라이브 세포 형광 현미경을 사용하여 박테리아 독소 유도 응답의 시각화
Summary
재조합에서 콜레스테롤 바인딩 독소 streptolysin O를 정화하기위한 방법<em> E. 대장균</em진핵 세포를 사는 바인딩 독소> 및 시각화가 설명되어 있습니다. 독소의 현지화 배달 독소 생물학의 소설 측면을 드러내는 대상 셀에 신속하고 복잡한 변화를 유도한다.
Abstract
세균 독소는 세포 내용과 외부 환경으로부터 물질의 유입을 누설 할 수 있도록 모공을 형성 세포막에 콜레스테롤에 바인딩. 셀은 운영 중 막 복구 프로세스가 필요합니다이 모욕, 복구, 또는 다른 독소 노출과 셀 타입 1의 양에 따라 죽을 수 있습니다. 또한 이러한 독소는 프로 염증성 크린 시토 킨 2 배열을 생산 식세포 등의 면역 세포의 활성화를 통해 감염된 호스트에 강한 염증 반응을 유도. 대부분의 그람 양성 세균은 대부분 uncharacterized 메커니즘을 통해 독성에 기여하는 표시되었습니다 콜레스테롤 구속력이 독소를 생성합니다.
이러한 독소에 노출 세포의 플라즈마 막에 Morphologic 변화는 본질적인 세포 방어를 제안, 세포 공간으로 발산 할 수 있습니다 콜레스테롤 강화 표면 돌기들에 대한 자신의 격리를 포함메커니즘 3,4. 이 과정은 신진 대사 활동의 부재에있는 모든 세포에서 발생, 화학 고정 (4) 후 EM을 사용하여 시각화 할 수 있습니다. 이러한 독소 노출에 대한 응답으로 염증을 중재 대 식세포와 같은 면역 세포에서 유도 막 소포는 IL-1 가족의 크린 시토 킨를 포함하도록 제안하고 독소를 흘리는 이러한 프로 염증성 크린 시토 킨 5,6,7을 전파 모두에 책임이있을 수 있습니다. 모두 8 caspase-1에 의존 프로세스입니다으로 IL-1β 자료 및 세포 죽음의 특정 유형 사이의 링크를 칭했다 pyroptosis이 제안되었습니다. 막 소포의 독소 바인딩, 개구, 시토 킨 릴리스, 그리고 잠재적으로 세포 사망을 포함이 대 식세포 반응의 복잡성을 해결하기 위해, 우리는 다음과 같은 독소 세포의 상호 작용 실시간으로 시각화 할 수 있도록 라벨 기술과 형광 현미경 방법을 개발 장애와 죽음의 측정 (그림 1). 사용라이브 셀 이미징의 다른 기술의 한계로 인해이 필요합니다. 유동 세포 계측법은 개별 세포의 고해상도, 실시간 시각화를 제공하지 않습니다 동안 생화학 접근 방법은 개별 셀에서 발생하는 효과를 확인할 수 없습니다. 여기에 설명 된 방법은 세포에서 복잡한 phenotypic 변화를 포함하는 다른 자극에 의해 유도 반응의 운동 분석에 적용 할 수 있습니다.
Protocol
Representative Results
Discussion
기술은 박테리아 독소에 대한 면역 세포의 반응을 시험 할 수 여기에 설명했다. 가장 중요한 단계는 독소의 처리와 주입합니다. 독소 활동도의 취약성으로 인해 같은 준비의 다른 aliquots 사이에 매우 변수가 될 수 있습니다. 이 중 참조 셀 라인 또는 적혈구에 대한 독소의 각 나누어지는을 테스트하거나 독소의 그라디언트를 사용하여 필요로. 독소 그라디언트는 등 micropipette에 의해 전달, 실시간?…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
저자는 기술 지원을 SLO 플라스미드와 조나단 프랭크의 관대 한 선물 anthrolysin O, 마이클 Caparon의 관대 한 선물 리처드 휴식을 감사드립니다. 이 작품은 NIH 보조금 T32CA82084 (박), 그리고 R01AI072083 (RDS)에 의해 재정 지원되었다.
Materials
| Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments (optional) | ||||||||||||||||||
| Ni-NTA agarose | Qiagen | 30210 | |||||||||||||||||||
| polymixin-agarose | Sigma | P1411-5ML | |||||||||||||||||||
| Zeba Desalt Spin col | Fisher | PI-89891 | |||||||||||||||||||
| sheep RBCs | Fisher | 50-415-688 | |||||||||||||||||||
| pBADgIII-SLO | N/A | N/A | see ref9 | ||||||||||||||||||
| Cy5 monoreactive dye | GE Healthcare | PA25001 | |||||||||||||||||||
| Fura2-AM | Life Technologies | F1221 | |||||||||||||||||||
| Calcein AM/ Ethidium homodimer | Life Technologies | L3224 | |||||||||||||||||||
| Anti-CD11c-APC | BD Biosciences | 550261 | |||||||||||||||||||
| collagen-coated glass-bottom dish | Mattek | P35GCol-1.5-10-C | |||||||||||||||||||
| femto-tip II | Fisher | E5242957000 | |||||||||||||||||||
| Microloader | Fisher | E5242956003 | |||||||||||||||||||
| dextran Alexa 555 | Life Technologies | D34679 | |||||||||||||||||||
| Injectman NI 2 | Eppendorf | 920000029 | |||||||||||||||||||
| FemtoJet | Eppendorf | 5247 000.013 | |||||||||||||||||||
Table 1. List and source of specific reagents and equipment needed. Specific equipment and reagents used in this protocol, along with company and catalogue number are listed. |
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Table 2. List of buffers used in this protocol. The buffers used, their composition and the first step at which they are used in the protocol are listed. |
References
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