Voor speciale reagentia: zie Tab. 1. Alle vermelde andere reagentia worden in celkweek grade kwaliteit verkregen van Sigma Aldrich. 1. PORN-H/laminin coating van gerechten / dekglaasjes Bereid te werken oplossing van 0,5 mg / ml Poly-DL-ornithine hydrobromide (PORN-H) in 150 mM boraatbuffer pH 8,35. Een voorraad oplossing van 50 mg PORNO / 1 ml boraatbuffer kan worden voorbereid en opgeslagen bij -20 ° C. Steriliseer dekglaasjes door de vlammen in 100% ethanol en laat ze drogen aan de lucht. Bedek de ondergrond met voldoende PORNO-H-oplossing overnacht bij 4 ° C. Op de volgende dagen Was driemaal uit met gesteriliseerd water en lucht-drogen dekglaasjes. Bereid te werken oplossing van 2,5 ug / ml laminine in HBSS Porties kan worden opgeslagen bij -20 ° C. Dooi bij 4 ° C onmiddellijk voor gebruik. Bedek het oppervlak van de porno-H-gecoate dekglaasjes met de laminine-oplossing en laat ze minstens 2 uur incuberen bij kamertemperatuur tot gebruik. 2. Lectine coating van de zuivering plaat Bereid een oplossing van 10 mM Tris in gesteriliseerd water, pH 9,5. Voeg lectine (het oplossen van de lectine (Sigma L9640) poeder in HBSS), tot een uiteindelijke concentratie van 10 ug / ml. Smeer het oppervlak van een 10 cm celkweek schotel met 8 ml van de lectine-oplossing en laat het incubeer gedurende tenminste 30 minuten bij kamertemperatuur. Was de plaat drie keer met HBSS en op te slaan in HBSS tot gebruik. Bereid een 30mm KCl, 0,8% (w / v) NaCl depolarisatie-oplossing. Steriliseer door filtratie en bewaar bij kamertemperatuur (RT). 3. Motoneuron kweekmedium Dooi paard serum overnacht bij 4 ° C en inactiveren bij 55 ° C gedurende 30 min, Aliquot in 5 ml en bewaar bij -20 ° C. Ontdooien aliquot direct voor gebruik bij RT. Store B27-supplement in 1 ml aliqouts bij -20 ° C. Dooi B27 supplement bij RT onmiddellijk voor gebruik. Vermijd bevriezen en ontdooien cycli. Aliquot Glutamax in 0,5 ml porties en bewaar bij -20 ° C en gebruik het bij 1:100. Bereid een voorraad oplossing van 10 ug / ml CNTF in gesteriliseerd water met 0,1% BSA. Bewaren bij -20 ° C. Meng 46 ml neurobasal medium met 2,5 ml paard serum, 1 ml B27-supplement en 0,5 ml Glutamax direct voor gebruik. Voeg CNTF tot een uiteindelijke concentratie van 10 ng / ml medium en pre-warm medium tot 37 ° C. 4. Ruggenmerg dissectie Offer een E12.5 zwangere muis en verwijder voorzichtig de embryo's. Voeg genoeg RT HBSS volledig dekking van de embryo's. Verwijder de kop en staart en zet het embryo achterkant met gespreide ledematen. Bevestig het embryo met een pincet en verwijder de buitenste huid met de andere tang. Verwijder het ruggenmerg door het doorboren van de pincet eronder en til het op met zaag-achtige bewegingen aan beide zijden van het ruggenmerg. Breng de geïsoleerde ruggenmerg naar een nieuwe schotel met HBSS en open de centrale kanaal van het ruggenmerg aan de rugzijde. Verwijder de achterwortelganglia door het verwijderen van de omsluiten hersenvliezen van het ruggenmerg. Verzamel de lumbale delen van het ruggenmerg van maximaal zes embryo's per lectine plaat in een eppendorf reactie buis gevuld met 1 ml HBSS en op te slaan op ijs totdat de bereiding klaar is. 5. Verrijking van motoneuronen van lectine-based zuivering Let op: Voordat u begint met de volgende stappen, de nieuwste hier voor te bereiden en voorverwarmen op de middellange (zie stap 3). Bereid een trypsine-oplossing door het oplossen van 1 g Trypsine in 100 ml HBSS, bewaren bij -20 ° C en dooi bij 4 ° C. Mix 1g trypsine-remmer met 98 ml HBSS en 2 ml van 1 M HEPES pH 7,4, moet 1 ml monsters worden bewaard bij 4 ° C. Breng de buis met het ruggenmerg naar een cel cultuur kap en verwijder voorzichtig 700 ul van de HBSS. Voeg 7,5 ul trypsine-oplossing en meng door zorgvuldig het omkeren van de buis. Voer trypsination gedurende 8 minuten bij 37 ° C. Stop de reactie door het toevoegen van 30 ul trypsine-remmer en de pipet op en neer (vermaal) zorgvuldig 10-15 keer met een 1000 ui pipettip tot er geen meer mobiele aggregaten zichtbaar zijn. Herhaal de tritureren met een 20-200 ul pipet en de bijbehorende tip. Pipetteer de cel oplossing in de HBSS gevulde lectine plaat en verspreiden de cellen door zachtjes het draaien van de plaat. Houd de lectine plaat voor 60 min bij RT op een trillingsvrij oppervlak. Bedek het om vervuiling te voorkomen. Verwijder de HBSS heel voorzichtig en was de plaat voorzichtig vier keer met voorverwarmd HBSS naar cel fragmenten en het niet is aangesloten / losse cellen te verwijderen. Direct na de laatste wasstap, voeg 500 ul depolarisatie oplossing voor de plaat en laat het incubeer gedurende 1 minuut. Vergemakkelijken het losmaken van de lectine gebonden cellen door schudden entikken op de plaat. Vul de plaat met 2 ml voorverwarmd kweekmedium en over te dragen aan een 15 ml falcon buis. Tel aantal cellen met een Neubauer telkamer. Het bord van de cel op de laminine beklede dekglaasjes of platen in een voldoende aantal afhankelijk van de toepassing. Voer een medium uit te wisselen over dag 1 en vervolgens elke tweede dag door een zorgvuldige vervanging van 50% van het oude medium. Gebruik altijd voorverwarmde, vers bereide nieuwe cultuur medium. 6. Representatieve resultaten: Embryonale motoneuronen kan worden verkregen bij de muis embryo's op E12 naar E14. 2-3% van de totale celpopulatie van het lumbale ruggenmerg bestaat uit motoneuronen en als de dorsale wortel ganglion neuronen zijn p75 NTR-positief ook, is het belangrijk om zich te ontdoen van deze cellen te krijgen vóór het begin van het lectine-based preplating procedure ( voor overzicht zie figuur 1 en figuur 2). Ten tweede, de hersenvliezen ook sterk delende cellen die moet ook worden uitgesloten, omdat ze niet goed kan worden verwijderd door de lectine-based preplating procedure (figuur 2 en figuur 3). In erge gevallen kunnen deze cellen overwoekeren de cultuur platen. De vertegenwoordiger foto's in Figuur 3B en 3D geven ook een indruk over de lagere celdichtheid na het wassen van de procedures zijn uitgevoerd (zie stap 5.9 van het protocol). Culturen van embryonale muis motoneuronen worden meestal gedurende maximaal vijf of zeven dagen. Gedurende deze periode de cellen brengen hun neurieten tot een maximale lengte (figuur 4). Neurieten lengtes zijn sterk afhankelijk van de ondergrond op de borden 8. De typische ondergrond is laminine, die wordt aangebracht op PORNO-H bedekt cultuur gerechten. Motoneuronen kan ook groeien op andere of meer gedefinieerd ondergronden, zoals extracellulaire matrices gegenereerd door water lysis 8. In geval van suboptimale coating, neurieten lengte en de groei conus gebied zijn afgenomen en celdood meestal toeneemt. Trofische ondersteuning speelt een cruciale rol voor de overleving van de embryonale muis motoneuronen in cultuur. Overleving van in eerste instantie plated cellen op dag zeven dalen tot 10% tot 20% zonder trofische steun 6. Brain afgeleide neurotrofe factor (BDNF) en ciliaire neurotrofe factor (CNTF) zijn de meest gebruikte factoren, maar anderen kunnen overleven bevorderen en [Leukemie remmende factor (LIF), Cardiotrophin-1 (CT-1), basic fibroblast groeifactor (bFGF ), insulin-like growth factor 1 (IGF-1) 9]. Figuur 1. Flow schema voor de bereiding van embryonale muis motoneuronen. De schematische tekening illustreert de verschillende stappen voor het kweken van muis embryonale motoneuronen. Afkortingen: SC: het ruggenmerg; HBSS: Hanks gebalanceerde zoutoplossing, MN: motoneuron. Figuur 2 Isolatie van het lumbale deel van het ruggenmerg van E12.5 muis A:.. E12.5 muis embryo. Voor de volgende stap worden de kop en de staart verwijderd en het lichaam is geplaatst in een dorsale-up positie B: Embryo in een dorsale-up positie. Pincet aan de linker-en rechterkant van het ruggenmerg zijn tot vaststelling van de embryo lichaam in zijn positie. Een van de forceps wordt vervolgens gebruikt om de huid snijden en te snijden onder het ruggenmerg van de andere wordt gebruikt om het embryo vast te stellen in zijn positie C:. Geïsoleerde ruggenmerg van E12.5 muis embryo. De onderdelen van het ruggenmerg (cervicaal, thoracaal, lumbaal) zijn aangegeven. Het ruggenmerg is omgeven door de hersenvliezen en een deel van de achterwortelganglia nog steeds hechten aan hun D:. Het ruggenmerg is overlangs gesneden op de rugzijde om het te openen naar de centrale kanaal E:. De hersenvliezen aan de ventrale zijde zijn nu genomen af van de platte ruggenmerg. Opmerking: Tijdens het gehaald, het lumbale deel wordt gekenmerkt door een klein sneetje F:. Alleen het lumbale deel van het ruggenmerg wordt dan genomen voor verdere procedures. Figuur 3 Bepaling en isolatie van Islet-positieve cellen van de lumbale ruggenmerg van E12.5 muis embryo's A:.. De Islet-1 / 2 antilichaam labelt motoneuron kolommen in de embryonale lumbale ruggenmerg (rood, pijl) en Hoechst labels alle kernen binnen de sectie. Doorsnede van een E12.5 Lumar ruggenmerg. E12.5 muis embryo's werden onderdompeling-gefixeerd in 4% paraformaldehyde gedurende 6 uur, drie keer gewassen met fosfaat-gebufferde zoutoplossing en behandeld met sucrose volgens standaard procedures. Vriescoupes van 20 urn werden genomen met een cryostaat en de secties werden behandeld voor immunhistochemical kleuren volgens standaardprocedures 11. De secties software vervolgens gelabeld met Hoechst voor het lokaliseren van de celkernen. Merk op datde dorsale wortel ganglion neuronen zijn Islet-1/2-positive zo goed en dat de voorbereiding procedure sluit dit weefsel onderdelen uit het isolement procedure B:. Islet-1 label / 2 (rood, pijl) los lumbale ruggenmerg cellen van E12. 5 embryo's, links – voor en rechts – na lectine-based preplating. De cellen werden tegengekleurd met Hoechst om alle celkernen te visualiseren C:. Kwantificering van Islet-1/2-positive cellen voor en na het lectine-based preplating D:. Nkx6.1 label motoneuronen van E12.5 embryo's na een dag in de cultuur. De cellen werden tegengekleurd met Hoechst aan alle kernen cisualieze. Merk op dat 90% van alle cellen Nkx6.1 positief. Afkortingen: SC: het ruggenmerg, MN: motoneuron; DRG: dorsale wortel ganglion. Figuur 4 Karakterisering van E12.5 muis motoneuronen A en B:.. Verrijkt geïsoleerd E12.5 muis lumbale spinale motorneuronen p75 NTR uitspreken over 0 dagen in vitro (0div) en op dag 2 in vitro (2div). Cellen werden gefixeerd met 4% paraformaldehyde en vervolgens gekleurd voor p75 NTR volgens standaard procedures. Cellen werden tegengekleurd met behulp van Hoechst om alle kernen te visualiseren C:. Verrijkt motoneuronen na 5 dagen in vitro (5div) op PORN-H en laminine als cultuur substraten en in aanwezigheid van CNTF gekleurd voor β-III-tubuline. Merk op dat de cellen zijn uitgegroeid lange neurieten en weer de typische motoneuron morfologie met een langere (vertakte) proces en een of meer kortere processen (axonen en dendrieten). Afkortingen: MN: motoneuron; div: dag in vitro. Na dissociatie zonder Lectin-based preplating Totaal aantal cellen / SC Trypan blauw-positieve cellen [%] Islet-1/2- positieve cellen [%] 1 995,0 13,1 9,5 2 889,4 8,0 10,0 3 1.180.0 11,0 10,8 Gemiddelde ± SD 1.021.0 ± 147.1 10,7 ± 2,6 10,1 ± 0,7 Met lectine-based preplating Aantal cellen na preplating / SC Trypan blauw-positieve cellen [%] Islet-1/2- positieve cellen [%] 1 189,6 9,9 70,5 2 168,8 3,7 76,1 3 125,0 0,0 72,5 Gemiddelde ± SD 161,1 ± 33,0 4,5 ± 5,0 73,0 ± 2,8 Tabel 1. Samenvatting van de representatieve isolatie procedures voor de muis embryonale motoneuronen van het podium E12.5. Resultaten van drie verschillende isolatie procedures speciaal voor dit doel worden gegeven als het totaal aantal of percentage nummers ± SD. Afkorting: SC: het ruggenmerg; SD: standaard deviatie. Eilandje-1 / 2 positieve cellen met een p75-panning [%] Eilandje-1 / 2 positieve cellen met lectine-gebaseerde panning [%] 92,0 ± 3,5 1 73,0 ± 2,8 Tabel 2. Vergelijking van de lectine-gebaseerde en p75-op basis van een panning motoneuron cel aantallen. Resultaten worden gegeven als percentage getallen ± SD.