Summary

Bestemmelse af Spontan motorisk aktivitet i<em> Drosophila melanogaster</em

Published: April 10, 2014
doi:

Summary

Drosophila melanogaster er anvendelige til at studere genetiske eller miljømæssige manipulationer, der påvirker adfærd, såsom spontan lokomotorisk aktivitet. Her beskriver vi en protokol, der bruger skærme med infrarøde stråler og data analyse software til at kvantificere spontan motorisk aktivitet.

Abstract

Drosophila melanogaster er blevet anvendt som en fremragende model organisme for at studere miljømæssige og genetiske manipulationer, der påvirker adfærd. En sådan adfærd er spontan lokomotorisk aktivitet. Her beskriver vi vores protokol, der bruger Drosophila befolkningsgrupper skærme og et tracking system, der tillader kontinuerlig overvågning af den spontane bevægelsesaktivitet af fluer i flere dage ad gangen. Denne fremgangsmåde er enkel, pålidelig og objektiv og kan anvendes til at undersøge virkningerne af aldring, køn, ændringer i kalorieindholdet af fødevarer, tilsætning af lægemidler eller genetiske manipulationer, som efterligner humane sygdomme.

Introduction

Bananfluer, Drosophila melanogaster, er blevet brugt som en værdifuld model organisme for at studere mekanismerne bag komplekse adfærd, såsom indlæring og hukommelse, social interaktion, aggression, stofmisbrug, sove, sensorisk funktion, frieri og parring 1,2. En adfærd, der er blevet undersøgt gennem flere protokoller er spontan motorisk aktivitet. Negativ geotaxis var en af de første metoder, der er udviklet til måling af Drosophila-aktivitet, og denne protokol indebærer måling af procentdelen af fluer, når en vis højde på hætteglasset efter fluer blev rystet til bunden af beholderen med 1,3. Denne metode har fordelene ved at være enkel, billig, og da den ikke kræver noget særligt udstyr kan udføres i enhver laboratorium. Det har været anvendt som et værdifuldt screeningsværktøj til at studere virkningerne af forskellige genetiske manipulationer på fly mobilitet 3. Men det er tids-og arbejdskrævende ennd har mulighed for bias som følge af variabel omrystning af hætteglassene og menneskelige optagelser.

Den negative geotaxis blev forbedret, ved udviklingen af den hurtige Iterativ Negativ Geotaxis (RING) metode 4,5, der tager fotografier af fluen hætteglas efter ryster af fluerne til bunden. Fordelen ved denne protokol er dens følsomhed og muligheden for at teste et stort antal flyve hætteglas på samme tid. Men denne protokol har stadig potentiale for menneskelige fejl, og kun måler negative geotaxis. Andre laboratorier har brugt simpel observation i kultur hætteglas at bestemme bevægelsesaktiviteten 6.

For nylig flere videooptagelse systemer til måling af flue bevægelsesaktiviteten er blevet udviklet. Én videoovervågning protokol giver tid til tilpasning, før du optager 7. Beskrevet af Slawson et al. Anvender desuden en luft-impuls til at stoppe movement indtil starten af optagelsen, som potentielt kunne være en stressfaktor for dyrene 7. Denne metode giver information om gennemsnitshastighed, max hastighed, tid tilbringer i bevægelse, osv. En anden tredimensionel tracking system måler den maksimale hastighed af individuelle fluer under ~ 0,2 sekunder i fri flugt start 8.. Et tredimensionalt videoovervågning protokollen bruger fluer udtrykker GFP og flere kameraer udstyret med filtre, der muliggør påvisning af fluorescens til at bestemme flue mobilitet 9. Fluer i denne protokol tendens til at udvise cylindriske flyvning mønstre, som er potentielt på grund af formen af Drosophila kultur hætteglas 10. Denne fremgangsmåde blev forbedret ved hjælp af en kuppel, der tillader måling af spontan bevægelse af to fluer 11. En high-throughput metode, der bruger et kamera til automatisk at overvåge og kvantificere de individuelle og sociale adfærd Drosophila er også blevet beskrevet 12. Zou etal. udviklet et system, adfærdsmæssige monitor (BMS), der bruger to computer-assisteret kameraer til at optage levetid adfærd og bevægelser såsom hvile, bevæger sig, flyvende, spise, drikke eller dødsfald blandt individuel tephritid bananfluer 13. Flere andre video-systemer er blevet udviklet til at overvåge flyve adfærdsmæssige aktivitet 14,15.

Her beskriver vi en fremgangsmåde til kvantificering af Drosophila aktivitet, der udnytter befolkningsgrupper skærme. Disse skærme er opstaldet i temperatur-og fugtigheds-kontrollerede inkubatorer ved 25 ° C på en 12 timers dag-nat lys cyklus. Hver population skærm har infrarøde stråler placeret i ringe placeret på tre forskellige højder. Hver gang en flue bevæger sig hen over ringene afbryder den infrarøde stråle, der registreres af en mikroprocessor, som selvstændigt registre og tæller aktiviteten af ​​fluer inde i hætteglasset. En mikroprocessor uploader den samlede aktivitet inden for hætteglasset til computeren ved brugerdefineret intervaEr det kunne variere fra 1 sekund til 60 minutter. Den her beskrevne metode giver rigelig tid til fluer til at tilpasse sig det nye miljø og giver mulighed for samtidig måling af spontan motorisk aktivitet af så mange som 120 populationer af fluer. Derudover beskriver vi forberedelse af fødevarer, flyve vedligeholdelse, opsætning af mobilitet befolkningsgrupper skærme i temperaturkontrollerede inkubatorer og potentielle faktorer, der kan påvirke resultatet. Denne metode kan bruges til at undersøge, hvordan forskellige miljømæssige eller genetiske modifikationer påvirker spontan motorisk aktivitet af fluerne.

Protocol

Bemærk: Den Canton-S stammen er den standard vildtype baggrund linje opnået fra Bloomington Stock Center. 1.. Fødevarer Forberedelse og opskrift til 1.000 ml Food Bemærk: Dette afsnit beskriver den protokol til tilberedning af mad. Store metal potter bruges til at forberede omkring 18 L af fødevarer på et tidspunkt. Den her beskrevne protokol nedprioriteret og bruger 1.000 ml H 2 O. Fødevarer er autoklaveret to gange. Bland 113 g sukk…

Representative Results

Den spontane bevægelsesaktivitet i Drosophila afhænger flue køn (figur 3A), indhold af fødevarer (figur 3B) kalorie og lys / mørke-cyklus. Når lyset er slukket flyve aktivitet falder dramatisk. 3A illustrerer 24 timer bevægelsesaktiviteten optagelser af mandlige og kvindelige fluer. En stjerne på x-aksen markerer det tidspunkt, hvor lyset blev slukket og overgangen til mørke cyklus. 3B illustrerer standardafvigelsen mellem den ge…

Discussion

Spontan bevægelsesaktivitet af fluer er påvirket af mange faktorer såsom alder, genetisk baggrund og køn 2,13,18,19. Derudover kan miljømæssige faktorer såsom kalorieindholdet af mad, omgivelsernes temperatur, tilsætning af forskellige stoffer og dag / nat lyscyklus påvirke flyve aktivitet. For eksempel mandlige fluer på samme alder har en højere spontan fysisk aktivitet i forhold til kvinder (figur 1). Derfor bør fluer af samme alder og køn sammenlignes med hinanden. Ved unders?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af en bevilling fra National Institutes of Health (AG023088 til BR).

Materials

Sucrose FCC Food Grade 100 LB, Fisher Scientific MP Biomedicals ICN90471380
Brewer’s Yeast Fisher Scientific MP Biomedicals ICN90331280
Drosophila Agar Fine SciMart DR-820-25F
Cornmeal Fisher Scientific MP Biomedicals ICN90141125
Methyl4-hydroxybenzoate, tegosept Sigma H5501-5KG
EtOH Pharmco-AAPER 111000200
Active Dry Yeast Fisher Scientific ICN10140001
Fly CO2 pad LabScientific BGSU-7
Stereo Microscope Olympus SZ40
Drosophila carbon dioxide (CO2) tank Airgas UN1013
Small paint brush for pushing the flies
Shell vial wide Fischer Scientific AS519
Buzzplugs for wide plastic vials Fischer Scientific AS275
Glass vials (25x95mm) Fischer Scientific Kimble 60931-8 AS-574
Sponge plugs for glass vials SciMart DR-750
Drosophila Food Dispenser Applied Scientific (Fischer Scientific) AS780Q
DPM Drosophila Population Monitor Trikinetics Inc.
DC Power Supply with line cord Trikinetics Inc.
PSIU9 The Power Supply Interface Unit Trikinetics Inc.
Telephone cables and 5 way splitters Trikinetics Inc.
Universal Serial Bus (USB) hardware Trikinetics Inc.
Macintosh or Windows PC with UCB port
DAMSystem308X Data Acquisition Software for Macintoch OSX (Intel) www.trikinetics.com
DAMSystem308 Data Acquisition Software for Windows PC (XP/Vista/7) www.trikinetics.com
DAMFileScan108X software for Macintosh www.trikinetics.com
DAMFileScan108X software for Windows PC (XP/Vista/7) www.trikinetics.com
USB software (PSIUdrivers.zip) www.trikinetics.com
DAMSystem Notes 308 (http://www.trikinetics.com/Downloads/DAMSystem%20Notes%20308.pdf

References

  1. Ali, Y. O., Escala, W. E., Ruan, K., Zhai, R. G. Assaying Locomotor, Learning, and Memory Deficits in Drosophila Models of Neurodegeneration. J. Vis. Exp. 49, 2504 (2011).
  2. Jones, M. A., Grotewiel, M. Drosophila as a model for age-related impairment in locomotor and behaviors. Exp. Gerontol. 46 (5), 320-325 (2011).
  3. Grotewiel, M. S., Martin, I., Bhandari, p., Cook-Wiends, E. Functional senescence in Drosophila melanogaster. Aging Res. Rev. 4 (3), 372-397 (2005).
  4. Gargano, J. W., Martin, I., Bhandari, P., Grotewiel, M. S. Rapid Iterative Negative Geotaxis (RING): a New Method for Assessing Age-related Locomotor Decline in Drosophila. Exp. Gerontol. 40 (5), 386-395 (2005).
  5. Nichols, C. D., Bechnel, J., Pandey, U. B. Methods to assay Drosophila behavior. J. Vis. Exp. 61, 3791 (2012).
  6. Long, T. A., Rice, W. R. Adult locomotor activity mediates Intralocus sexual conflict in a laboratory-adapted population of Drosophila melanogaster. Proc. Biol. Sci. 274 (1629), 3105-3112 (2007).
  7. Slawson, J. B., Kim, E. Z., Griffith, L. C. High-resolution video tracking of locomotor in adult Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. 24 (24), 1096 (2009).
  8. Marden, J. H., Rogina, B., Montooth, K. L., Helfand, S. L. Conditional tradeoff between aging and organismal performance of Indy long-lived mutant flies. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 100 (6), 3369-3372 (2003).
  9. Grover, D., Yang, J., Tavaré, S., Tower, L. Simultaneous tracking of fly movement and gene expression using GFP. BMC Biotechnol. 8, 93 (2008).
  10. Grover, D., Yang, J., Tavaré, S., Tower, J. Simultaneous tracking of movement and gene expression in multiple Drosophila melanogaster flies using GFP and DsRED fluorescent reporter transgenes. BMC Res Notes. 2 (58), 1-11 (2009).
  11. Ardekani, R., et al. Three-dimensional tracking and behaviour monitoring of multiple fruit flies. J. R. Soc. Interface. 10 (78), (2013).
  12. Branson, K. A., Robie, A. A., Bender, J., Perona, P., Dickinson, M. H. High-throughput ethomics in large groups of Drosophila. Nat Methods. 6 (6), 451-457 (2009).
  13. Zou, S., et al. Recording Lifetime Behavior and Movement in an Invertebrate Model. PLOS One. 6 (4), (2011).
  14. Valente, D., Golani, I., Mitra, P. P. Analysis of the trajectory of Drosophila melanogaster in a circular open field arena. PLoS One. 2 (10), 1083 (2007).
  15. Inan, O. T., Marcu, O., Sanchez, M. E., Bhattacharya, S., Kovacs, K. T. A portable system for monitoring the behavioral activity of Drosophila. J Neurosci. Methods. 202 (1), 45-52 (2011).
  16. Parashar, V., Rogina, B. dSir2 mediates the increased spontaneous physical activity in flies on calorie restriction. Aging. 1 (6), 529-541 (2009).
  17. Kaneuchi, T., Togawa, T., Matsuo, T., Fuyama, Y., Aigaki, T. Efficient measurement of H2O2 resistance in Drosophila using an activity monitor. Biogerontology. 4 (3), 157-165 (2003).
  18. Carey, J. R., et al. Age-specific and lifetime behavior patterns in Drosophila melanogaster and the Mediterranean fruit fly, Ceratitis capitata. Exp. Gerontol. 41 (1), 93-97 (2006).
  19. Rhodenizer, D., Martin, I., Bhandari, P., Pletcher, S. D., Grotewiel, M. Genetic and environmental factors impact age-related impairment of negative geotaxis in Drosophila by altering age-dependent climbing speed. Exp. Gerontol. 43 (8), 739-749 (2008).
  20. Osterwalder, T., Yoon, K. S., White, B. H., Keshishian, H. A conditional tissue-specific transgene expression system using inducible GAL4. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 98 (22), 12596-12601 (2001).
  21. Dietzl, G., et al. A genome-wide transgenic RNAi library for conditional gene inactivation in Drosophila. Nature. 448 (7150), 151-156 (2007).
  22. Chiu, J. C., Low, K. H., Pike, D. H., Yildirim, E., Edery, I. Assaying locomotor activity to study circadian rhythms and sleep parameters in Drosophila. J. Vis. Exp. 43, 2157 (2010).
  23. Pfeiffenberger, C., Lear, B. C., Keegan, K. P., Allada, R. Locomotor activity level monitoring using the Drosophila Activity Monitoring (DAM) System. Cold Spring Harbor Protoc. 11, (2010).
  24. Pfeiffenberger, C., Lear, B. C., Keegan, K. P., Allada, R. . Processing circadian data collected from the Drosophila Activity Monitoring (DAM) System. Protoc. 11, (2010).
  25. Ardekani, R., Tavaré, S., Tower, J. Assessing senescence in Drosophila using video tracking. Methods Mol. Biol. 965, 501-516 (2013).

Play Video

Cite This Article
Woods, J. K., Kowalski, S., Rogina, B. Determination of the Spontaneous Locomotor Activity in Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (86), e51449, doi:10.3791/51449 (2014).

View Video