De snelle ontwikkeling, de kleine oppervlakte en de transparantie van de zebravis zijn enorme voordelen voor de studie van aangeboren immuunsysteem controle op infecties<sup> 1-4</sup>. Hier laten we zien technieken voor het infecteren van zebravis larven met behulp van de schimmel<em> Candida albicans</em> Door micro-injectie, de methodologie voor kort gebruikt om fagocytensysteem NADPH oxidase activiteit betrokkenheid bij de controle van schimmel dimorfisme<sup> 5</sup>.
Verspreid candidiasis door het pathogeen Candida albicans een klinisch belangrijke probleem opgenomen personen en is verbonden met 30 tot 40% aan mortaliteit 6. Systemische candidiasis wordt normaliter gestuurd door aangeboren immuniteit, en personen met genetische defecten bij aangeboren immuunresponsen cel componenten, zoals fagocytensysteem NADPH oxidase zijn vatbaarder voor candidemia 7-9. Er is weinig bekend over de dynamiek van C. albicans interactie met aangeboren immuunsysteem cellen in vivo. Uitgebreide in-vitro studies hebben aangetoond dat buiten de gastheer C. albicans kiemt binnenzijde van macrofagen en wordt snel vernietigd door neutrofielen 10-14. In vitro studies zijn nuttig, kan het complex niet vatten in vivo omgeving, tijdsafhankelijke dynamiek van cytokineniveaus, extracellulaire matrix bijlagen en intercellulaire contacten 10 omvat, 15-18 </sup>. Om sonde de bijdrage van deze factoren in gastheer-pathogeen interactie, is het essentieel om een model organisme te vinden voor deze aspecten van de infectie te visualiseren niet-invasieve in een live intact host.
De zebravis larve biedt een unieke en veelzijdige gewervelde gastheer voor de studie van de infectie. Voor de eerste 30 dagen van de ontwikkeling zebravis larven hebben alleen aangeboren afweersysteem 2, 19-21, de vereenvoudiging van de studie van ziekten zoals gedissemineerde candidiasis die sterk afhankelijk zijn van aangeboren immuniteit. Het kleine formaat en de transparantie van de zebravis larven kunnen beeldvorming van de infectie dynamiek op cellulair niveau voor zowel de gastheer en ziekteverwekker. Transgene larven met fluorescerende aangeboren immuunsysteem cellen kunnen worden gebruikt om bepaalde types cellen betrokken bij infectie 22-24 identificeren. Gemodificeerde antisense oligonucleotiden (Morpholinos) kan worden gebruikt voor het neerslaan verschillende immuun componenten zoals fagocyt NADPH oxidase en bestuderen als reactie op Fungal infectie 5. In aanvulling op de ethische en praktische voordelen van het gebruik van een kleine lagere gewervelde, de zebravis larven biedt de unieke mogelijkheid om het imago van de veldslag tussen pathogeen en gastheer zowel intravitally en in kleur.
De zebravis is gebruikt om het model-infectie voor een aantal menselijke pathogene bacteriën, en heeft bijgedragen tot de grote vooruitgang in ons begrip van mycobacteriële infectie 3, 25. Echter, pas onlangs hebben veel grotere pathogenen zoals schimmels zijn gebruikt om larven te infecteren 5, 23, 26, en tot op heden is er geen sprake van een gedetailleerde visuele beschrijving van de infectie methodologie. Hier presenteren we onze technieken voor achterhersenen ventrikel micro-injectie van prim 25 zebravis, met inbegrip van onze wijzigingen naar de vorige protocollen. Onze bevindingen met behulp van de larven zebravis model voor een schimmelinfectie afwijken van de in vitro studies en versterken de noodzaak om de gastheer-pathogeen Intera te onderzoekenActies in de complexe omgeving van de gastheer in plaats van de vereenvoudigde regeling van de petrischaal 5.
De zebravis micro-injectie methode hier gepresenteerde verschilt van Gutzman et al.. 34 in dat we hier laten zien injectie door de otic blaasje in de achterhersenen ventrikel van 36 tot 48 hpf larven. De methode beschreven zorgt voor consistente injectie van 10-15 gist in het achterhersenen ventrikel met verminderde weefselbeschadiging. Dit protocol levert een eerste lokale infecties die door het lichaam verspreiden met 24 hpi (figuur 1) en resulteert in significante letaliteit / mor…
The authors have nothing to disclose.
De auteurs willen graag naar het laboratorium van Dr Carol Kim te bedanken voor micro-injectie opleiding, Clarissa Henry voor advies over de bespoediging ontwikkeling van het embryo en het gebruik van apparatuur, en Nathan Lawson om bij te dragen fli1: EGFP vis. Wij danken de leden van de Wheeler lab en Shawn Muren voor de kritische lezing van het manuscript. Wij zouden ook graag Mark Nilan voor vissen zorg en advies, en Ryan Phennicie en Kristin Gabor bedanken voor technisch advies over dit project. Dit werk werd gefinancierd door een MAFES onderzoek assistentschap aan K. Brothers, een MAFES Hatch subsidie E08913-08, en een NIH NCRR award P20RR016463 naar R. Wheeler.
Name of the reagent | Company | Catalog number | Comments (optional) |
Spawning tanks | Aquatic habitats | 2L | |
1.7 mL tubes | Axygen | MCT-175-C | |
Instant Ocean | Fisher Scientific | S17957C | |
Extra deep Petri dishes | Fisher Scientific | 08-757-11Z | |
Standard Petri dishes | VWR Scientific | 25384-302 | |
Transfer pipettes | Fisher Scientific | 13-711-7M | |
Yeast Extract | VWR Scientific | 90000-726 | |
Peptone | VWR Scientific | 90000-264 | |
Dextrose | Fisher Scientific | D16-1 | |
Agar | VWR Scientific | 90000-760 | |
Disposable Hemocytometer | VWR Scientific | 82030-468 | |
Phosphate Buffered Saline | VWR Scientific | 12001-986 | |
Dumont Dumoxel Tweezers | VWR Scientific | 100501-806 | |
Wooden Dowels | VWR Scientific | 10805-018 | |
KimWipes | VWR Scientific | 300053-964 | |
Low Melt Agarose | VWR Scientific | 12001-722 | |
Agarose for injection dishes | VWR Scientific | 12002-102 | |
Flaming Brown Micropipette Puller | Sutter Instruments | P-97 | |
Hollow glass rods | Sutter Instruments | BF120-69-10 | For glass rods smooth glass by heating over bunsen burner |
Pipette Storage Box | Sutter Instruments | BX10 | |
MPPI-3 Injection system | Applied Scientific Instrumentation | MPPI-3 | |
Back Pressure Unit | Applied Scientific Instrumentation | BPU | |
Micropipette Holder kit | Applied Scientific Instrumentation | MPIP | |
Foot Switch | Applied Scientific Instrumentation | FSW | |
Micromanipulator | Applied Scientific Instrumentation | MM33 | |
Magnetic Base | Applied Scientific Instrumentation | Magnetic Base | |
Tricaine methane sulfonate | Western Chemical Inc. | MS-222 | |
Dissecting Scope | Olympus | SZ61 top SZX-ILLB2-100 base | |
Confocal Microscope | Olympus | IX-81 with FV-1000 laser scanning confocal system | |
TC-7 Tissue Culture Roller drum with 14 inch test tube wheel | New Brunswick Scientific | TC-7 | |
Imaging Dishes | MatTek Corporation | P24G-1.0-10-F | |
Pipette tips for loading needles | Eppendorf | 930001007 | |
Plate pouring grids | Adaptive Science Tools | TU-1 | |
Heated Stage | Bioptechs Inc. | Delta T-5 | |
Flat Spatula | VWR Scientific | 82027-486 | |
Plastic Sieves | Wares of Knutsford Online | 12 cm | |
Parafilm | VWR Scientific | 52858-000 | |
Vortex Genie | VWR Scientific | 14216-184 | |
16 x 150 mm Culture tubes | VWR Scientific | 60825-435 | |
Nanodrop | Thermo Scientific | ND 2000 | |
Phenol Red | VWR Scientific | 97062-478 | |
HCl | VWR Scientific | 87003-216 | |
NaCl | VWR Scientific | BDH4534-500GP | |
KCl | VWR Scientific | BDH4532-500GP | |
MgSO4 | VWR Scientific | BDH0246-500GP | |
Ca(NO3)2 | VWR Scientific | BDH0226-500GP | |
HEPES | VWR Scientific | BDH4520-500GP | |
Morpholinos | GeneTools, LLC |