Описан способ получения 3-мерной матрицы, состоящей из коллагена типа I и первичных фибробластов человека. Это органотипических гель служит полезным субстратом для оценки инвазивных миграции клеток, поскольку он имитирует основные характеристики ткани стромы и поддаются многие формы микроскопии.
Миграция клеток лежит в основе многих аспектов биологии, в том числе развития, заживления ран, клеточные реакции иммунной системы, и метастазирование опухолевых клеток. Миграция была изучена на стекло покровные для того, чтобы сделать сотовую динамики поддаются расследованию помощью световой микроскопии. Тем не менее, стало ясно, что многие аспекты миграции клеток зависят от особенностей местной окружающей среды, включая ее эластичность, белковый состав и размер поры, которые не добросовестно представлены жесткие двумерных поверхностей, таких как стекло и пластик 1. Кроме того, взаимодействие с другими типами клеток, включая стромальные фибробласты 2 и иммунных клетках 3, было показано, играют важную роль в содействии вторжение раковых клеток. Исследования на молекулярном уровне все чаще показали, что молекулярная динамика, в том числе ответ на медикаментозное лечение, одинаковых клеток значительно отличается по сравнению <em> В пробирке и в естественных 4.
В идеале, было бы лучше изучать миграцию клеток в ее естественным контекстом, в живых организмах, однако это не всегда возможно. Промежуточные культуры тканей систем, таких как клетки, полученные матрицей, матригель, органотипических культуры (описано здесь) ткани эксплантов, органоиды, и ксенотрансплантатов, поэтому важные экспериментальные промежуточных продуктов. Эти системы приближенных некоторые аспекты в естественных условиях окружающей среды, но являются более пригодными для экспериментальной манипуляции, такие как использование стабильно трансфицированных клеточных линий, режимы лечения наркозависимости, долгосрочные и изображений с высоким разрешением. Такие промежуточные системы особенно полезны в качестве полигона для проверки датчиков и установить параметры, необходимые для изображения динамических характеристик клеток и флуоресцентных журналистам до проведения визуализации в естественных условиях 5. Как таковые, они могут играть важную роль в снижении потребности в экспериментах по живуг животных.
Здесь мы представляем метод для производства 3-мерных матриц подходит для изучения инвазивных миграции клеток 6-8. Матрица состоит из коллагена 1 типа волокон, которые работают по контракту в течение нескольких дней первичного человеческого эпидермиса, фибробласты. Коллаген получают путем извлечения кислот, не ферментативного расщепления, который сохраняет реактивность в полипептидных целей и способствует сшивки коллагена в более крупные агрегаты по нейтрализации буфера условиях 9. Это приводит к повторной официальных гель, который более точно имитирует особенности коллагена в естественных условиях и имеет важные последствия для инвазивных свойств клеток, культивируемых в гелях. Это не имеет значения, свежие или замороженные исходного материала используется, но использование подростков хвосты крыс важно, потому что коллаген сшивания более лабильной у молодых животных. Коллаген я от молодых животных, следовательно, легче извлекать и повторно представляет Wго более высокого качества.
Коллагеновой матрицы может быть фиксировали и окрашивали антителами, направленными против любой инвазивной опухоли клеток стромальных фибробластов или 2,10 и очень полезно для тестирования эффективности лекарственных средств, которые могли бы препятствовать вторжению 5,6.
Хотя этот протокол предполагает использование первичных человеческих фибробластов кожи, целесообразно использовать первичные фибробласты от других типов тканей, в зависимости от типа ткани под следствием. Кроме того, можно установить культур с использованием увековечили фибробластов, в том числе клеток, которые были стабильно трансфицировали с люминесцентными конъюгатов белка. Таким образом, и стромальные и опухолевых клеток могут быть помечены для визуализации межклеточных взаимодействий во время вторжения 11.
The authors have nothing to disclose.
Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments (optional) |
---|---|---|---|
10x MEM | Gibco | 21430 | – |
NaOH | Sigma | 367176-500G | Prepare 0.22 M stock in water |
FCS | PAA Laboratories | A15-101 | – |
35 mm dishes | Falcon | 353001 | For step 3.4 |
60 mm dishes | Falcon | 353004 | For step 5.2 |
Spring forceps blunt | Samco | E003/02 | Toothed, not smooth |
16% paraformaldehyde | Electron Microscopy Services | 15710 | Dilute to 4% in PBS prior to use |
Screens for cd-1, size 40 mesh | Sigma | S07707-5EA | Stainless steel grids, 5 per pack |
Dialysis tubing | Medicell International | 7607 2295 | 12 – 14 kD |
PBS | Oxoid | BR0014G | – |
Acetic Acid | Sigma | 242853 | – |
24 well dish | Falcon | 353047 | For step 4.1 |
Fungizone | In vitrogen | 15290018 | – |