In vitro estão sendo desenvolvidos modelos de lesões cerebrais traumáticas para reproduzir in vivo deformação cerebral. Estiramento lesão induzida tem sido utilizada para neurónios, astrócitos, células da glia, da aorta e células endoteliais cerebrais. No entanto, nosso sistema utiliza a barreira hemato-encefálica (BBB), modelo que possui propriedades que constituem um modelo legítimo do BBB para estabelecer um modelo TBI vitro.
Devido ao incidente elevada mortalidade provocada por traumatismo crânio-encefálico (TCE), os métodos que nos permitem compreender melhor os mecanismos subjacentes envolvidos nele são úteis para o tratamento. Existem tanto in vivo e in vitro disponíveis para esta finalidade. Modelos in vivo podem imitar traumatismo craniano real, uma vez que ocorre durante o TCE. No entanto, in vivo, não pode ser explorado para os estudos com o nível da fisiologia celular. Assim, os métodos in vitro são mais vantajosa para este efeito, uma vez que proporcionam um acesso mais fácil às células e no ambiente extracelular por manipulação.
Nosso protocolo apresenta um modelo in vitro do TCE utilizando lesão por estiramento em células endoteliais microvasculares cerebrais. Ele utiliza a pressão aplicada às células cultivadas em poços de fundo flexível. A pressão aplicada pode ser facilmente controlada e pode produzir lesão que varia de baixo a grave. A murinaAs células endoteliais microvasculares cerebrais (cEnd) geradas no nosso laboratório é um modelo adequado para a barreira de sangue do cérebro (BBB), proporcionando assim uma vantagem para outros sistemas que empregam uma técnica similar. Além disso, devido à simplicidade do método, da aparelhagem de medição são facilmente duplicados. Assim, este modelo pode ser usado para estudar os mecanismos celulares e moleculares envolvidas na TBI na certificação.
Traumatismo crânio-encefálico (TCE) é uma das principais causas de morte em todo o mundo. Cerca de 10 milhões de pessoas são afectadas anualmente pelo TCE tornando-se um importante problema de saúde e um médico. Devido a isto, vários in vivo e in vitro modelos de TCE foram estabelecidas e desenvolvidas para estudar os mecanismos 2,3,4. Uma melhor compreensão do TCE pode ajudar a melhorar o tratamento do doente e reduzir a mortalidade associada, morbidade e custo.
Muitos modelos de lesões cerebrais que utilizam tanto in vivo e in vitro existir. Nos modelos in vivo, pode simular o evento real de traumatismo craniano. No entanto, devido à complexidade da situação in vivo, a acessibilidade do tecido de interesse torna-se limitada 2. No entendimento da resposta fisiológica de células individuais, como resultado da lesão infligida, é importante que as células são isoladas a partir dos quais os efeitos sistémicospodem inibir ou alterar a sua resposta individual 5. Por esta razão, os modelos celulares de trauma proporcionar consideráveis vantagens em relação aos modelos animais desde o ambiente mecânica das células pode ser controlado com precisão 6.
Nos sistemas in vitro, que empregam o uso de carga mecânica de células ou tecidos para determinar alterações induzidas por tal método de lesão têm sido desenvolvidos. Por exemplo, foi estabelecido um método para estudar o efeito de danos mecânicos às células para neurónios, astrócitos, células da glia e células endoteliais da aorta de 7,8,9. A no modelo de trauma in vitro estabelecido para o estudo da reactividade dos astrócitos roedor e humano 10 empregue um dispositivo de controlo de pressão idêntica ao que usamos para o nosso modelo. O mesmo método foi aplicado para induzir a lesão através de trecho em cérebro de rato microvasos células endoteliais (bEnd3) 11 e neurônios corticais 12,13, bem como, endoth cerebralcélulas Elial de leitões recém-nascidos O dispositivo 14. deforma a parte inferior do poço de cultura, assim, produzir lesão por estiramento mecânico 10. É inflige danos sobre as células em cultura mediante a aplicação de pressão de ar acima das células. Esta pressão pode desviar a membrana sobre a qual as células estão em crescimento, desse modo esticando as células. Vários graus de estiramento (isto é, "baixos" moderado "ou" grave ") pode ser alcançada ajustando a duração do impulso de pressão de ar e consequentemente a intensidade. Este método de lesão induzida por estiramento tem sido correlacionada com a lesão traumática in vivo 7. Além disso , este método de lesão permite o controle preciso do meio extracelular e pode facilmente ser reproduzida.
Embora uma abordagem semelhante tem sido utilizada para muitos outros tipos de células do cérebro, incluindo bEnd3, o nosso modelo é uma vantagem na medida em que faz uso das células endoteliais cerebrais microvasculares murino (cEnd) geradoem nosso laboratório. Esta linha celular é um modelo bem adequada da barreira hematoencefálica (BHE). Nas culturas de células in vitro utilizados como modelos de BBB deve possuir características que lhes permitam servir como tela de permeabilidade. Um critério importante para um modelo de células in vitro para ser um preditor de permeabilidade a certificação é que ela deve possuir arquitetura de células fisiologicamente realista 15. Mesmo que bEnd3 células apresentam distintivo fusiforme morfologia escamosas na cultura 16, eles apresentam comportamento irregular morfogenético in vitro no qual eles formam cavidades quisto-como, em vez de estruturas tubulares regulares em gel de fibrina 17. Além disso, quando as células foram injetadas em camundongos embrionárias e recém-nascidos, eles induziram tumores crescendo rapidamente letais para camundongos embrionárias, mas não em camundongos recém-nascidos e jovens. Deste modo, sugere-se que um ou mais processos que regulam o normal crescimento endotelial, migração, e diferenciação foram alterados ou eliminandoed nesta linha de células 18. Por outro lado, morfológico, a avaliação imunocitoquímica das medidas de fluxo endoteliais e expressão do marcador certificação, bioeléctrico, paracelular e demonstram que o nosso modelo de certificação cEnd é efectivamente um modelo adequado da BHE 19.
Endotélio cerebral in vivo, é caracterizada por uma permeabilidade extremamente apertado com resistência eléctrica trans-endotelial (TEER) variando entre 2.000-5.000 Ωcm 2. Para os estudos de propriedades de barreira cérebro microvasculatura para produtos farmacêuticos, restritividade paracellular e aperto das células deve ser considerada. Na maioria das células endoteliais dos capilares cerebrais (BCEC), este não é preservado como células exibem TEER variando 50-100 Ωcm 2 20. O imortalizado cérebro endotelial linha bEnd3 célula gera valores teer não superiores a 60 Ωcm 2 15. Em contraste a diferenciação de células cEnd com meio contendo soro reduzido visorOs valores TEER variando 300-500 Ωcm 2 19,21.
Até à data, em modelos in vitro da lesão por estiramento em células endoteliais cultivadas do cérebro são escassos. Assim, um modelo in vitro para o trauma devido a lesão estiramento usando células endoteliais cultivadas cerebrais que actuam como modelo de certificação pode vir a ser útil. Neste protocolo, apresentamos um modelo in vitro, que pode simular o impacto real que as células do cérebro, células endoteliais microvasculares especificamente cerebrais do BBB, recebe durante o TCE. A principal vantagem deste modelo é que a quantidade de lesão aplicada às células, bem como o meio ambiente extracelular podem ser facilmente controlados de uma maneira precisa, permitindo fácil reprodutibilidade da montagem experimental.
Os efeitos da lesão mecânica in vitro têm sido estudados e métodos têm sido estabelecido para neurónios, astrócitos, células da glia e células endoteliais da aorta de 8, 9 e 22. Existe, no entanto, até à data ainda não conhecido modelo in vitro de lesão por estiramento em células endoteliais cerebrais em cultura. Modelos celulares de trauma proporcionar consideráveis vantagens em relação aos modelos animais desde o ambiente mecânica das células pode ser controlado com precisão 6. Assim, um modelo in vitro para o trauma devido a lesão estiramento usando células cerebrais endoteliais cultivadas que actuam como modelo da barreira hematoencefálica (BHE), tais como o nosso protocolo presentes podem revelar-se úteis.
Este protocolo faz uso de células cEnd, um modelo de certificação estabelecido no nosso laboratório. Uma vez que é frequentemente ruptura da BHE documentada em doentes de TB e TBI está muitas vezes ligada à perturbação da BHE, que pode resultar a formação de edema 23, 24, o método de prestura orientada especificamente aqui pode ser usado na realização de estudos de BBB em relação ao TCE.
Neste modelo, é importante tomar cuidado quanto grau de lesão por estiramento é aplicado às células. Na medida em que as células estão lesionados, em qualquer caso, e com qualquer quantidade de pressão é aplicada, o grau de lesão que pode ter impacto na células endoteliais diferem muito consideravelmente a partir de outros tipos de células. As células endoteliais da aorta são mais resistentes à lesão por estiramento do que os astrócitos e células gliais mistas 9. Além disso, eles reparação mais rapidamente após a lesão em comparação com os outros tipos de células. Portanto, para que as células endoteliais do cérebro, particularmente células cEnd, maior quantidade de lesão por estiramento é necessário para produzir um elevado grau de lesão. Pode-se atingir o desejado grau de lesão pela aplicação da pressão correspondente indicado na Tabela 1. Para células cEnd, no entanto, a lesão grave é o preferido devido à sua resistência ao esforço. Os ensaios realizados mostraram LDHenquanto que aumenta o grau de estiramento, mais LDH é secretado para o sobrenadante. Em contraste, as células que foram dadas uma baixa quantidade de lesão por estiramento LDH produzida em uma quantidade semelhante a células de controlo. Como mencionado no protocolo, deve-se tomar cuidado para que a quantidade apropriada de meio é utilizado uma vez que um aumento ou uma diminuição na quantidade de meio pode resultar de diferenças na pressão de pico aplicada aos poços. Por exemplo, um poço que continha 5 ml de líquido regista uma pressão pico na média de 4,0 psi durante um poço vazio regista uma média de 3.8 psi 45 psi de pressão quando é aplicada. Portanto, é melhor para empurrar o gatilho várias vezes ao longo de um poço de controlo para garantir que a pressão de pico que vai ser gerado corresponde ao valor desejado.
Nas nossas experiências foi utilizada uma mancha de viabilidade para determinar o efeito de esticar a permeabilidade da membrana celular. A ótica das placas de cultura flexível de fundo que usamos nos permite view as células manchadas diretamente sob o microscópio. No entanto, quando se quer realizar estudos imunomarcação diretamente após estiramento lesão, podem surgir dificuldades. Primeiro, o tamanho e espessura da placa, pode constituir um problema com algumas plataformas de visualização do microscópio. Em segundo lugar, a ótica da membrana flexível do bem pode ser um obstáculo para limpar visualização.
Apesar das limitações acima referidas, no entanto, o processo descrito pode ser utilizado como um modelo de lesão mecânica em vitro da BHE. Traumatismo crânio-encefálico (TCE) envolve duas componentes, nomeadamente, isquemia e trauma. A isquemia pode ocorrer como lesão secundária seguindo TBI em casos quando há perda de sangue grave, resultando em diminuição da pressão arterial, ou como resultado do inchaço do cérebro restringindo o suprimento de oxigênio para o cérebro. Considera-se como um dano retardada, não-mecânico representando processos patológicos consecutivas iniciadas no momento do ferimento 25. A ocorrência de uma hipoxiaepois de grave lesão cerebral traumática é comum 26. Oxigénio privação de glicose (OGD) é o método actualmente usado para modelo de isquemia in vitro. Assim, as células a sujeitar POG como um insulto secundário às células após estiramento pode imitar a incidência de TCE seguido por isquemia. Assim, para melhorar a nossa actual modelo in vitro de TCE e padrão la tanto quanto possível, de forma efectiva, uma vez que o TCE ocorre in vivo, no futuro, também vai empregar POG em combinação com lesão por estiramento.
The authors have nothing to disclose.
Esta pesquisa foi financiada pelo Sétimo Programa-Quadro da União Europeia (FP7/2007-2013) Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG, Fundação Alemã de Pesquisa), sob número de concessão FO 315/4- e sob acordo Grant No. SAÚDE-F2-2009-241778 para CF.
Cell Injury Controller II | Custom Design and Fabrication, Virginia, USA | http://www.radiology.vcu.edu/research/customdesign/cic.html | ||
Name of Materials | Company | Catalog Number | Remarks | |
Bioflex Culture Plate – Collagen Type I | Flexcell, Dunn Labortechnik | BF – 3001C | ||
Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM) | Sigma-Aldrich | D5796 | ||
Fetal Calf Serum (FCS) | PAA Laboratories | A15110-1333 | final concentration 10%, heat-inactivated (30 min at 56 °C) | |
L-glutamine | Biochrom AG | K0282 | Storage: ≤ -15 °C | |
MEM Vitamin | Biochrom AG | K0373 | Storage: ≤ -15 °C | |
Na-pyruvate | Biochrom AG | L0473 | ||
Nonessential amino acids (NEA) | Biochrom AG | K0293 | Storage at 4 °C | |
Penicilin/Streptomycin | Biochrom AG | A2212 | Storage: ≤ -15 °C | |
Fetal Calf Serum, charcoal stripped (ssFCS) | Life Technologies | 12676-011 | ||
Trypsin-EDTA solution | PAA Laboratories | L11-004 | Storage: ≤ -15 °C | |
Image-iT DEAD Green | Life Technologies | I10291 | Storage: ≤ -15 °C, protected from light | |
Cytotoxicity Detection Kit PLUS (LDH) | Roche | 4744926001 | Storage: ≤ -15 °C |