CompoZrカスタムジンクフィンガーヌクレアーゼ(ZFN)サービスは、ユーザーによって定義されている任意の遺伝子座でのあらゆる生物や細胞ラインの正確なゲノムの編集が可能になります。この資料では、CompoZrカスタムZFNサービスの設計、製造、検証、実装するプロセスについて説明します。
ゲノム編集は、遺伝子機能や疾患の遺伝的基礎を解明するために使用することができる強力な手法です。そのようなDNA配列の化学ベースの変異誘発またはランダムな統合などのメソッドを編集して、従来の遺伝子が潜在的に生物学的研究を混乱させ、全体として非効率的な方法で無差別な遺伝的変化を与えると異常な培養条件の望ましくない合成配列、または使用の取り込みをする必要があります。これとは対照的に、細胞内の一過性ZFN式は、正確に容易にすることができる合成の導入遺伝子の化学物質や統合の管理のため必要とせず非常に効率的な方法で遺伝子編集を遺伝。
ジンクフィンガーヌクレアーゼ(ZFNs)が結合し、二本鎖DNA(dsDNA)の異なるシーケンスを切断する酵素である。機能的なCompoZr ZFNユニットは約15から18ヌクレオチドのDNA "半サイト"を結合する2つの個々の単量体タンパク質( 図1を参照)で構成されています。と、2つのZFNモノマーのDNA切断ドメインは二量体化し、その隣接するターゲットサイトへの"ホーム"とDNAの二本鎖切断(DSB)を作成します。ゲノムのZFN媒介DSBの1はじめには、非常に効率的なゲノムを編集するための基盤を提供します。非相同末端接合(NHEJ)DNA修復経路を介して細胞内でDSBの不完全な修復は、小さな挿入及び欠失(indelsの)になる可能性があります。細胞の遺伝子コード配列内indelsのの作成 には、フレームシフトと高効率で遺伝子座の後続の機能的なノックアウトになる可能性があります。2このプロトコルは、遺伝子ノックアウトを作成するZFNsの使用方法について説明しますが、導入遺伝子の統合も経由して行うことができるZFNの切断部位での相同性指向の修理。
CompoZrカスタムZFNサービスZFN技術と科学的なコミュニティのための標的遺伝子の編集に、体系的、包括的な、よく特徴付けられたアプローチを表しています。シグマの科学者は、1)研究者と密接にperfo仕事プロジェクトの目標に基づき、関連する遺伝子の構造、生物学、モデルシステムの分析、2を含むRMデューデリジェンス分析)音ターゲティング戦略、3を開発するためにこの知識を適用する)を構築し、設計し、機能的に関連の活動のためにZFNsを検証する細胞株。調査官は、陽性対照ゲノムDNAとプライマーを受信し、プラスミドDNAの両方に及びインビトロ転写されたmRNAの形式供給ZFN試薬をすぐに使用できる。これらの試薬は、その後研究者の細胞株または任意の細胞型の一過性発現のために配信されることがあります。次に、試料をPCR増幅、酵素消化、電気泳動などの標準的な分子生物学的手法によって関心の遺伝子座に遺伝子編集のためにテストされています。遺伝子編集のための肯定的な信号が初期集団で検出された後、細胞はクローン化された単一細胞と変異クローン/遺伝子の同定のための遺伝子型があります。
一度ZFN改変細胞は、彼らは永久的な持っているとDNA修飾を遺伝的に絶縁されています。研究を実施することが望ましい遺伝子改変で安定変更された細胞株または繁殖動物を生成することができ、この結果。 CompoZrカスタムZFNsは、ゲノムは、細胞の種類の多種多様な編集のための堅牢な方法を提供します。 ZFNsで編集成功したゲノムの出版物を作成する機能が含まれていますが、ヒト細胞株、マウス、ラット、ゼブラフィッシュ、カエル、ブタおよびCHOの研究モデルに限定されません。3,4,5,6,7,8,9 ZFNsが適切に細胞内に配信されたときに、指定された細胞型の所望の標的部位における二本鎖ブレークが保証されています。それは、セル内に複数の遺伝子改変を持たせるために、セルに連続したジンクフィンガーの変更を実行することも可能です10特定の標的配列を選択して、それだけで特定の遺伝子座を変更する機能は、複数を作成する機能の主な原因です。 MODIFIカチオン。
CompoZrカスタムZFN分析証明書は、このようにキットのすべてのコンポーネントが完全に顧客の成功のために検証されていることを保証するキットで提供される非常に試薬を用いて生成されます。最初から最後までのワークフローの重要なステップを以下に示す:
細胞のクローニング
与えられた細胞株を分離して展開する能力は、任意のZFN実験を開始する前にテストする必要があります。単一細胞を単離し、クローン由来の人口は可能であることを確認するために拡大すべきである。いくつかの細胞株は、この問題では難治であり、そのような培地で編集したクローンの濃縮や、文化としてのトリックはこれらの課題を克服するのに役立ちます。
配信の効率化
配送効率の最適化はZFNsの配信前に必見です。多くの方法が脂質ベースのトランスフェクション、エレクトロポレーション、およびnucleofecti含めて使用することができで。理想的な配信方法は、配信効率と細胞生存の最適なブレンドが得られる1で構成されています。これらの効率を定量化する目視検査またはFACS 24-48時間後の配信により、GFPコントロールプラスミドと定量提供することによって推定することができる。
CEL-Iアッセイ
それはCEL-Iのアッセイは、PCR、消化、電気泳動のパラメータはZFN実験の解釈に干渉しないように、適切なコントロールを使用して並列に実行されることが不可欠です。各キットには分析証明書にCEL-Iイメージを作成するために使用されているコントロールゲノムDNAが含まれています。 CEL-Iのアッセイに続いて提供するプライマーとコントロールDNAからの増幅には、ユーザーが分析証明書(CofA)イメージで提供されると結果を比較することができ、実験のこの側面の任意の潜在的な非効率性を分離します。このようなモック、またはGFP処理した細胞などの適切なネガティブコントロールサンプルは、任意の非特異的切断産物の解明を可能にするために含まれるべきである。
単一細胞クローンの定量/定性分析
ZFN処理および単一細胞クローニング後、細胞の集団は、メソッドの番号によって、興味を持った遺伝子座で編集するためにスクリーニングすることができる。 CEL-Iのアッセイは、さらに遺伝子型の候補クローンを同定する目的のためにクローンからゲノムDNAで実施されることがあります。それはCEL-Iは、ホモ接合変異体クローンが均質分子を含むため、負のCEL-Iアッセイの結果を伝えるように消化を行う前に、1:1の比率でサンプルアンプリコンにスパイクWT PCRアンプリコンに重要です。これらの候補クローンをスクリーニングするための代替方法は、直接ZFNの標的部位に1つのPCRプライマーの着陸を設計することです。コントロールプライマーのいずれかと組み合わせて使用することで、負の測定結果は、WTシーケンスの損失を示しています。少なくとも一つのWT対立遺伝子を含むヘテロ接合のクローンは、Yうield PCRシグナルが、SYBR定量PCRのコンテキスト内でPCRを行うことにより完全にWTクローンから分離されることがあります。
候補クローンは、上記の方法により同定されたら、それらは標準のパイロシーケンシング、ディープシーケンシング、または他のシーケンシング法により遺伝子型を決定することができます。すべてのシーケンスメソッドでは、クローンのゲノムDNAから作成されたアンプリコンを生成する必要があります。従来のパイロシーケンシングの対立のためにTA-クローニングすることによって、PCR産物を分離し、個々のコロニーをシーケンシングすることができます。そのような深いは、この手順をシーケンシングなどの方法は必要ありません。
相同性監督修理(HDR)
このプロトコルは、NHEJを経由してZFNを介した遺伝子ノックアウトの方法を提供する。導入遺伝子の統合も、その側面ZFNカットサイトを相同性ア ームを持つドナープラスミドを導入することにより行うことができる。このシナリオでは、 図11に示すように 、ZFNは、二本鎖ブレークがHDRの代わりに、NHEJによって修復されて作成されます。 HDRは、iを監督導入遺伝子のntegrationは、このプロトコルを通じて提供される手順に類似の方法を用いて確認することができる。
トラブルシューティング
ZFNsの配信
ZFNの配信と表現配信は、可視化、および/または定量するためのGFPまたは他のそのようなプラスミドの配信によってのために制御することができます。目的の細胞型とプロモーターの非互換性に起因する低発現は、mRNAの形式でZFNsの配信によって克服されることがあります。さらに、コールドショックメソッドは、さらに細胞内ZFNsの効力を高めるために利用することができる12 mRNAが使用されている場合は、それが細胞はすべての血清由来のRNaseが除去されていることを確認するために、配信する前に洗浄されることが肝要である。それは氷の上でmRNAを解凍し、劣化の任意のチャンスを最小限に抑えるために非常に最後の瞬間で細胞にそれを追加することも賢明である。
CEL-Iアッセイ
CEL-I ASSAの基礎yは、興味のある遺伝子座の特定と十分な増幅です。非特異的増幅産物が認められた場合にはそのような鋳型量の最適化、プライマー濃度、サイクリングパラメータとして特異性を高めるために標準的なPCRのトラブルシューティング手順を使用しています。後者の方法は、十分な分解能と感度を提供していないように、標準アガロース電気泳動とは対照的に、PAGE分析を実行します。全く消化物や過度のにじみが観察されていない場合、CEL-Iダイジェスト条件も最適化することができる。 CEL-1の量の滴定ヌクレアーゼ及び/又は消化時間の長さは、これらの側面を改善するために滴定することができます。
The authors have nothing to disclose.
Name of the reagent | Company | Catalogue number |
Nuclease S (Cel-1 Enzyme) | Transgenomic | 706025 |
Expand High Fidelity PCR System | Roche | 03 300 242 001 |
Cell Line Nucleofector Kit V | Lonza | VCA-1003 |
GenElute HP Endotoxin-Free Plasmid Maxiprep Kit |
Sigma-Aldrich | NA0400 |