Summary

電気生理学および高分解能二光子顕微鏡用マウス前庭感覚上皮の切り抜き半無傷準備

Published: June 13, 2013
doi:

Summary

前庭有毛細胞機能の解析は頭蓋骨の最も困難な部分の奥深くの位置、側頭骨錐体によって複雑になる。最も機能有毛細胞研究は、急性単離された有毛細胞を使用している。ここでは、電気生理学的および二光子顕微鏡研究のためのマウス前庭上皮の半無傷の準備について説明します。

Abstract

理解前庭有毛細胞は、正常な条件の下で機能する、またはどのように外傷、疾患、およびこの機能を混乱させる老化、予防的アプローチ、および/または新たな治療戦略の開発に重要なステップです。しかし、異常な前庭機能を見て研究の大半は、細胞レベルではなかったが、このような歩行分析と前庭動眼反射性能として前庭機能障害の行動アッセイに主に焦点を当てた。この作品は物事がうまくいかないときに何が起こるかについての貴重なデータが得られているが、少し情報が障害の根本的な原因に関して収集されます。前庭機能の基礎となる細胞および細胞内のプロセスに焦点を当てている研究のうち、ほとんどは彼らのシナプス接続と支持細胞環境を欠い急性単離し有毛細胞、に頼ってきた。したがって、主要な技術的課題は、準備中で絶妙に敏感前庭有毛細胞にアクセスしている少なくとも生理的に、中断されaration。ここでは、有毛細胞/一次求心錯体を含む地元の微小環境を保持マウス前庭感覚上皮の半無傷の準備を示しています。

Introduction

私たちの日常生活への前庭系の重要な貢献にもかかわらず、加齢に伴う前庭機能の観察された減少の責任のプロセスを明確に理解することは、とらえどころのないまま。知識の欠如のための一つの理由は、その前庭機能の低下がほぼ独占的に前庭動眼反射(VOR)、外因性前庭機能の正確な指標を含む行動のアッセイを使用して検討されているですが、本質的な構成要素の変更に限定された洞察力を提供しています。これは、健康、病気、あるいは老化に前庭有毛細胞機能の理解への大きな障害である。

個々の前庭有毛細胞の多くの研究が行われてきたが、主要な欠点​​は、有毛細胞、さらには萼求心端子は、機械的および/または酵素的処理により、通常の環境から除去される急性有毛細胞調製物、に依存している。このようなアプローチinevitaブライ有毛細胞や萼、及び有毛細胞と支持細胞との間の微妙なマイクロアーキテクチャを混乱させる。半無傷の準備1-5、及び孤立マウス迷路の準備6の発展に伴い、より密接に、生体内でそれらの似ている条件の下でシナプスのコミュニケーションの様々な形態を勉強する機会が用意されました。実際、林 (2011)I前庭有毛細胞は神経上皮内に埋め込 ​​まれて残ったものに比べて急性孤立型から記録された全細胞電流の著しい差が認められた。具体的には、カリウム有毛細胞と求心萼間の間隙内に蓄積すると考えられ、著しく有毛細胞応答7を変化させる。この種の情報は、ここで説明した前庭感覚上皮の半無傷準備なし得ることは不可能であろう。我々はマウス稜3の半無傷準備を実証および全細胞パッチ電気生理学から得られた代表的な結果、2光子カルシウムイメージングを示す。

Protocol

1。動物マウスは、オーストラリアの齧歯類センター(ARC、パース、オーストラリア)から入手し、環境エンリッチメントとノーマルの12時間の明/暗サイクルでシドニーボッシュ動物施設の大学で開催された。記載されたすべての実験は、シドニーの動物倫理委員会の大学によって承認された。 この菌株は一般に遺伝子操作の背景として使用され、 野生型 8-9と?…

Representative Results

前庭有毛細胞の電気生理学的特性は、それらが07埋め込 ​​まれている内に複雑なマイクロアーキテクチャに依存している。 図半無傷の前庭上皮製剤は、タイプI有毛細胞( 図5A)、タイプIIの有毛細胞を区別するために使用することができることを図5 ( 図5B)、そして特徴的な全細胞コンダクタンスに基づい萼一次求心( 図…

Discussion

バランス感覚のメカニズムは、視覚と聴覚のシステムを、たとえば 、他の感覚系と比較して限定され注目を集めている。前庭やバランス機能の変化を調べた研究のうち、ほとんどはバランス前庭有毛細胞自体の基本的なビルディングブロックの不完全な知識で、前庭動眼反射を含む行動の対策に焦点を当てている。彼らのネイティブ環境から削除急性孤立有毛細胞を用いたので、有毛…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この仕事のための資金は、R.リムとAJキャンプにガーネットパッシーとロドニーウィリアムズ記念財団プロジェクトの助成金によって提供されていました。

Materials

REAGENTS
Leibovitz medium L-15 Sigma Aldrich L4386-10X1L
BAPTA-1-oregon green Invitrogen O6806
EQUIPMENT
Stereo microscope Leica Microsystems A60S
Upright microscope Olympus BX51WI
Two-photon microscope Olympus/La Vision BX51WI/ TriMScope II
Dumont #5 SF Forceps FST 11252-00
Friedman-Pearson Rongeurs FST 16221-14
Standard Pattern Scissors FST 14001-12
InstraTECH A-D converter HEKA ITC-18
Sutter Micromanipulator Sutter MP-225/M
multiclamp amplifier Axon Instruments 700B
Data acquisition software (electrophysiology) Axograph N/A
Imspector Data acquisition software (two-photon) Max Planck innovation N/A

References

  1. Dulon, D., Safieddine, S., Jones, S. M., Petit, C. Otoferlin is critical for a highly sensitive and linear calcium-dependent exocytosis at vestibular hair cell ribbon synapses. J. Neurosci. 29, 10474-10487 (2009).
  2. Highstein, S., Art, J., Holstein, G., Rabbitt, R. Simultaneous pre- and post-synaptic recording from the peripheral vestibular calyx and its included type I hair cell. , (2009).
  3. Kindig, A. E., Lim, R., Callister, R. J., Brichta, A. M. Voltage dependent currents in type I and II hair cell and calyx terminals of primary afferents in an intact in vitro mouse vestibular crista preparation. , (2009).
  4. Chatlani, S., Goldberg, J. M. Whole-cell recordings from calyx endings in the turtle posterior crista. , (2010).
  5. Songer, J. E., Eatock, R. A. Transduction in the mammalian saccule. , (2010).
  6. Lee, H. Y., Camp, A. J., Callister, R. J., Brichta, A. M. Vestibular primary afferent activity in an in vitro preparation of the mouse inner ear. J. Neurosci. Methods. 145, 73-87 (2005).
  7. Lim, R., Kindig, A. E., Donne, S. W., Callister, R. J., Brichta, A. M. Potassium accumulation between type I hair cells and calyx terminals in mouse crista. Exp. Brain Res. 210, 607-621 (2011).
  8. Camp, A. J., Callister, R. J., Brichta, A. M. Inhibitory synaptic transmission differs in mouse type A and B medial vestibular nucleus neurons in vitro. J. Neurophysiol. 95, 3208-3218 (2006).
  9. Camp, A. J., et al. Attenuated glycine receptor function reduces excitability of mouse medial vestibular nucleus neurons. Neuroscience. 170, 348-360 (2010).
  10. Briggman, K. L., Euler, T. Bulk electroporation and population calcium imaging in the adult mammalian retina. J. Neurophysiol. 105, 2601-2609 (2011).
  11. Briggman, K. L., Helmstaedter, M., Denk, W. Wiring specificity in the direction-selectivity circuit of the retina. Nature. 471, 183-188 (2011).
  12. Rennie, K. J., Streeter, M. A. Voltage-dependent currents in isolated vestibular afferent calyx terminals. J. Neurophysiol. 95, 26-32 (2006).
  13. Hudspeth, A. J., Lewis, R. S. Kinetic analysis of voltage- and ion-dependent conductances in saccular hair cells of the bull-frog, Rana catesbeiana. J. Physiol. 400, 237-274 (1988).
  14. Rennie, K. J., Ashmore, J. F. Ionic currents in isolated vestibular hair cells from the guinea-pig crista ampullaris. Hear. Res. 51, 279-291 (1991).

Play Video

Cite This Article
Tung, V. W. K., Di Marco, S., Lim, R., Brichta, A. M., Camp, A. J. An Isolated Semi-intact Preparation of the Mouse Vestibular Sensory Epithelium for Electrophysiology and High-resolution Two-photon Microscopy. J. Vis. Exp. (76), e50471, doi:10.3791/50471 (2013).

View Video