Ce protocole décrit une procédure d'explantation amélioré qui implique<em> Ex utero</em> Électroporation, la dissection et la culture de tout hémisphères cérébraux de l'embryon de souris. La préparation facilite les études pharmacologiques et des essais de la fonction des gènes au cours du développement cortical précoce.
Développement cortical implique des interactions complexes entre les neurones et les non-neuronales, y compris des éléments précurseurs de cellules, des vaisseaux sanguins, les méninges et associé matrice extracellulaire. Parce qu'ils fournissent un environnement propice organotypique, les explants tranches corticales sont souvent utilisées pour étudier ces interactions qui contrôlent la différenciation neuronale et le développement. Bien que bénéfiques, le modèle d'explant tranche peuvent souffrir d'inconvénients, y compris stratification cellulaire aberrante et la migration. Nous rapportons ici l'ensemble du système cérébral explant hémisphère pour les études du développement cortical précoce qui est plus facile à préparer que les tranches de cortex et spectacles cohérente de migration organotypique et le laminage. Dans ce système modèle, la stratification précoce et les schémas de migration se dérouler normalement pour une période de deux jours in vitro, y compris la période de séparation preplate, au cours de laquelle prospective couche corticale six formes. Nous avons ensuite développé une électroporation ex utero (EUEP)approche qui connaît un succès ~ 80% dans le ciblage expression de la GFP pour les neurones en développement dans le cortex dorsal médial.
Le modèle hémisphère explant rend développement précoce corticale accessibles pour l'électroporation, une intervention pharmacologique et des approches d'imagerie en direct. Cette méthode permet d'éviter la chirurgie de survie nécessaire d'électroporation in utero (IUEP) des approches tout en améliorant à la fois la transfection et la cohérence de surface de ciblage. Cette méthode facilitera les études expérimentales de la prolifération, la migration neuronale et de la différenciation.
Les formes de mammifères cortex cérébral à travers la prolifération, la migration concertée et la différenciation des neurones générés successivement. Chaque neurone est né dans la zone ventriculaire (VZ) et migre du VZ dans la zone intermédiaire (IZ), la formation de la plaque corticale (CP) 1. Lors de leur passage à travers les différents domaines corticaux, les neurones migrent afficher de multiples modes de migration 2,3 qui dépendent de l'environnement extracellulaire et d'autres éléments cellulaires (par exemple, la glie radiale) dans le tissu développement. Les neurones corticaux puis arrêter la migration en haut de la plaque de formage corticale dans les processus d'arrêt coïncidant migration neuronale et 4 dendritogénèse.
Développement cortical est initiée entre embryonnaires jours 11-13 (E11-13) 5 à travers la couche de mise en place primordiale plexiforme 6 ou preplate (PP), une couche de neurones pionniers qui recouvre le VZ. Éventuelcouche 6 neurones corticaux (c'est à dire les premiers neurones corticaux nés dans le VZ) puis orienter leur corps cellulaire dans un modèle stéréotypé et se fondre en une couche distincte au sein du PP 7. Ces événements diviser le preplate dans une superficielle marginale (future couche corticale 1) et une zone de profondeur, ce dernier composé de cellules sous-plaque (transitoire couche corticale 7). Ce processus, appelé le fractionnement preplate, est un événement fondamental dans la croissance future du cortex cérébral 8.
De nombreuses mutations génétiques ont été identifiés qui perturbent les différents aspects du développement cortical 9. Développement cortical peut également être affectée négativement par l'exposition à des toxines ingérées telles que la cocaïne et l'alcool 10 11. Parce que des malformations corticales qui se posent au cours du développement sont probablement contribué à des troubles neurologiques (autisme, par exemple, la schizophrénie), les enquêtes empiriques de perturbations du développement cortical sont inhérentesment important. Il est donc d'une importance considérable pour établir des approches pour étudier le développement cortical qui permet des tests rapides d'effets génétiques ou de la toxine mais aussi de préserver les interactions possibles entre les neurones de différenciation, d'autres types cellulaires et la matrice extracellulaire (ECM) au cours de cette première période de 12 le développement du cerveau .
Explants tranche 13 ont fourni un tel système et ont été largement utilisés pour analyser neurone développement cortical 14-16. Toutefois, les essais de tranche peuvent souffrir de l'inconvénient que la migration neuronale et de stratification peut être anormale 17 probablement en raison de dommages aux cellules méningées qui entourent le cerveau en développement et l'ancrage du gliales radiales échafaud. Comme radiales fibres gliales sont un substrat important pour la migration des neurones corticaux 18 rupture de la membrane basale par tranchage peut perturber localement radiale l'architecture des cellules gliales et conduire à la migration corticale altérée. En outre, le sliced surfaces d'explants fournit une région de cellules mortes qui peuvent modifier la composition normale de l'ECM dans ces domaines.
Des approches plus récentes ont concentré leur analyse sur les cellules situées au fond de la tranche qui sont entourés par des types de cellules appropriées sains et ECM. Toutefois, dans certains cas, ces nouvelles approches peuvent exiger que l'original tranche épaisse culture cryo-être sectionné ou de la paraffine après fixation de section afin que l'intérieur relativement normal de la tranche est mis à disposition pour l'analyse de 19-21. À la fois l'origine vibratome sectionnement pour préparer les tranches en direct pour la culture, ainsi que la découpe au cryostat ultérieur de tranches fixes pour l'analyse nécessitent des soins et de l'effort de ces dosages à travailler.
Pour assurer une approche simple et complémentaires pour les études du développement cortical début, nous avons modifié l'approche d'une tranche existante de 13 à faciliter les études du développement cortical précoce. Nous avons développé un whmodèle ole explant hémisphère semblable à un modèle existant E14 hémisphère qui a impliqué cultures secousses à 65 rotations par minute et permet la croissance organotypique pour 16-18 heures 22,23. Dans notre approche, les explants hémisphère entières sont placées sur membrane semi-perméable 13 avec la culture, dans une atmosphère d'oxygène à haute 21,24 organotypique de prolonger la croissance corticale pendant 48 heures. Cette approche permet également d'électroporation cohérente de développement des neurones corticaux. Les embryons sont retirés de l'utérus et une électroporation pour introduire l'ADN plasmidique et le télencéphale est ensuite découpé. Chaque hémisphère est isolé et placé côté médial vers le bas sur un filtre revêtu de collagène. L'explant est ensuite mis en culture pour une période de 48 heures, une période qui englobe 8 fractionnement preplate. Au cours de la période de culture, les neurones L6 développer à partir de précurseur de neurone différencié 25, correctement positionnée à l'intérieur de la plaque corticale. Tout au long de cette période, le développement deneurone est entouré par l'ECM approprié et des types de cellules qui face la cellule correspondant in vivo. Ce système a déjà avéré utile pour déchiffrer les événements cellulaires qui sous-tendent toxicité de l'éthanol 26, couche 6 formation et diviser preplate 7,25.
Nous avons amélioré et évalué un modèle expérimental – explants hémisphère entiers – pour l'étude du développement cortical précoce (E13-E15). Le modèle s'est révélé utile pour l'analyse de la migration et de la différenciation de la lignée neurone excitateur qui constitue la couche 6 du cortex cérébral 25,37. Les principaux avantages du système sont: 1) la croissance organotypique pour 2 DIV, 2) la simplicité de préparation, et 3) l'accès expérimental aux neurones pour…
The authors have nothing to disclose.
Ce travail a été soutenu subventions du NINDS (NS066071) et le NIAAA. (P50AA017823) à NML. Les auteurs remercient le Dr Robert Quinn et le personnel du ministère des Ressources animales de laboratoire pour le soin des animaux. Nous remercions Judson Belmont pour le support technique, Nicole Belletier de l'aide en tant que chercheur d'été de premier cycle (SURF). Nous remercions également le Dr David Cameron pour les commentaires et les modifications sur une version antérieure du manuscrit.
Name | Company | Catalog Number | Comments (optional) |
Reagents | |||
DMEM/F12 + GlutaMAX | GIBCO | 10565 | |
G5 Supplement 100X | Invitrogen | 17503-012 | |
B27 Serum-Free Suppl. 50X | Invitrogen | 1504-044 | |
Pen / Strep Liquid 100X | Invitrogen | 15140-122 | |
HBSS 500 ml | GIBCO | 14025 | |
Culture insert collagen coated | Costar | 3492 | |
Bovine skin gelatin | Sigma | G9382 | |
Hoechst 33342 | Invitrogen | H1399 | |
Bovine Serum Albumin | Sigma | 7906 | |
EndoFree Plasmid Maxi Kit | Qiagen | 12362 | |
Equipment | |||
BTX 830 Electroporator | Harvard Apparatus | 450052 | |
Tweezer electrodes 10mm | Harvard Apparatus | 450166 | |
Incubator | Billups Rothenberg | MIC-101 | |
Hamilton syringe (5 uL) | Hamilton | 87930 | |
Hamilton syringe needle | Hamilton | 7803-04 | Specify 1″ and style 4 |
Dumont #5 Forceps | FST | 11251-10 | |
Fine Scissors Tough Cut 9 cm | FST | 14058-09 |