Elektrophysiologische Charakterisierung von neuronalen Antworten ist für das Verständnis der Gehirnfunktion und für das Führen der Anordnung von Farbstoffen für die Ablaufverfolgung Weg wichtig. Allerdings sind viele Studien an narkotisierten Tieren durchgeführt. Um die Hirnfunktion ohne Betäubung zu verstehen, entwickelten wir eine Methode, um neuronale Antwort Eigenschaften zu erfassen und zu injizieren Farbstoffe in wach-Maus.
Es ist bekannt, dass die Narkose Nervenreaktion Eigenschaften verändert in verschiedenen Regionen des Gehirns. 13. Im auditorischen System werden grundlegende Eigenschaften der Reaktion Neuronen des Hirnstamms einschließlich Schwelle, Frequenz Spezifität und inhibitorischen Seitenbänder in signifikanter Weise unter Narkose 2.1 verändert. Diese Beobachtungen veranlassten Physiologen an Möglichkeiten, von einzelnen Neuronen, ohne dass die Kontamination Auswirkungen der Narkose aufnehmen zu suchen. Ein Ergebnis war ein decerebrate Herstellung, wobei der Hirnstamm vollständig auf der Ebene der Mittelhirn 4 wurde durchtrennt. Die Nachteile dieser Vorbereitung sind eine gewaltige Operation, die Beseitigung der absteigenden Projektionen aus dem Vorderhirn, und die Unfähigkeit, sensorische Stimulation zu verwenden, um Strukturen oberhalb des Mittelhirns zu untersuchen. Eine andere Strategie bestand darin, Elektroden-Arrays chronisch implantieren, um aus einzelnen Neuronen und Mehrfach-Cluster aufnehmen, während das Tier wach ist und / oder verhalten 5,6 </sup>. Diese Techniken sind jedoch nicht kompatibel mit Tracer-Injektion von Farbstoffen nach dem ersten elektrophysiologisch Charakterisierung einer Hirnstruktur. Um zu vermeiden, zu verändern neuronale Antwort Eigenschaften mit Anästhetika während der Aufzeichnung von elektrophysiologischen Reaktion Eigenschaften einzelner Neurone, haben wir eine Kopfstütze Technik lange in Fledermäuse 09.07 bis 12.10 Maus verwendet werden, angepasst. Mit dieser Methode können wir elektrophysiologische Ableitungen über mehrere Tage in der nicht narkotisierten Maus befragen. Am Ende der Aufnahme-Sessions, können wir dann einen Farbstoff zu injizieren Elektrodenpositionen und Aufzeichnung Seiten zu rekonstruieren oder ein Tracer injiziert, so dass Wege von und zu den Aufnahme-Loci bestimmt werden kann. Diese Methode erlaubt es gut isoliert einzelnes Neuron Aufnahmen über mehrere Tage ohne den Einsatz Anästhetika.
Der Vorteil des Kopf-post-Rückhaltesystem für elektrophysiologische und neuroanatomische Experimente in der Maus ist, dass Experimente mit nicht narkotisierten, wach Mäusen durchgeführt werden kann, sodass potenzielle Reaktion Kontamination durch Anästhetika. Darüber hinaus kann der Aufbau über mehrere Tage verwendet werden, um eine effizientere Nutzung von Tieren zu ermöglichen.
Die meisten Komponenten für den Kopf-Beitrag zur Verfügung off-the-shelf. Nur der Kopf-post-und Vorrich…
The authors have nothing to disclose.
Unterstützt durch NSF 0920060, NIH DC004395, NHMRC Zuschuss 1009482, NSW Office of Science and Medical Research, und dem Passe Garnett und Rodney Williams Memorial Foundation.
Name | Company | Catalogue number | Comments |
Etch gel for cleaning skull prior to dental cement | Henry Schein | 101-5396 | 12/pk with 1.2 mL syringes |
Primer for dental cement | Kerr Optibond | 25881 | 8 mL bottle |
Adhesive for dental cement | Kerr Optibond | 25882 | 8 mL bottle |
Applicators for dental cement | Kerr Optibond | 24680 | 200/pk |
Dental Cement | Charisma, Heraeus Kulzer | 66000085 | 4gm Syringe Refill |
Tungsten Rod (Ground Pin) | A-M Systems | 717200 | 0.010″ diameter |
Economy UV Curing Light | Henry Schein | CU-80 | |
Head-post | Built in-house | ||
Mounting bar | Built in-house | ||
Mounting block | Built in-house | ||
Stereotaxic Frame | David Kopf Instruments | 902 | |
Mouse and Neonatal Rat Adaptor | Stoelting | 51625 | |
Deltaphase Isothermal Pad | Braintree Scientific, Inc. | 39DP |