マウスにおける腔内中大脳閉塞モデルは、本明細書に提示されます。脳梗塞の程度は、神経学的スコアとクレジルバイオレット染色は、TTCに代わる染色、並列多くの関心マーカーでテストする大きな利点を提供することによって評価されます。
脳卒中は死亡率と世界の障害の主要な原因の3番目の原因である。すべてのストロークの約80%、虚血性脳卒中を占めています。しかし、血栓溶解組織プラスミノーゲンアクチベーター(tPA)が存在する急性虚血性脳卒中の唯一の治療法です。これは、研究者は、様々な種のいくつかの虚血性脳梗塞モデルを開発するために導いた。齧歯類モデルの2つの主要なタイプが開発されている:全脳虚血または限局性脳虚血のモデル。患者における虚血性脳卒中を模倣するために、誰に約80%の血栓または塞栓性脳卒中が中大脳動脈(MCA)の領土で発生し、管腔内中大脳動脈閉塞(MCAO)モデルでは、脳卒中の研究に大いに関係があります。このモデルは第一小泉らがラットで開発された、1986年1インチそのため、マウスにおける遺伝子操作のしやすさのために、これらのモデルは、この種の2-3に開発されてきた。
このような先端径、長さ、形状、柔軟性などオクルダーの物性は梗塞容積4の再現のために重要であることをコンテンツ">ここで、我々はC57/BL6マウスにおける過渡MCA閉塞手順を紹介します。これまでの研究で報告されています。ここで、商用シリコンコーティングされたモノフィラメント(Doccolコーポレーション)が使用されている。もう一つの大きな利点は、このモノフィラメントは、くも膜下出血を誘発する危険性を減少させるということです。ツァイスステレオ顕微鏡STEMI 2000を使用し、シリコンコーティングされたモノフィラメントは内頚動脈に導入されました(ICA)を外頸動脈(ECA)のカット経由モノフィラメントは、MCAのベースを閉塞するまで血流は血栓塞栓症における血栓の溶解後の血流の回復を模倣するためにモノフィラメントを除去して1時間後に復元されました人間。脳梗塞の範囲は、神経学的スコアにより、梗塞体積の測定によって最初に評価することができる。虚血マウスは、このように異なる後再灌流時々彼らの神経学的スコアを分析した。 2,3,5 – トリフェニルテトラゾリウムクロライド(TTC)で染色し、梗塞体積を評価するために通常行われた。それは免疫組織化学によって多くの重要なマーカーをテストする機会を提供していますのでここで、我々はクレシルバイオレット染色を使用していました。このビデオでは、MCAO手順を報告し、神経学的スコアとクレシルバイオレット染色による梗塞体積の評価。異なるストロークモデルは患者の脳卒中の影響を模倣するために開発されてきた。ストロークモデルの選択は、生物学的な問題に応じて異なります。腔内MCAOモデルは、患者における虚血性脳卒中の最も一般的なタイプのいずれかを模倣し、田村モデル4,7と比較して低侵襲、より一貫性があります。それは、神経保護、neurorepairと細胞死の解析のための本当に興味深いモデルです。腔内モデルの成功は、制御されなければならないような動物の性別、年齢、体重、体温、麻酔や手術の時のような多くの要因に依存します。オクルーダ(先端径、長さ、形状及びfexibility)の物理的な礼儀はMCAO 4の整合性を保つために重要です。ここで、我々はDoccolコーポレーション9〜10ミリメートル上にシリコンでコーティングされた12ミリメートル、長さ6から0モノフィラメントを使用しています。その長さはすべてのICAを覆ったので、このモノフィラメントの大きな利点は、くも膜下出血を減少させることであると長さは、ウィリスとPPAのサークルの前部と後部の通信動脈から来る残留血流が防止及び梗塞体積が減少する(我々の手の変動の15%)8の変動しています。 CCAの縫合も梗塞容積9の変動を減少させます。
tMCAO後の脳損傷の程度は様々な方法によって評価することができる。前述したように神経学的欠損を測定することができます。しかし、それはこのようにすることで、効率的な対策を持っていることは困難である。梗塞の範囲は、一般的にTTC染色によって実行されます。さらに最近では、磁気共鳴技術はまた、神経保護治療のために特に興味深い技術を使用しています。そのようなneurorepair、細胞死や細胞増殖、脳卒中に関与基礎細胞のメカニズムを理解するために、免疫組織化学によって異なるマーカーの研究は重要で非常に有益です。したがって、我々のprotoc脳切片標本のOLは、これらの分析を可能にするという大きな利点を持っており、使用したマウスの数を最小限に抑えます。また、Tureyen ら 10クレシルバイオレット染色とTTCとの間に良好な相関関係があることが報告されています。
The authors have nothing to disclose.
本研究では、CIHRチームグラント#82946のCTP、CIHR助成#102741、MOP、ならびにカナダの椅子#216684とストラウス財団によってサポートされていました。 ERは、カナダのハート&ストローク財団からフェローシップによってサポートされていました。
Description | Company | Catalogue number |
Stereo microscope | Zeiss | Stemi 2000 |
Fiber-Light High Intensity Illuminator | Dolan-Jenner Industries Inc. | |
Anesthesia system for isoflurane | ||
Isoflurane | CDMV | 108737 |
Heating blanket | Gaymar Medsearch | TP22G |
Infrared heating lamp | ||
Ultra fine tweezers, style 5 | Electron Microscopy Sciences | 78320-5TI |
Vannas Scissors 3 mm Cutting Edge, Straight | Electron Microscopy Sciences | 72932-01 |
Style LA-1 and MPF-1 All smooth blades | Electron Microscopy Sciences | 77926-5S |
Negative action tweezers, style KOPINC 5 | Electron Microscopy Sciences | 72850-F |
Dissecting scissors 5 1/2″ Straight | Cedarlane | 72960 |
Autoclip starter set | Harvard apparatus | 34-0557 |
BD Autoclip Wound Closing Syst., 9mm long,100/pk | Fisher | 01-804-5 |
5-0 suture | Harvard apparatus | 517763 |
Suture material PDS II monofilament violet, 5-0, RB-1; Z303H | CDMV | 6167 |
12 mm-long 6-0 silicon-coated monofilament suture | Doccol Corporation | 60SPRePK5 |
Seringes 1ml | Fisher | 14-823-2F |
Needles 26G1/2 | Fisher | BD-305111 |
C57BL/6 mice | IRCM |