Summary

Un<em> In-vitro</em> Preparazione dei neuroni enterici isolati e glia dal plesso mienterico del topo adulto

Published: August 07, 2013
doi:

Summary

Dimostriamo un protocollo di coltura cellulare per lo studio diretto dei componenti neuronali e gliali del sistema nervoso enterico. Un neurone / cultura mista glia su vetrini è preparato dal plesso mienterico di topo adulto fornendo la possibilità di esaminare singolo neurone e la funzione glia di elettrofisiologia, immunoistochimica,<em> Ecc</em>.

Abstract

Il sistema nervoso enterico è una vasta rete di neuroni e glia funzionare la lunghezza del tratto gastrointestinale che controlla funzionalmente motilità gastrointestinale. Una procedura per l'isolamento e la coltura di una popolazione mista di neuroni e glia dal plesso mienterico è descritto. Le colture primarie possono essere mantenuti per più di 7 giorni con connessioni di sviluppo tra i neuroni e glia. La striscia di muscolo longitudinale con l'allegata mienterico plesso è spogliato dal muscolo circolare sottostante dell'ileo mouse o del colon e sottoposto a digestione enzimatica. In condizioni di sterilità, l'isolata popolazione neuronale e gliale sono conservati all'interno del seguente centrifugazione pellet e placcato su vetrini. Entro 24-48 ore, si verifica crescita dei neuriti e neuroni può essere identificato da marcatori pan-neuronale. Dopo due giorni di cultura, isolati neuroni potenziali d'azione di fuoco, come osservato da studi di patch clamp. Inoltre, glia enterica può anche essere indicanied di GFAP colorazione. Una rete di neuroni e glia in stretta apposizione forma entro 5 – 7 giorni. Neuroni enterici possono essere individualmente e direttamente studiati utilizzando metodi come l'immunoistochimica, elettrofisiologia, imaging del calcio, e la PCR singola cellula. Inoltre, questa procedura può essere eseguita in animali geneticamente modificati. Questa metodologia è semplice da eseguire e poco costoso. Nel complesso, questo protocollo espone i componenti del sistema nervoso enterico in modo facilmente manipolata in modo da poter meglio scoprire la funzionalità del ENS in stati normali e malattie.

Introduction

Il sistema nervoso enterico (ENS) è vasta rete di nervi e glia che corre per tutta la lunghezza del tratto gastrointestinale (GI). L'ENS controlla funzionalmente tutti gli aspetti della digestione, tra cui la peristalsi, l'assorbimento di liquidi / secrezione, sensazione di stimoli, ecc (per una rassegna vedi 1). Esso contiene oltre 500 milioni di neuroni, più che trovato nel midollo spinale, e contiene ogni classe neurotrasmettitore presente nel cervello. Inoltre, l'ENS è unico in quanto può funzionare senza riflesso input dal sistema nervoso centrale 2. Comprensione della ENS è cruciale, non solo per capire il suo normale ruolo fisiologico, ma per capire il suo coinvolgimento in una varietà di neuropatie che può essere congenito (malattia di Hirschsprung), acquisita (Chagas), secondaria a condizioni di malattia (gastroparesi diabetica), farmaco indotta (sindrome dell'intestino oppiacei), oppure a causa di un infortunio (ileo postoperatorio) 1. Inoltre, i neuroni enterici possono essere un reservoir per infezioni virali (varicella zoster) 3. A causa delle sue somiglianze con il cervello e gli alti livelli di serotonina nell'intestino, i farmaci volti a curare i difetti del sistema nervoso centrale spesso hanno effetti collaterali indesiderati sul ENS 2. Si osserva inoltre che molte neuropatie come il morbo di Alzheimer e morbo di Parkinson mostrano cambiamenti cellulari simili nei neuroni enterici lunghi prima della loro comparsa in neuroni centrali, rendendo l'ENS un modello accessibile per studiare la patogenesi di queste malattie 4. Pertanto, una conoscenza approfondita della ENS è una necessità nel capire gli stati di malattia e la prevenzione / predire gli effetti collaterali farmacologici.

I neuroni del ENS sono stati tradizionalmente studiati nella cavia utilizzando preparati wholemount 5-7 o neuroni in coltura 8. Nonostante la facilità con cui i neuroni possono essere studiate in questo grande animale, questo modello ha molti limiti compresimancanza di ceppi geneticamente modificati, la mancanza di reagenti specifici per questa specie, e l'alto costo associato con l'ordinazione e che ospita questi soggetti. Lo sviluppo di un modello di sistema nervoso enterico murino ha il vantaggio unico di vari sistemi knock out, una vasta gamma di altre metodologie consolidate che possono essere utilizzati in combinazione con la tecnica di coltura cellulare, e la capacità di fornire una convalida per il modello cavia .

L'ENS è contenuto tre plessi che corrono la lunghezza del tratto gastrointestinale: l'esterno myenteric plesso (tra il muscolo longitudinale e circolare) che è principalmente responsabile per le azioni peristaltici dell'intestino, così come la mucosa e della sottomucosa plessi, ( trovato sotto e all'interno della mucosa, rispettivamente) che controlla in gran parte l'assorbimento di liquidi / secrezione e il rilevamento di uno stimolo. Questo metodo inizia con l'isolamento del plesso (LMMP) preparazione muscolare / myenteric longitudinale mediante pelaturalo strato muscolare esterno del tratto GI. Questo riduce drasticamente il problema della contaminazione che sorgono quando lo strato di mucosa è coinvolta nel isolamento. Come risultato, questo processo è ideale per lo studio del controllo della motilità neuronale piuttosto che azioni secretori della ENS.

Il metodo qui presentato risultati in una coltura mista dei neuroni enterici e glia. Almeno due diversi tipi di neuroni sono basate presenti sulle precedenti osservazioni elettrofisiologiche e immunocitochimica 9. La presenza di cellule gliali è estremamente vantaggiosa, in quanto non sono solo un tipo di cellula importante studiare nel loro diritto, ma contribuiscono alla sopravvivenza dei neuroni enterici 10 e di mantenere l'espressione del recettore nativo sulla superficie delle cellule neuronali 11. Inoltre, carenze di glia enterica possono portare ad anomalie della motilità gastrointestinale stati di malattia, coniato 12 'neuro-gliopathies'. Pertanto, la cultura ENS presentata qui risultati in diversi tipi di cellule che sono maturi per le indagini.

I vantaggi di questo metodo sono la facilità di isolamento, i requisiti di strumento poco costoso, e un breve periodo di tempo per padroneggiare la tecnica da parte di personale di laboratorio con esperienza. Limitazioni della metodologia includono bassa resa cella complessiva da elevati volumi di tessuto e l'esclusione dei neuroni dell'ENS di plexi mucosa e sottomucosa. Questa procedura sarà molto vantaggioso per gli studiosi specializzati in elettrofisiologia, immunoistochimica, PCR singola cellula, e altre metodologie.

Protocol

Tutto cura degli animali e le procedure sperimentali sono stati in conformità con e approvati dalla cura degli animali e del Comitato Istituzionale Usa presso la Virginia Commonwealth University. 1. Preparazione di sterili vetrini poli-D-lisina e laminina-rivestite in piastre da 24 pozzetti Tutte le procedure di passaggio 1 sono eseguite in condizioni sterili, sotto cappa, e con reagenti sterili. Vetrini e doppia acqua deionizzata (DDH 2 O) devono essere sterilizzati i…

Representative Results

Subito dopo l'isolamento di cellule LMMP-derivati, i neuroni e altri tipi di cellule non sarà immediatamente evidente. Vivente, cellule rotonde di fenotipo indistinto può essere vista come detriti tessuto dai frammenti di tessuto non digeriti e tessuto connettivo. Questo relitto è di alcuna preoccupazione e sarà in gran parte rimossa con la prima variazione media in due giorni. Non tentare di pulire le diapositive prima di questo, come le cellule vitali sani saranno rimossi. Do…

Discussion

Animali utilizzati

Questo protocollo è stato ottimizzato per Swiss Webster topi. Tuttavia, questo metodo è facilmente adattabile ad altri mammiferi di piccole dimensioni quali ratti e ad altri ceppi di topi. Abbiamo effettuato con successo isolamenti preliminari con i topi C57 e del recettore μ-oppioidi knock-out. Tuttavia, è anche possibile che altri ceppi di topi possono essere problematico a causa di variazioni morfologiche nel tratto GI. Inoltre, vi sono differenze note tra ceppi di top…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

National Institute of Health di Grant DA024009, DK046367 & T32DA007027.

Materials

Reagents
Fisherbrand Coverglass for Growth Cover Glasses (12 mm diameter) Fisher Scientific 12-545-82
Poly-D-lysine Sigma P6407- 5 mg
24-well cell culture plate CELLTREAT 229124 May use any brand
Laminin BD Biosciences 354 232
ddH2O Can prepare in lab
15 ml Sterile Centrifuge Tube Greiner Bio-one 188261 May use any brand
50 ml Sterile Centrifuge Tube Greiner Bio-one 227261 May use any brand
NaCl Fisher BioReagents BP358-212 MW 58.44
KCl Fisher BioReagents BP366-500 MW 74.55
NaH2PO4 .2H2O Fisher Chemicals S369-3 MW137.99
MgSO4 Sigma Aldrich M7506-500G MW 120.4
NaHCO3 Sigma Aldrich S6014-5KG MW 84.01
glucose Fisher Chemicals D16-1 MW 180.16
CaCl22H2O Sigma Aldrich C5080-500G MW 147.02
F12 media Gibco 11330
Fetal Bovine Serum Quality Biological Inc. 110-001-101HI May use any brand
Antibiotic/antimycotic 100x liquid Gibco 15240-062
Neurobasal A media Gibco 10888
200 mM L-glutamine Gibco 25030164
Glial Derived Neurotrophic Factor (GDNF) Neuromics PR27022
Sharp-Pointed Dissecting Scissors Fisher Scientific 8940 May use any brand
Dissecting Tissue Forceps Fisher Scientific 13-812-41 May use any brand
Cotton-Tipped Applicators Fisher Scientific 23-400-101 May use any brand
250 ml Graduated Glass Beaker Fisher Scientific FB-100-250 May use any brand
2 L Glass Erlenmyer flask Fisher Scientific FB-500-2000 May use any brand
Plastic rod (child's paint brush) Crayola 05 3516 May use any brand
Carbogen Airgas UN 3156 5% CO2
10 ml Leur-lock Syringe Becton Dickinson 309604 May use any brand
21 G x 1 1/2 in. Hypodermic Needle Becton Dickinson 305167 May use any brand
Collagenase type 2 Worthington LS004174
Bovine Serum Albumin American Bioanalytical AB00440
2 ml Microcentrifuge Eppendorf tubes Fisher Scientific 13-864-252 May use any brand
Nitrex Mesh 500 µM Elko Filtering Co 100560 May use any brand
Pipette Set Fisher Scientific 21-377-328 May use any brand
Sharpeining Stone Fisher Scientific NC9681212 May use any brand
Equipment
LabGard ES 425 Biological Safety Cabinet (cell culture hood) Nuaire NU-425-400 May use any brand
10 L Shaking Waterbath Edvotek 5027 May use any brand
Microcentrifuge 5417R Eppendorf 5417R May use a single larger centrifuge with size adapters
Allegra 6 Series Centrifuge Beckman Coulter 366816 May use any brand
HuluMixer Sample Mixer Invitrogen 15920D
AutoFlow Water Jacket CO2 Incubator Nuiare NU-4750 May use any brand
Analytical Balance Scale Mettler Toledo XS104 May use any brand

References

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Cite This Article
Smith, T. H., Ngwainmbi, J., Grider, J. R., Dewey, W. L., Akbarali, H. I. An In-vitro Preparation of Isolated Enteric Neurons and Glia from the Myenteric Plexus of the Adult Mouse. J. Vis. Exp. (78), e50688, doi:10.3791/50688 (2013).

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