精製造血幹細胞/前駆細胞のDNAの変異を特定する

ほとんどの組織では、分化した細胞は、限られた寿命を持っている。機能的完全性を維持するために、長寿命の、組織特異的幹細胞は、連続的に順番に、その特定の組織の機能に必要な完全に分化した細胞を生じる前駆細胞を産生する。幹細胞は、自己複製と呼ばれるプロセスを通じて、自分の区画を補充する。このように、幹細胞は、彼らがそのためインチ常駐組織の機能的完全性を維持する責任があり、それは彼らが損傷を受けたDNAを検出し、潜在的に修復するために、堅牢なメカニズムが装備されていることが不可欠です。そうでなければ、彼らは彼らの子孫によって継承できる複数のゲノム（潜在的に有害な）摂動を、取得することができる。幹細胞は、生物の寿命の間に彼らのゲノムをセーフガードする方法を理解することは重要な問題であり、ゲノムの不安定性は、癌および^（1,2に概説されている）他のいくつかの加齢に伴う疾患にリンクされている理由を私たちが理解するのに役立つことがあります。

<p cl細胞死、老化または分化を介して、および/または効率的な修復により尻= "jove_content">幹細胞のレベルでの組織のゲノムの完全性を制御または初期前駆細胞集団を排除する不良幹（又は前駆細胞）のいずれかによって達成することができる細胞損傷を受けたDNAの。最近の研究は、これらの稀な集団^3-6の直接DNA修復の特定のタイプを測定することが可能であることを実証した。なお、後者は低い忠実度および製造従ってリスク増加の修復プロセスであり、造血系において、例えば、二本鎖DNAの切断が相同組換え（HR）又は非相同末端結合（NHEJ）によって修復することができることが見出されたエラーが。両方が、造血幹細胞^（HSC）4,5に利用されているが、マウスにおいて、早期前駆細胞がHR ^4を利用^し 、一方、それは造血幹細胞で主にNHEJであると思われる。同様の観察は、皮膚⁶中の幹細胞のために作られました。興味深いことに、ヒトHSC人事ではないNHEJにおいて、二本鎖切断³のための選択の修復機構であると思われる。 2種間のこの機能的な違いは本物であるか、単に技術的または実験の差を表しているかどうかは、見守らなければならない。

損傷を受けたDNAを修復する幹細胞のレパートリーは、例えば、塩基除去修復（BER）、ヌクレオチド除去修復（NER）およびミスマッチ修復（MMR）のような他のDNA修復機構を含む可能性がある。 MMR修正塩基塩基ミスマッチ、挿入/欠失ループながらBERとNERは、一本鎖DNAに、単一または複数の塩基対の病変を修復するための責任であり、DNA損傷のこれらのタイプは、NHEJまたはHRによって修復することができない。この概念をサポートすることは、HSCコンパートメント^7-9に、これらの経路の1の変化と異常の間のリンクを示す造血系だけでなく、骨髄異形成症候群^{10月16日の}発症リスクの増加に起因する疾患からのいくつかの研究であるHSCは、その疾患が進行するにつれて¹⁷ゲノム不安定性を増大と関連している。まだ今のように、造血幹細胞を直接、BER、NER、およびMMRの測定が報告されていない。

機構的レベルでの組織の完全性を制御する様々なプロセスを解明することに加えて、これらのプロセスのいずれかの収差の影響が遺伝子対正常に、例えば 、試験することができるように、突然変異したDNAの程度を測定することができることが不可欠である幹細胞を操作または若いに対する古い中。しかし、関連アッセイの開発が原因組織特異的幹細胞の不足および「幹細胞性」を維持し、培養条件の欠如のために困難である。さらに、そのようなアッセイは、環境や遺伝子操作に修正可能である必要があります。これらの制限および要件に可能な解決策は、具体的にはDNAの突然変異を検出するために設計されているマウスモデルの使用である。

MUL変異検出のためのTIPLEトランスジェニックマウスモデルが開発されている。例えば、トランスジェニックマウスのLacI ¹⁸ のLacI遺伝子はLacオペレーターのサプレッサーをコードする変異レポーターとして機能するLacIリレポーター系をコードする回復可能なλファージベクターを運ぶ。 LacIリ遺伝子の変異の際に、Lacオペレーターが活性化され、β-ガラクトシダーゼが生成される。それが青色に変わっβ-ガラクトシダーゼの発色性基質を切断するのX-gal（5 – ブロモ-4 – クロロ – 電子 – インドリル-β-D-ガラクトピラノシド）。 のLacIベクトルに隣接するCOSサイトはラムダファージタンパク質およびEのその後の感染により容易に回収することができ大腸菌 。感染したEをインキュベートした後大腸菌は、X-gal基質を含有するアガロースに、プラークをスコア付けすることができる。明確なプラークは非変異体を保有しながら、青斑は、推定される変異型ラック-I有するファージを含んでいる。目の中で青いプラークの周波数（電子明確なもの）は、DNAから抽出された元の細胞集団における突然変異頻度を示す。また、LacIリターゲットをホストするλファージは、容易に、比較的高いスループット分析のためのPCR技術を用いて配列決定することができる。複数の変異型のLacI遺伝子の配列を決定することは今度は特定のDNA修復経路で可能な欠陥または特定の遺伝毒性事象を指すことがあり、突然変異スペクトルに関する重要な情報を明らかにします。 のLacIトランスジェニックシステムは、複数の研究室¹⁹全体で標準化されており、試薬は、市販されている。 LacIリシステムの一つの主要な欠点は、大規模な欠失または再配列を検出する能力が限られているので、分裂中期スプレッド上の他の方法、 例えば 、多色FISHは、この欠陥を補完するために使用される必要がある。

LacIリマウスモデルのλファージベクターの中では、はるかに小さい遺伝子、CIIがあります、変異解析のために利用できる。そのサイズおよび変異体を選択することができるという事実は、このlacI遺伝子解析未満の労働集約的かつ安価なアッセイを²⁰にする。しかしながら、lacI遺伝子は、より広範囲に突然変異誘発²¹に研究されており、発色基質^22-25に関する表現型応答を生成するアミノ酸残基の明確な理解が存在するように突然変異遺伝子の感度はよく特徴付けられている。

変異検出のための他のマウスモデルがΦX174またはLacZを導入遺伝子の使用を含む。 T→G：オリジナルAとΦX174トランスジェニックマウスモデル、C復帰突然変異試験²⁶又は塩基対置換のスペクトルの検出を可能に前進突然変異試験^27は 、LacIリモデルより安価なシステムを表す。しかし、フォワードアッセイにおける突然変異画面は些細な突然変異の仕様ではありませんΦX174導入遺伝子のスペクトラムは、次のようにのLacIのものと十分に特徴づけされていません。 LacZを導入遺伝子を有するマウスモデルでは、LacZの突然変異レポーターを大腸菌を用いた回収され、ガラクトースおよびガラクトース^28を含有する培地に対して感受性である大腸菌宿主細胞。このシステムの欠点は、LacZの対象の回復はまた、E.のライゲーションおよびエレクトロポレーションに続いて、制限エンドヌクレアーゼ消化を含むことであることが困難少数の細胞のためのシステムを適合すること大腸菌ホスト。多数の細胞が必要な場合には（ 例えば百万個以上）、（1、常により多くのマウスで始めることができます）幹細胞/前駆細胞集団を操作するための絶対条件ではありませんが、それはすぐに非現実的で費用対法外になります。また、LacZの比較的大きなサイズの、感受性突然変異レポーターを提供しつつ、DNA配列分析およびdetermために面倒でコストがかかる突然変異スペクトルの追うもの。このモデルの主な利点は、しかしながら、その大きな欠失および挿入を検出する能力、ならびに染色体再編成である。

LacIリ、ΦX174およびLacZトランスジェニックマウスモデル内のすべてのセルがレポーター系を運ぶので、これらのマウスモデルのいずれかは、それらが確実に採取することができるように、幹細胞および前駆細胞を含む、関心対象の任意の細胞型において突然変異誘発を測定するために使用することができる十分な数の。我々はのLacIマウスモデルとのLacI突然変異試験で豊富な経験を持っていたので、我々は造血幹細胞および前駆細胞集団内変異導入解析のための更なるこのシステムを追求することにしました。

造血組織は、リンの極めてまれな集団として同定可能であり、長期再増殖幹細胞を含むその個々の成分の細胞表面表現型の点でよく特徴付けられている^– IL7R <suP> – SCA-1 ⁺するcKit ^{+ +（LSK）/} Flk2は^– CD150 ⁺ CD48 ^–細胞^29。 それは、DNA修復を研究になると、細胞はまだHSCのために良いの代表であり、最も原始的な骨髄球前駆細胞（CMP）の人口とは大きく異なる^– Mohrin ら ^4は LSK/Flk2のわずかに大きい人口があることを明らかにした。また、ときHSCに富むLSK（FLK-2 ⁺およびFLK-2 ^{– ） –} IL7R ^–細胞が林と比較したSCA-1-するcKit ^{+ +（LS-K}前駆細胞）は、有意差が残っていた純度の低い間NHEJ能力^5、細胞に富むLSKの人口および前駆細胞を幹。この細胞数は極めて困難であり、我々は、少なくとも2×10 ^5個の細胞をこの変異誘発アッセイにおいて、一貫した信頼性のある結果を得るために必要であることを見つけたので、細胞^–我々の研究ではHSCに富むLSK（のFlk-2 ⁺およびFlk-2）を使用CD150 ⁺ CD48集団またはさえLSK/Flk2 ^{– – （}マウス、コストと実用性の点で）人口1はLSK/Flk2をソートする際に取得する。もともとはKohler らによって開発された一方に基づいて、このプロトコルは、 ^図18は、自発的なDNA突然変異頻度はLSK細胞および分化した骨髄細胞ならびに未分離の骨髄および脾臓細胞の規定された集団において決定することができる方法を詳細に記載している。