El CompoZr personalizado nucleasa dedo de zinc (ZFN) Servicio permite la edición precisa en el genoma de cualquier organismo o línea celular en cualquier lugar definido por el usuario. En este artículo se describe el proceso para el diseño, fabricación, validación e implementación del Servicio de CompoZr ZFN personalizado.
Genoma de edición es una potente técnica que puede utilizarse para dilucidar la función del gen y la base genética de la enfermedad. Gen tradicional de edición de métodos tales como la química basada en la mutagénesis aleatoria o la integración de secuencias de ADN confieren los cambios genéticos indiscriminados de una manera ineficiente en general y requerir la incorporación de secuencias sintéticas no deseados o el uso de aberrantes condiciones de cultivo, lo que podría confundir a los estudios biológicos. Por el contrario, la expresión transitoria ZFN en una célula puede facilitar precisa, heredable edición gen de una manera altamente eficiente sin la necesidad de administración de productos químicos o la integración de los transgenes sintéticos.
Nucleasas de dedos de zinc (ZFNs) son enzimas que se unen y cortar secuencias diferentes de ADN de doble cadena (dsDNA). Una unidad funcional CompoZr ZFN consta de dos proteínas monoméricas individuales que se unen un ADN "medio-sitio" de aproximadamente 15-18 nucleótidos (ver Figura 1). Cuando dos ZFN monodores "casa" a sus lugares de destino adyacentes a los dominios de escisión del ADN-dímeros y crear un salto de doble cadena (DSB) en el ADN. 1 Introducción de ZFN mediadas DSBs en el genoma establece una base para la edición de genoma altamente eficiente. Reparación imperfecta de DSBs en una celda a través de la de extremos no homólogos a participar (NHEJ) vía de reparación del ADN puede dar lugar a pequeñas inserciones y deleciones (indeles). Creación de indeles dentro de la secuencia del gen codificante de una célula puede resultar en marco de lectura y posterior nocaut funcional de un locus del gen en una alta eficiencia. 2 Aunque este protocolo se describe el uso de ZFNs para crear un gen knockout, la integración de los transgenes también puede llevarse a cabo a través homología dirigida reparación en el sitio de corte ZFN.
El CompoZr personalizado ZFN servicio representa un enfoque sistemático, integral y bien caracterizado-en la edición dirigida de genes para la comunidad científica con la tecnología ZFN. Sigma científicos trabajan en estrecha colaboración con los investigadores a 1) perforaciónEl análisis rm debida diligencia incluye el análisis de la estructura del gen correspondiente, la biología, y el sistema de modelo de acuerdo con las metas del proyecto, 2) aplicar este conocimiento para desarrollar una buena estrategia dirigida, 3) a continuación, diseñar, construir, validar y funcionalmente ZFNs para la actividad en una importante la línea celular. El investigador recibe ADN genómico positivo control y cebadores, y listo para usar reactivos ZFN suministrados tanto en el ADN plásmido e in vitro formato ARNm transcrito. Estos reactivos pueden entonces ser entregado para la expresión transitoria en la línea celular del investigador o tipo de célula de elección. Las muestras se ensayan para la edición en el locus del gen de interés mediante técnicas estándar de biología molecular, incluyendo la amplificación por PCR, digestión enzimática, y la electroforesis. Después de señal positiva para la edición de gen se detecta en la población inicial, las células son de una sola célula clonado y genotipo para la identificación de clones mutantes o alelos.
Una vez modificados ZFN células son aisladas tienen permanente y hereditaria modificaciones del ADN. Esto da como resultado la capacidad de generar líneas de células establemente modificados o animales de raza con modificaciones genéticas deseadas para llevar a cabo la investigación. CompoZr ZFNs personalizados proporcionan un método robusto para el genoma de edición en una amplia variedad de tipos de células. La publicación del genoma de la edición con éxito ZFNs incluye pero no se limita a las líneas celulares humanas, ratón, rata, el pez cebra, la rana, porcina y los modelos de CHO de investigación. 3,4,5,6,7,8,9 La capacidad de crear un bicatenario descanso en el sitio diana deseado en el tipo de célula especificada está asegurada cuando los ZFNs están debidamente entregado en una celda. También es posible realizar secuenciales modificaciones dedos de zinc a una celda con el fin de tener más de una modificación genética dentro de una célula. 10 La capacidad de seleccionar una secuencia diana específica y sólo modificar ese locus particular, es una causa principal de la capacidad de crear múltiples modificacionescationes.
El certificado de ZFN CompoZr personalizado de análisis se genera con los reactivos mismos incluidos en el kit asegurando así que todos los componentes del kit han sido ampliamente validado para el éxito del cliente. Los pasos críticos del flujo de trabajo de principio a fin se presentan a continuación:
Clonación celular
La capacidad de aislar y expandir una línea celular determinada debe ser probado antes de comenzar cualquier experimento ZFN. Las células individuales deben ser aislados y ampliado para garantizar que una población clonal derivado es posible. Algunas líneas celulares son recalcitrantes en esta materia, y los trucos como el enriquecimiento de los clones editados, o cultura con los medios de comunicación acondicionado pueden ayudar a superar estos retos.
Entrega la eficiencia
Optimización de la eficiencia en la entrega es una necesidad antes de la entrega de los ZFNs. Muchos métodos se pueden utilizar como base de lípidos de la transfección, electroporación, y nucleofectisucesivamente. El método de entrega ideal se compone de un que permite la mezcla óptima de la eficacia del suministro y la supervivencia celular. La cuantificación de estas eficiencias se puede estimar mediante la entrega de un control de plásmido GFP y cuantificar mediante inspección visual o FACS 24-48hrs después de la entrega.
Cel-I de ensayo
Es imperativo que Cel-I ensayo se realiza en paralelo con los controles adecuados para asegurar que los parámetros de PCR, la digestión y electroforesis no interfiera con la interpretación de experimento ZFN. Cada kit incluye control de ADN genómico que se utiliza para crear la imagen de Cel-I en el certificado de análisis. La amplificación del ADN con los cebadores de control previstas seguidas por Cel-I del ensayo le permitirá al usuario comparar los resultados con lo establecido en el Certificado de Análisis (COFA) de la imagen, y aislar los posibles ineficiencias en este aspecto de un experimento. Un adecuado control negativo, como una maqueta, o las buenas prácticas agrarias de células tratadasmuestra también deben ser incluidos para permitir la elucidación de los productos de escisión no específicos.
Cualitativa / cuantitativa de análisis de una sola célula de los clones
Después del tratamiento ZFN y la clonación de células individuales, las poblaciones de células pueden ser examinados para la edición en el locus de interés por un número de métodos. Cel.-I ensayo puede llevarse a cabo en el ADN genómico a partir de clones con el fin de identificar clones candidatos para el genotipado adicional. Es importante espiga WT amplificación de PCR en los amplicones de muestra en una proporción de 1:1 antes de realizar la Cel-I digerir como clones mutantes homocigóticas contendrá moléculas homogéneas, y por lo tanto transmitir una negativa Cel-I ensayo resultado. Un método alternativo para la detección de estos clones candidatos es diseñar un cebador de PCR aterrizaje directamente en el sitio de destino ZFN. Usado en conjunción con uno de los cebadores de control, un resultado del ensayo negativo indica una pérdida de la secuencia de WT. Un clon heterocigoto que contiene al menos un alelo WT na suield PCR señal, pero pueden estar separados de los clones completamente WT mediante la realización de la PCR en el contexto de SYBR qPCR.
Una vez que los clones candidatos han sido identificados por los métodos anteriores, se pueden genotipo por pirosecuenciación estándar, la secuenciación de profundidad, u otros métodos de secuenciación. Para todos los métodos de secuenciación, una amplicón creado a partir del ADN genómico clonal debe ser generada. Para alelos pirosecuenciación tradicionales pueden estar separados por TA-clonación del producto de PCR y secuenciación de las colonias individuales. Para los métodos tales como la secuenciación profunda este paso no es necesario.
Homología Dirigida Reparación (IDH)
Este protocolo proporciona el método de octavos de final ZFN génica mediada a través de NHEJ. La integración de los transgenes también puede llevarse a cabo mediante la introducción de un plásmido donante con los brazos de homología que flanquean un sitio de corte ZFN. 11 En este escenario, el ZFN creó doble cadena rotura sea reparada por el Informe sobre Desarrollo Humano en lugar de NHEJ. Informe sobre Desarrollo Humano que dirigentegración de transgenes puede ser confirmado mediante métodos similares a los procedimientos establecidos a través de este protocolo.
Solución de problemas
La entrega de ZFNs
La entrega ZFN y la expresión de entrega-puede ser controlada por la entrega de un GFP o cualquier otro plásmido para la visualización y / o cuantificación. Bajo la expresión debido a la incompatibilidad promotor con el tipo de células de interés puede ser superado por la entrega de ZFNs en formato ARNm. Además, el método del choque en frío puede ser utilizada para aumentar aún más la eficacia de ZFNs en las células. 12 Si se utiliza ARNm es imperativo que las células se lavan antes de la entrega para asegurar que todos RNasas suero derivados se han eliminado. También es prudente que se descongele el ARNm en el hielo, y añadir el que las células en el último momento para minimizar el riesgo de la degradación.
Cel-I de ensayo
La fundación de la ASSA Cel-Iy es la amplificación específica y amplia del locus de interés. Si no específicos productos de amplificación se observan uso estándar de los procedimientos de solución de PCR para aumentar la especificidad como la optimización de la cantidad de plantilla, la concentración de iniciador, y el ciclo de los parámetros. Realizar análisis PAGE en oposición a electroforesis en agarosa estándar como el último método no proporciona una resolución adecuada y sensibilidad. Cel.-I Condiciones digerir también puede optimizarse si ningún producto digerido o manchas excesiva que se observa. La valoración de la cantidad de Cel-1 nucleasa y / o la duración del tiempo de digestión se pueden valorar para mejorar estos aspectos.
The authors have nothing to disclose.
Name of the reagent | Company | Catalogue number |
Nuclease S (Cel-1 Enzyme) | Transgenomic | 706025 |
Expand High Fidelity PCR System | Roche | 03 300 242 001 |
Cell Line Nucleofector Kit V | Lonza | VCA-1003 |
GenElute HP Endotoxin-Free Plasmid Maxiprep Kit |
Sigma-Aldrich | NA0400 |