Mycobacterium tuberculosis bildet Wirkstoff toleranten Biofilme, wenn unter bestimmten Bedingungen kultiviert. Hier beschreiben wir Verfahren zur Kultivierung von M. Tuberkulose Biofilmen und die Bestimmung der Häufigkeit des Drogenkonsums tolerant persisters. Diese Protokolle werden für weitere Studien sinnvoll in die Mechanismen der Verträglichkeit der Medikamente in M. Tuberkulose.
Mycobacterium tuberculosis, dem Erreger der menschlichen Tuberkulose, hat eine außerordentliche Fähigkeit, gegen Umweltbelastungen einschließlich Antibiotika überleben. Obwohl Stresstoleranz von M. Tuberkulose ist eine der wahrscheinlich Mitwirkenden an den 6-monatigen Chemotherapie der Tuberkulose ein, bleiben die molekularen Mechanismen dieser charakteristischen Phänotyp des Erregers unklar. Viele mikrobielle Spezies entwickelt haben, um in stark beanspruchenden Umgebungen von sich selbst organisierenden überleben in hoch organisierten, Oberfläche angebracht und Matrix eingekapselt Strukturen, so genannte Biofilme 2-4. Das Wachstum in den Gemeinden scheint eine bevorzugte Überlebensstrategie von Mikroben sein, und wird durch genetische Komponenten, die Oberfläche Befestigung, interzelluläre Kommunikation, und die Synthese von extrazellulären polymeren Substanzen (EPS) 5,6 Regulierung erreicht. Die Toleranz gegenüber widrigen Umweltbedingungen wird wahrscheinlich durch EPS erleichtert, und vielleicht durch die physiogische Anpassung einzelner Bazillen auf heterogene Mikroumgebung innerhalb der komplexen Architektur von Biofilmen 7.
In einer Reihe von neueren Arbeiten haben wir festgestellt, dass M. tuberculosis und Mycobacterium smegmatis haben eine starke Neigung, in organisierten vielzelligen Strukturen wachsen genannten Biofilmen, die vertragen mehr als 50 Mal können die minimalen Hemmkonzentrationen der Anti-Tuberkulose-Medikamente Isoniazid und Rifampicin 10.08. M. Tuberkulose, aber faszinierend erfordert spezielle Bedingungen, um reife Biofilme, insbesondere 9:1-Verhältnis von Headspace bilden: Medien sowie eingeschränkte Luftaustausch mit der Atmosphäre 9. Bedarf an spezialisierten Umweltbedingungen könnte möglicherweise auf die Tatsache, dass M. verknüpft werden Tuberkulose ist ein obligat humanpathogene und damit hat sich um Gewebe-Umgebungen angepasst. In dieser Veröffentlichung zeigen wir Methoden zur Kultivierung von M. TuberkuloseBiofilme in einer Flasche und einer 12-Well-Platte-Format, die bequem für bakteriologische sowie genetische Studien ist. Wir haben das Protokoll eines abgeschwächten Stamm von M. beschriebenen Tuberkulose, mc 2 7000, mit einer Deletion in den zwei Loci, panCD und RD1, die kritisch für die in vivo das Wachstum des Erregers 9 sind. Dieser Stamm kann sicher in einer BSL-2 Containment werden für das Verständnis der biologischen Grundlagen der Tuberkulose-Erreger wodurch die Anforderung eines teuren BSL-3-Anlage verwendet. Die Methode kann erweitert werden, mit entsprechenden Modifikationen in den Medien, um Biofilm von anderen kultivierbaren Mykobakterien wachsen.
Insgesamt wird ein einheitliches Protokoll zur Kultivierung von Mykobakterien Biofilmen helfen den Ermittlern bei der Untersuchung der grundlegenden elastischen Eigenschaften von Mykobakterien interessiert. Darüber hinaus wird eine klare und präzise Verfahren zur Züchtung von Mykobakterien Biofilme auch helfen, die klinische und pharmazeutische investigators zur Prüfung der Wirksamkeit eines potentiellen Arzneimittels.
Tuberkulose (TB), durch die Infektion von Mycobacterium tuberculosis verursacht wird, bleibt eine große Bedrohung für die globale öffentliche Gesundheit. Fast ein Drittel der Weltbevölkerung schätzungsweise asymptomatisch durch den Erreger infiziert werden, zeigen etwa 9 Millionen neue Fälle in Klinik jedes Jahr mit den Symptomen einer aktiven TB und rund 1,7 Millionen sterben an der Infektion jedes Jahr 11. Die enorme Belastung der Krankheit ist in erster Linie durch einen Mangel an einem Impf…
The authors have nothing to disclose.
Die Arbeit wurde mit finanzieller Unterstützung durch die National Institutes of Health und American Lung Association durchgeführt.
Equipment and supplies | SUPPLIER | CATALOG NUMBER |
Incubator | VWR | Model # 1923/25 |
Polystyrene culture bottles | Fisher Scientific | 03-374-300 |
12-well tissue culture plate | VWR | 62406-165 |
50-mL conical tubes | VWR | 89039-660 |
Rocker | Thermo Scientific | 57019-662 |
Chromatographic refrigerator | VWR | 55702-520 |
petri dish | VWR | 25384-342 |
REAGENT | SUPPLIER | CATALOG NUMBER |
KH2PO4 (monobasic) | EMD | PX1565-1 |
MgSO4 | Fisher | M65-500 |
L-asparagine | Sigma | A4284-100G |
citric acid | Sigma | C1857-100G |
ferric ammonium citrate | Sigma | F5879-100G |
glycerol | EMD | GX0185-5 |
NaOH | Sigma | S8045-500G |
ZnSO4 | Sigma | Z4750-500G |
D-pantothenic acid | Sigma | P2250-25G |
Difco Middlebrook 7H9 Broth | Becton Dickinson | 271310 |
Middlebrook OADC Enrichment | BBL | 212351 |
Tween-80 | Fisher | T164-500 |
250mL storage bottle | Corning | 430281 |
12 well plates | Falcon (BD) | 353043 |
rifampicin | Sigma | R3501-1G |
methanol | J.T. Baker | 9070-05 |
10mlLsyringe | Becton Dickinson | 301604 |
1-200μL pipet tips | VWR | 89079-458 |
parafilm M | VWR | PM-996 |
15mL centrifuge tube | Greiner Bio-One | 188-285 |
Difco Mycobacteria 7H11 Agar | Becton Dickinson | 283810 |
NaCl | Fisher | BP358-1 |
KCl | Sigma | P9333-500G |
Na2HPO4 (dibasic) | Sigma | S0876-500G |