, with lock | |
Needle Puller | Narishige | PC-10 | For pulling microcappillaries | |
Microcapillaries | Drummond | 1-000-800 | 0.4 mm inner diameter glass capillary tubes |