Nós descrevemos um método de imagem ao vivo de células que fornece insights sobre a dinâmica de proteínas durante o processo de ativação de células-T. Nós demonstramos a utilização combinada de a célula T-ensaio espalhamento, microscopia confocal e análise de imagens para se obter resultados quantitativos para seguir a formação do complexo de sinalização durante a activação de células-T.
A protecção contra doenças infecciosas é mediada pelo sistema imunológico 1,2. Os linfócitos T são os coordenadores mestre do sistema imunitário, que regula a activação e respostas de várias células imunitárias 3,4. A activação das células T depende do reconhecimento de antigénios específicos apresentados por células apresentadoras de antígenos (APCs). O receptor de antigénio de célula T (TCR) é específico para cada clone de células T e determina a especificidade do antigénio 5. A ligação do TCR para o antigénio induz a fosforilação dos componentes do complexo TCR. A fim de promover a activação das células T, o sinal deve ser transduzida a partir da membrana para o citoplasma e o núcleo, inicia várias respostas cruciais tais como o recrutamento de proteínas de sinalização para o TCR; da APC (da sinapse imune), a sua activação molecular, rearranjo do citoesqueleto, a elevação da concentração de cálcio intracelular, e as alterações na expressão do gene 6,7. O correto emitiation e terminação dos sinais de activação é crucial para as respostas de células T apropriadas. A actividade das proteínas de sinalização é dependente da formação e terminação de interacções proteína-proteína, pós translacionais, tais como a fosforilação da proteína, a formação de complexos de proteína, ubiquitinação de proteínas e ao recrutamento de proteínas para vários locais celulares 8. Compreender o funcionamento interno do processo de ativação de células T é crucial para a pesquisa imunológica e aplicações clínicas.
Diversos ensaios têm sido desenvolvidas a fim de investigar as interacções proteína-proteína, no entanto, os ensaios bioquímicos, tais como o método de co-imunoprecipitação amplamente utilizado, não permitem a localização da proteína para ser discernidos, impedindo assim a observação de informações valiosas sobre a dinâmica de celular mecanismos. Além disso, estes ensaios granel geralmente combinam proteínas de muitas células diferentes que podem estar em diferentes fases da tele investigou processo celular. Isto pode ter um efeito prejudicial na resolução temporal. A utilização de imagens em tempo real de células vivas tanto permite o rastreio espacial das proteínas e a capacidade de distinguir entre os eventos de sinalização temporalmente, derramando assim luz sobre a dinâmica do processo de 9,10. Apresenta-se um método de imagem em tempo real da formação do complexo de sinalização durante a activação de células-T. As células T primárias ou linhas de células T, como Jurkat, são transfectadas com plasmídeos que codificam para proteínas de interesse fundidos a proteínas fluorescentes monoméricos, impedindo oligomerização não fisiológico 11. Vivo células T são eliminadas durante uma lamela pré-revestida com anticorpo de activação de células T 8,9, o qual se liga ao complexo CD3/TCR, indução da activação de células T ao superar a necessidade de antigénios de activação específicas. As células activadas são constantemente fotografada com a utilização de microscopia confocal. Dados de imagem são analisados para produzir resultados quantitativos, como o colcoeficiente ocalization das proteínas de sinalização.
A regulação e função de vários processos celulares dependem da formação e terminação de interacções proteína-proteína. Imagens microscópicas permite o acompanhamento em tempo real das proteínas fluorescentes marcados em células vivas. Co-localização de proteínas marcadas pode sugerir uma interacção directa ou indirecta entre as proteínas, e podem ser usados para reforçar resultados obtidos por métodos bioquímicos, tais como a imunoprecipitação. Ao contrário de métodos bioquímicos, ima…
The authors have nothing to disclose.
Os autores agradecem a Sophia Fried para assistência técnica. MBS agradece aos seguintes órgãos para o seu apoio à investigação: a Fundação Israel Ciência para bolsas no.1659/08, 971/08 de 1503/08 e 491/10, dos Ministérios da Saúde e Ciência de subvenções não. 3-4114 e 3-6540, o Israel Cancer Association através da propriedade do falecido Alexander Smidoda, e da Fundação Família Taubenblatt para a concessão excelência Bio-medicina.
Reagent/Material | Company | Catalog Number | Comments |
Amaxa human T Cell nucleofector kit | Lonza | VCA-1002 | |
Anti CD3 (UCHT1 clone) | BioLegend | 300432 | |
Falcon FACS Tubes | Becton Dickinson | 352058 | |
FCS | HyClone | SV30160.03 | |
G418 | Calbiochem | 345810 | |
German coverglass system 4 chamber slides | Lab-Tek II | 155382 | |
HCl | Bio Lab | 8410501 | |
Hepes | Biological Industries | 03-025-1B | |
Hygromycin | Enzo | ALX-380-306 | |
L-glutamine | Sigma | G7513 | |
PBS (10X) | Sigma | D1408 | |
Penicillin-Streptomycin | Sigma | P0781 | |
Poly-L-lysine 0.1% (w/v) in H2O | Sigma | P8920 | |
RPMI | Sigma | R8758 | |
Sodium azide | Sigma | S2002 | |
Equipment | |||
Accublock digital dry bath | Labnet | D1105A | |
Centrifuge | Eppendorf | Centrifuge 5810 R | |
Confocal microscope | Zeiss | LSM 510 Meta | |
Heatable mounting frame – Heating Insert P S | PeCon | 130-800-031 | |
TempModule S (required for the heatable mounting frame) | Zeiss | 411860-9010-000 | |
Electroporation device | Amaxa | Nucleofector I | |
Fluorescence activated cell sorter | Becton Dickinson | FACSVantage SE | |
Image analysis software | Bitplane | 7.0.0 |