Dieses Protokoll Bewertungen Elektro Zell-Substrat-Impedance Sensing, eine Methode zur Quantifizierung der Zellhaftung, Proliferation, Motilität und zellulären Antworten auf pharmakologische und toxische Stimuli erfassen und analysieren die Impedanzspektrum von adhärenten Zellen. Nachweis endothelialer Permeabilität und Bewertung der Zell-Zell-und Zell-Substrat-Kontakte sind hervorgehoben.
Elektro Zell-Substrat-Impedance Sensing (ECIS) ist ein in vitro-Impedanz-Messsystem, das Verhalten der Zellen in adhärenter Zellschichten zu quantifizieren. Zu diesem Zweck werden die Zellen in speziellen Kulturkammern auf der gegenüberliegenden, kreisförmigen Goldelektroden entwickelt. Ein konstanter kleiner Wechselstrom zwischen den Elektroden und dem Potential an gemessen aufgebracht. Die isolierenden Eigenschaften der Zellmembran erzeugen einen Widerstand gegenüber dem elektrischen Stromfluss zu einer erhöhten elektrischen Potentials zwischen den Elektroden. Messung zellulärer Impedanz in dieser Weise ermöglicht die automatisierte Untersuchung der Zellhaftung, das Wachstum, die Morphologie, Funktion und Motilität. Obwohl die ECIS Messung selbst ist unkompliziert und leicht zu erlernen, ist die zugrunde liegende Theorie komplexer und Auswahl der richtigen Einstellungen und richtige Analyse und Interpretation der Daten ist nicht selbstverständlich. Doch eine klare Protokoll beschreibt die einzelnen Schritte von der experimentellenDesign Vorbereitung, Durchführung und Analyse des Experiments ist nicht verfügbar. In diesem Artikel werden die Grundmessprinzip sowie mögliche Anwendungen werden experimentelle Aspekte, Vorteile und Grenzen der ECIS-System diskutiert. Eine Führung für das Studium der Zellbindung vorgesehen, die Verbreitung und Vermehrung; Quantifizierung des Zellverhaltens in einer konfluenten Schicht in Bezug auf die Barrierefunktion, Zellbeweglichkeit, die Qualität der Zell-Zell-und Zell-Substrat-Adhäsion und Quantifizierung der Wundheilung und Zellreaktionen auf vasoaktive Reize. Repräsentative Ergebnisse sind auf Basis menschlichen mikrovaskulären (MVEC) und humanen Nabelschnur-Endothelzellen (HUVEC) diskutiert, sind aber für alle anhaftenden wachsenden Zellen.
ΩΩΩHere präsentieren wir Elektro-Zell-Substrat-Impedance Sensing, als ECIS, spezifische Methode zur Messung und Analyse der Impedanzspektrum von adhärenten Zellen in Kultur 1 bekannt. Ziel dieses Protokolls ist es, einen allgemein gültigen Leitfaden für die Nutzung dieser besonderen Art der Impedanz basierend zellulären Assays bieten und Protokolle für einige der wichtigsten Funktionen von der ständig wachsenden Zahl von Anwendungen. Der Fokus wird auf die Untersuchung der Zellproliferation, Barrierefunktion, Zellverbindungen und Zellbeweglichkeit sein.
Seit ECIS und die damit verbundenen Modell, um die Impedanzspektroskopie Daten in biologisch relevanten Parameter Transformation wurde in seiner jetzigen Form für die wissenschaftliche Gemeinschaft durch Giaever und Keese 1991 2 eingeführt wurde, wurde oft als ein System für die Messung des TEER (trans bezeichnet -epithelialen elektrischen Widerstand), die nicht korrekt. Die Unterschiede scheinen auf den ersten marginal, abersind für die Interpretation der Daten. Für klassische TEER-Messungen werden die Zellen auf durchlässigen Filter sich zu parazellulären Transportmechanismen, die von epithelialen tight junctions oder Endothelzellen Adhärenzverbindungen 3 dominiert werden, zu charakterisieren. Üblicherweise werden zwei Elektroden über und unter dem Filter positioniert ist verwendet, um eine Gleichstrom (DC) fließt über die Zellschicht und zwei anderen Elektroden, um den resultierenden Spannungsabfall messen, 4 anzuwenden. Der elektrische Widerstand wird unter Verwendung des Ohmschen Gesetzes, das eine numerische Darstellung der Qualität der Zellbarriere ermöglicht berechnet.
ECIS folgt diesem Grundprinzip und erweitert ihn. Im ECIS System werden Zellen auf gegenüberliegenden, kreisförmigen Goldelektroden, die in der Unterseite des speziellen Zellkulturschalen eingebettet sind gewachsen. Die Anzahl der Elektroden pro Kulturvertiefung ist variabel, abhängig von der Anwendung und die Elektroden einen Standarddurchmesser von 250 &mgr; m, in einigen Fällen eine größere Gegenelektrodewird verwendet, um die Schaltung zu vervollständigen. ECIS verwendet einen konstanten Wechselstrom (AC) von 1 &mgr; A mit einer gegebenen Frequenz statt eines Gleichstrom. Die Impedanz wird von den entsprechenden Änderungen der Spannung (in mV) zwischen den Elektroden berechnet. ECIS bietet die Möglichkeit, die Impedanz über einen Bereich von Frequenzen frequenzabhängige zelluläre Eigenschaften, was mehrere Vorteile hat über TEER und werden im Detail in diesem Artikel erläutert studieren messen. Zunächst messen komplexe Impedanz ermöglicht Trennung der Gesamtimpedanz in Zellbarriere Widerstand und Zellenkapazität. Zusätzlich kann durch die Aufnahme von Daten auf mehreren Frequenzen und Anwenden eines mathematischen Modells, kann man zwischen junctional Impedanz (Dichtigkeit der Zell-Zell-Kontakte) und Impedanz durch Zell-Substrat-Wechselwirkungen (Abstand der basalen Zellmembran unterliegenden Matrix) sowie verursachte differen der Beitrag der Zellmembrankapazität. Zweitens kann die Zellproliferation und die Beweglichkeit beurteilt werden, da die Zells in direktem Kontakt mit den Elektroden. Drittens, Substrat und Elektroden sind ausreichend dünn, um für Hellfeld und Phasenkontrast-Mikroskopie zu ermöglichen.
Grundlagen der Impedanzmessungen: Die komplexe Impedanz
Die Grundlage für die Messung der elektrischen Impedanz der biologischen Objekte (z. B. Zellen) ist Ohmschen Gesetz ein EUP-Prinzip, das die Beziehung zwischen dem Widerstand (R) beschreibt, (I) und Spannung (U) in einer elektrischen Schaltung zu einer gegebenen Zeit (t).
Einsetzbar in Gleichstromkreis: R (t) = U (t) / I (t)
Bei der Arbeit im Wechselstromsystem, Strom und Spannung unterscheiden sich nicht nur in ihrer Amplitude, sondern auch in ihrer Phase (φ). Jetzt ist der Widerstand nicht mehr ausreicht, um diese Beziehungen zu beschreiben. Stattdessen wird die komplexe Impedanz (Z) oder in den meisten Fällen die Größe der Impedanz (| Z |) verwendet werden, welche die zuvor beschriebenen ohmschen Widerstand und Blindwiderstand (X), die WiederErgebnisse aus AC fließen durch die Kondensatoren und Induktivitäten Antreiben der Phasenverschiebung zwischen Spannung und Strom 5.
Einsetzbar in Wechselstromkreis: | Z (f) | = √ (R 2 + X (f) 2)
φ = arctan (X / R)
Bei der Durchführung von Impedanzmessungen an intakten Zellen, aufgrund der Eigenschaften der Membran wirken Zellen als eine Parallelschaltung von Widerstand und Kondensator. Hier Widerstand repräsentiert den Widerstand gegen Stromfluss, während die Kapazität (C) beschreibt die Trennung der elektrischen Träger in dem isolierenden Doppelschicht der Zellmembran, die Polarisation der Zelle bewirkt. X ist dabei durch die kapazitiven Eigenschaften der Zellmembran dominiert.
X (f) ≈ (2 * pi * f * C Zelle) -1
Da X frequenzabhängige Variation der Messfrequenz ermöglicht Untersuchung der verschiedenen funktionellen und strukturellen Eigenschaften der Zelle. Die ECIS Gerät misst sowohl R und X, die eine Berechnungvon | Z |, C und φ.
Quantifizierung der gesamten Zellschichten mit Impedanzspektroskopie: Das elektrische Ersatzschalt.
Wie zuvor erläutert, wenn eine Zelle in ein elektrisches Feld gebracht wird, zeigt es Eigenschaften von passiven elektronischen Bauelementen. Wenn nun, statt einer einzelnen Zelle eine gesamte Zellschicht auf der Oberseite der Elektroden gewachsen und mit Zellkulturmedium ergänzt wird untersucht, das einfache Modell des Widerstands und des Kondensators muss auf einer gesamten elektrischen Netz erweitert werden. In diesem sogenannten Ersatzschaltwiderstand des Kulturmediums (R M) und Kapazität (C Geräte) und Widerstand (R Electr) Charakterisierung der Elektroden / Elektrolyt-Wechselwirkung zu berücksichtigen 3,6 ist.
Eine vereinfachte, allgemeine Beispiel einer solchen Ersatzschaltung für eine haft wachsenden Zellschicht kann in 1 gefunden werden. Der Vorteil eines solchen mathematischen aNSATZ auf ein biologisches System zu beschreiben, ist, dass diese Schaltungen ad libitum verfeinert und auf die spezifischen experimentellen Fragen, beispielsweise durch Berücksichtigung Impedanz von intrazellulären Organellen verursacht oder Einflüsse von Zell-Zell-(R Junc) und Zell-Substrat-Adhäsion zu unterscheiden eingestellt werden (R Sub) auf Gesamtimpedanz 7,8. Dennoch das Ziel für die Modellierung sollte immer sein, die kleinste Anzahl von Elementen beschreiben alle Funktionen des gemessenen Impedanzspektrum um sinnvolle Zusammenhänge zu ermöglichen verwenden.
Fig. 1 ist. Schematische Darstellung des ECIS-System und Vertreter Ersatzschaltung für eine haftende Schicht wachsenden Zellen. A) Querschnitt eines ECIS Kultur auch. Die Zellen werden auf der Oberseite der Mess-und Gegenelektrode und eine wachsendewieder mit Kulturmedium bedeckt. Die Elektroden sind mit einem Lock-in-Verstärkers verbunden ist und ein Wechselstromsignal über einen 1 M &OHgr;-Widerstand angelegt, um eine Konstantstromquelle zu schaffen. Stimuli können direkt zu dem Kulturmedium bei jedem Zeitpunkt. B) ECIS misst die Summe der einzelnen Beiträge zu der Impedanz hinzugefügt werden. Widerstand des Kulturmediums (R M) sowie Impedanz der Elektrode / Elektrolyt-Grenzfläche, die der Einfachheit halber als eine Parallelschaltung aus einem Widerstand (R Geräte) und einem Kondensator (C Geräte) und auch die elektrischen Eigenschaften vorgestellt verursacht der Zellmembran durch eine Parallelschaltung von Widerstand (R Zelle) und Kapazität (C Mem) beschrieben, müssen alle berücksichtigt werden. R Zelle ist variabel, da sie abhängig von der Zelldurchlässigkeit gegenüber dem Strom ist. Die Ersatzschaltung erweitert und verfeinert ad libitum werden. Als Beispiel junctional (R Junc) alssowie subendothelialen (R Sub) Beständigkeit wurden an die Schaltung aufgenommen. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
Impedanz-Parameter und deren biologische Bedeutung
Die beiden von Impedanzmessungen abgeleitet direkte Parameter Widerstand und Kapazität der Zellen. Widerstand steht für Qualität und Funktion der Zellbarriere und berücksichtigt den Widerstand gegen Para-und transzellulären Stromfluss daher. Kapazität bietet ein Gesamtmaß der Elektrodenabdeckung. Die Besonderheit der ECIS ist, dass mit Hilfe von Ersatzschaltungen und Modellierung diese globale Parameter Einblicke auf viele weitere zelluläre Eigenschaften, einschließlich der Zell-Zell-und Zell-Substrat-Adhäsionen, die später in diesem Artikel besprochen werden.
Vor dem Start: Experimentelle consideVerpflegung
Messaufbau – Der Aufbau besteht aus mehreren Komponenten: ECIS-Gerät mit Messelektronik, PC für die Datenerfassung; Array Halter für die 8 – oder 96-Loch-System, ECIS-Arrays und der Zellkultur der Wahl. Anordnungshalter muss in einem Inkubator platziert und mit dem ECIS Vorrichtung außerhalb des Inkubators angeschlossen werden. Der PC muss mit der ECIS-Software (1.2.123.0 14. Februar 2013) ausgerüstet und mit der ECIS-Gerät angeschlossen werden.
Array-Auswahl – Es gibt eine ständig wachsende Vielfalt der ECIS-Arrays, für mehrere Anwendungen. Die Standardfelder sind 8W1E und die 8W10E Arrays, die von 8 Kulturvertiefungen (durch W angegeben), die 1 oder 10 Messelektroden (durch E angedeutet), die jeweils zusammengesetzt sind. Eine große Gegenelektrode vervollständigt die Schaltung, aber die Impedanz bei der tatsächlichen Messung 6 im wesentlichen vernachlässigbar. Die Standard 8-Well-Array Halter kann ein Gastgeber zweirrays, was zu einer Gesamtzahl von 16 Kulturmulden. Die Goldelektroden 50 nm dick, mit einer isolierenden Schicht abgegrenzt und montiert entweder eine optisch klare Lexan Polycarbonat-Substrat oder eine Leiterplatte (PCB) sind. Die Leiterplatten-Arrays sind robuster und kostengünstiger. Die transparenten Folien ermöglichen eine leichte und Immunfluoreszenz-Mikroskopie. Was zu beachten ist, dass der 1E-Array steigert Schwankungen des Widerstandssignals von Zellbewegungen verursacht und für die Wundheilung Studien erforderlich. Außerdem Einzelelektroden erlauben Korrelation der elektrischen und optischen Signalen. In der Multi-Elektroden-Arrays, wird das Signal über mehrere Elektroden gemittelt werden, die aufgrund der erhöhten Messbereich umfasst mehrere Zellen in der Messung begrenzt Vorspannung der Daten durch ungleichmäßige Inokulierung und Züchtung der Zellen und reduziert Unschärfe des Signals aufgrund von Zell Bewegungen. Daher sind die Multielektrodenarrays nützlich, um die Zellproliferation und der Barrierebildung zu untersuchen. NebenStandardanordnungen gibt es spezielle Anordnungen für die Anwendung der Scherspannung 9 zur Verfügung, um die Chemotaxis 10 zu studieren, Zellmigration und Proliferation als auch 96-Well-Platten für Hochdurchsatz-Screenings. Zum Schluss ist das Array verwendet werden stark von wissenschaftlichen Fragestellung und Zelltyp und sollte ausgewählt und sorgfältig geprüft werden.
Messfrequenz – Die Modellierung von Rb und Alpha (siehe Datenanalyse) erfordert Multifrequenzmessungen (MFT). Ansonsten kann die Impedanz über die Zeit bei einem Zelltyp spezifischen Frequenz (SFT) gemessen werden, mit dem Vorteil, dass die Daten mit einer höheren zeitlichen Auflösung erfasst werden. Die empfindlichsten Messfrequenz für einen bestimmten Zelltyp kann durch Frequenzscans gefunden werden. Beim Plotten Impedanz bzw. Widerstand gegen die Frequenz in einem Log-Log Graph der Frequenz, wo der Unterschied zwischen zellfreie und zellbedeckten Elektrode größten ist, ist die Frequenz, bei der die Zellen zu blockieren ter Strom am effektivsten. Im Falle von Endothelzellen (EC) diese Frequenz bei etwa 4 kHz.
Aussaatdichte – wie in jedem normalen zellbasierten Experiment Aussaatdichte hängt von der wissenschaftlichen Problem. Bei der Untersuchung von Adhäsion und Ausbreitung oder Barrierebildung sollte Endothelzellen mit einer hohen Dichte von 40.000-60.000 Zellen / cm 2 ausgesät werden, um eine konfluente garantieren, stabile Barriere nach 48 Stunden. Wenn der Fokus des Experiments auf die Proliferation, sollte Endothelzellen mit einer niedrigen Dichte von etwa 2.000-10.000 Zellen / cm 2 ausgesät werden.
ECIS ist ein ausgezeichnetes Werkzeug für das Screening von Zelleigenschaften und das Verhalten als auch für die Quantifizierung der Wirkungen von bekannten und unbekannten Substanzen. Wodurch die Zellen unter Standardkulturbedingungen gehalten wird, kann die Impedanz kontinuierlich mit einer hohen zeitlichen Auflösung und überwacht, um optische Signale korreliert werden. So wird der optimale Zeitpunkt für die Zellmanipulationen auf der Basis der morphologischen und funktionellen Zellstatus ausgewählt werden. Leider kommt diese hohe Messauflösung mit dem Preis, dass kleine Veränderungen in der Temperatur, pH-Wert oder mechanische Stimulation von Zellen (Mediumwechsel) wird die Impedanzsignal unmittelbar beeinflussen.
Die Anwendung des kleinen Messstrom zu den Zellen macht die nicht-invasive Messung ECIS, zerstörungsfreie und markierungsfreie, sondern als Ergebnis nur passive bioelektrischen Eigenschaften gemessen werden können (keine Aktionspotentiale). Ein wesentliches Merkmal ist, daß eine Anzahl von Parametern kann der sein, aus einer einzigen Messung IVED, die Kombination der Informationen aus mehreren klassischen Tests wie Durchlässigkeit oder Wundheilung Assays. Hier insbesondere interessanter Aspekt ist, dass mathematisch modelliert Daten können verwendet werden, um Änderungen im Widerstand und Kapazität zu erforschen und beziehen sie verschiedene Zellstrukturen (z. B. Zell-Kontakte oder Zellmembran) werden. Wichtig zu beachten ist, dass der Impedanzspektroskopie liefert immer einen gemittelten Signale von allen Zellen, die auf der Sensorelektrode, die nicht für die Untersuchung von Einzelzellen zulässt und das mathematische Modell ist nur in konfluenten Zellschichten. Daher sollte Endothelzellen in der konfluenten Zustand für mindestens einen Tag vor der für die Modellierung verwendet werden, um reifen Zell-Adhäsionen und ruhenden Zellen zu gewährleisten statt. Ebenso sollten elektrische Wunden nur angewendet werden, um Zellschichten konfluent mit mehreren kurzen Verwundung Impulse mit hohen Frequenzen, um eine optimale Effizienz zu erreichen Verwundung und Beschädigung der Elektroden zu verhindern.
jove_content "> auf die maximale Menge an Informationen von einer ECIS Messung zu erhalten, wie in jedem Assay mehrere Parameter, wie die Kombination von Array-Substrat, Beschichtung und Aussaatdichte für die einzelnen Zelltyp müssen getestet und vor dem Experiment zu optimieren.Eine wesentliche Einschränkung der ECIS ist, dass die Messung nicht liefern direkte Informationen auf molekularer Ebene. Somit sind ECIS Messungen gewöhnlich informativsten zu Beginn einer Versuchsreihe zu helfen assoziieren ist, ein Problem mit zellulären Strukturen oder Eigenschaften und erhebliche Eingabe für die Erzeugung einer Hypothese überprüfbar. Daher ist der modulare Aufbau der ECIS bietet ein breites Spektrum von Anwendungen mit der Möglichkeit für maßgeschneiderte Arrays. Die jüngsten Entwicklungen zeigen eine Reihe künftig auf hohen Durchsatz Impedanz-Screenings für die Zellproliferation und elektrische Verletzung und den Vormarsch der spezielle Strömungs Arrays für die Simulation der in vivo </em> Schubspannung mit unterschiedlichen Strömungsprofile.
Weitere Literatur
Bitte auf der Webseite von Applied Biophysics (www.biophysics.com) für Anwendungshinweise, Webinare und eine detaillierte Liste der Veröffentlichungen, die den gesamten ECIS Spektrum verwiesen.
The authors have nothing to disclose.
Die Autoren bedanken sich bei Dr. Charles Keese, Dr. Christian Renken, Christian Dehnert (Applied Biophysics Inc.) und Dr. Ulf Radler (ibidi GmbH) für ihre Beratung zu danken, zu helfen und die fruchtbaren Diskussionen während der Erstellung dieses Manuskripts. Weiterhin möchten wir an Jan van Bezu für seine hervorragende technische Unterstützung danken.