Изоляция миелоидных дендритных клеток и эпителиальных клеток из человеческого тимуса

Тимус является органом, в котором происходит развитие Т-клеток. Его относительное и абсолютное размер уменьшается с возрастом, когда она становится последовательно заменены жира, хотя все еще активность тимуса могут быть обнаружены в пожилом возрасте. Его значение для иммунной реакции было продемонстрировано в начале 1960-х годов ^1.

Ячейка репертуар T имеет форму при взаимодействии Т-клеточных рецепторов с пептид-МНС комплексов на разных видов тимуса APC, которые обеспечивают выживание или смерть сигналы к развитию Т-клеток, в результате чего в значительной степени функциональной и само-толерантный Т-клеток репертуара ^2.

Приблизительно 98% клеток в человеческом тимуса разрабатывают Т-клетки, называемые тимоцитов. Оставшиеся 2% состоят из нескольких различных типов клеток, в том числе различные TEC (корковый, медуллярный, субкапсулярной), миелоидных и плазмацитоидных DC (MDC, PDC), макрофаги, В-клетки, зрелые повторно циркулирующих Т-клетки, гранулоциты, еibroblasts, эндотелиальные клетки и очень редкие эпителиальные клетки с фенотипом экспрессии напоминающий клеток из других тканей, таких как мышцы, нейроны и респираторном эпителии (рис. 1). Из них TEC и DC основные виды APC найдено в нормальном тимусе. В последние годы, очистка этих типов APC для культуры и молекулярной профилирования приобрел все больший интерес. Из-за их низкой частоты, изоляция любой из этих типов клеток для детального анализа требует эффективного, воспроизводимый и экономичную процедуру. Метод, представленный здесь является модификацией от ранее опубликованных исследований ^3,4.

Как и в любой другой ткани, извлечение клеток из тимуса может быть достигнуто путем дезагрегирования ферментативно клетка-клетка и клетка-сетей матрицы взаимодействия, с тем чтобы получить суспензию единичных клеток. Есть определенные параметры, такие как хорошая эффективность диссоциации, выход клеток, жизнеспособность клеток и удержания клеток сПоверхность маркеры, которые имеют решающее значение и должны быть оптимизированы для успешного выделения этих редких клеточных популяций.

В этом протоколе, выделение постоянного тока и TEC подмножеств выполняется, сделав одной клеточной суспензии ткани с помощью механического разрушения и ферментативного расщепления. Мы используем коллагеназы А из Clostridium histolyticum, который имеет сбалансированное соотношение различных видов деятельности ферментных, чтобы сломать родной коллаген, который удерживает ткани вместе. ДНКазы I входит в ферментного раствора для снижения агрегации клеток за счет свободной ДНК от мертвых клеток (тимоцитов очень чувствительны). Мы также предлагаем альтернативный подход к типичному ферментативного переваривания ткани с участием механическую и ферментативную обработку тканей при содействии ткани диссоциатора. Одноклеточной суспензии затем подвергают одной Перколла плотности центрифугирования для обогащения низкой плотности фракции (LDF) клеток. С этой фракции клеток, DC, могут быть выделены путем окрашивания еили DC-поверхностные маркеры (т.е. CD11c ⁺⁾ и с помощью магнитной сепарации или флуоресценции Активированный сортировки клеток (FACS). В отличие от лимфоидных клеток, составляющих подавляющее большинство клеток в тимусе, TEC не выражают CD45 на высоких уровнях, но положительны для ЕрСАМ молекулы эпителиальной клеточной адгезии. CTEC можно отличить от мозгового TEC по экспрессии еще неопределенной антигена, признанной CDR-2 (коркового дендритных ретикулоцитов-2) антител ^4,5 и несколько ниже выражения EpCAM. Дифференциальный коэкспрессия ЕрСАМ и CDR2 позволяет эффективно выделение этих ТИК подмножеств через высокоскоростной сортировки клеток ^6.

Протокол, представленные здесь оптимизирован для человеческого тимуса ткани. Длительность процедуры зависит от количества ткани и способности экспериментатора, а также от скорости клеточного сортера, если используется FACS сортировки. Как правило, протокол для выделения DC может быть завершена в течение 5-6 Ч и для выделения TEC в 8-10 час. Изоляция постоянного и ТИК подмножеств из тимуса ткани чувствительным временем. Чем быстрее процедура изоляции, тем лучше состояние клеток. Наконец, изолированные клетки могут быть использованы для дальнейших исследований, таких как сравнительных исследований мРНК и белка, ПЦР экспериментов, изоляции белка, молекулярной профилирования (т.е. транскриптомика, микро-анализа РНК), а также клеточной культуре ^6.

Заявление по этике

Для того, чтобы иметь возможность работать с человеческой ткани тимуса исследователь должен получить одобрение от местным комитетом по этике или ответственными органами, а также информированного письменного согласия донора (или обычно его или ее родителей, так как ткани, как правило, получают из несовершеннолетних детей). Кроме того, все ткани человека следует обращаться как с потенциально инфекционные и соответствующие меры должны быть приняты, такие как работа в перчатках, и т.д..