Isolement des lymphocytes de souris muqueuses génitales Tract
Summary
Un moyen efficace pour isoler les lymphocytes de souris tractus génital est décrite. Cette méthode tire parti de la digestion enzymatique et séparation par gradient de Percoll pour permettre l'isolement efficace. Cette technique est également adaptable pour une utilisation à d'autres espèces
Abstract
Les muqueuses, y compris dans les voies gastro-intestinales, génito-urinaire, respiratoire et, fournir des portes d'entrée pour les agents pathogènes, comme les virus et les bactéries 1. Muqueuses sont également des sites inductifs dans l'hôte afin de générer une immunité contre les agents pathogènes, tels que les patchs Peyers dans le tractus intestinal et le tissu nasal lymphoréticulaire associé dans les voies respiratoires. Cette caractéristique unique permet de l'immunité des muqueuses comme un acteur incontournable du système de défense de l'hôte. De nombreuses études ont porté sur digestives et respiratoires dans les muqueuses. Cependant, il ya eu peu d'études de la reproduction des muqueuses. La muqueuse du tractus génital est le site d'infection primaire des maladies sexuellement transmissibles (MST), y compris les infections bactériennes et virales. MST sont un des problèmes de santé les plus critiques auxquels est confronté le monde d'aujourd'hui. Centers for Disease Control and Prevention estime qu'il ya 19 millions de nouveaux infectieuse chaque année aux États-Unis. STDs le coût du système de santé américain 17 milliards de dollars chaque année 2, et les individus de coûts encore plus en conséquences immédiates et à long de la vie. Pour faire face à ce défi, une meilleure compréhension de l'immunité muqueuse reproduction est nécessaire et isoler des lymphocytes est une composante essentielle de ces études. Ici, nous présentons une méthode reproductible pour isoler les lymphocytes murins de voies génitales femelles pour les études immunologiques qui peuvent être modifiés pour s'adapter à d'autres espèces. La méthode décrite ci-après est basé sur une souris.
Protocol
Discussion
Dans ce protocole, il est montré comment préparer des lymphocytes de souris voies génitales et est facilement maîtrisé. Le point le plus critique de ce processus est de maintenir la viabilité des cellules en gardant les cellules sur la glace. Le rendement cellulaire de cette méthode dépend de la technique, la gestion des compétences, le statut infectieux de la souris (ou naïve jour après l'infection), l'agent pathogène (bactérie, virus, champignon) et la section de la souris examiné l'appareil …
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Nous tenons à remercier NIH pour les subventions de financement R01-AI026328 (KAK) et R01-AI079004 (KAK).
Materials
| Name | Company | Catalogue number | |
| Collagenase | Sigma Life Sciences | C2139-1G | |
| Percoll | GE Healthcare Bio-Sciences | 17-0891-01 | |
| RPMI1640 | Gibco by Life Technologies | 11875 |
References
- M, . The impact of perinatal immune development on mucosal homeostasis and chronic inflammation. Nat. Rev Immunol. 12, 9-23 (2011).
- Centers for Disease Control and Prevention. . 2010 Sexually Transmitted Diseases Surveillance. , (2010).
- Jain, S., Patrick, A. J., Rosenthal, K. L. Multiple tandem copies of conserved gp41 epitopes incorporated in gag virus-like particles elicit systemic and mucosal antibodies in an optimized heterologous vector delivery regimen. Vaccine. 28, 7070-7080 (2010).
- Tang, V. A., Rosenthal, K. L. Intravaginal infection with herpes simplex virus type-2 (HSV-2) generates a functional effector memory T cell population that persists in the murine genital tract. J. Reprod. Immunol. 87, 39-44 (2010).
- Gillgrass, A. E., Tang, V. A., Towarnicki, K. M., Rosenthal, K. L., Kaushic, C. Protection against genital herpes infection in mice immunized under different hormonal conditions correlates with induction of vagina-associated lymphoid tissue. J. Virol. 79, 3117-3126 (2005).
- Sajic, D., Patrick, A. J., Rosenthal, K. L. Mucosal delivery of CpG oligodeoxynucleotides expands functional dendritic cells and macrophages in the vagina. Immunology. 114, 213-224 (2005).
- Jiang, J. Q., Patrick, A., Moss, R. B., Rosenthal, K. L. CD8+ T-cell-mediated cross-clade protection in the genital tract following intranasal immunization with inactivated human immunodeficiency virus antigen plus CpG oligodeoxynucleotides. J. Virol. 79, 393-400 (2005).
- Gill, N., Chenoweth, M. J., Verdu, E. F., Ashkar, A. A. NK cells require type I IFN receptor for antiviral responses during genital HSV-2 infection. Cell Immunol. 269, 29-37 (2011).
- Thatte, A., DeWitte-Orr, S. J., Lichty, B., Mossman, K. L., Ashkar, A. A. A critical role for IL-15 in TLR-mediated innate antiviral immunity against genital HSV-2 infection. Immunol. Cell Biol. 89, 663-669 (2011).
- Kwant-Mitchell, A., Ashkar, A. A., Rosenthal, K. L. Mucosal innate and adaptive immune responses against herpes simplex virus type 2 in a humanized mouse model. J. Virol. 83, 10664-10676 (2009).
- Gallichan, W. S., Rosenthal, K. L. Effects of the estrous cycle on local humoral immune responses and protection of intranasally immunized female nice against herpes simplex virus type 2 infection in the genital tract. Virology. , 224-487 (1996).
