Uso de Células-tronco humanas perivasculares para Regeneração Óssea

1. Isolamento de células-tronco perivascular Isto é descrito em detalhes no artigo adjacente "Purificação de Células-Tronco perivasculares do tecido adiposo humano Branco", de M. Corselli et al. 2. Andaime Criação Os andaimes são feitos sob medida por protocolo publicado anteriormente a partir de poli (ácido láctico-co-ácido glicólico) (PLGA, Burmingham Polymer) com revestimento de hidroxiapatita 4-6. Andaimes apatite revestidos são fabricados a partir de PLGA 85/15 PLGA por evaporação de solvente e um processo de lixiviação em partículas. Andaimes são criados em uma forma esférica (2 mm de diâmetro) para implantação músculo bolsa, uma forma discóide (4 mm de diâmetro) para implantação calvária, ou cilíndrica (4 mm de diâmetro, 6 mm de comprimento) para femorais defeitos segmentais. Resumidamente, PLGA / clorofórmio soluções misturadas com sacarose (polímero / rácio de sacarose 5/95, w / w) são expressos em um 200-300 mícrons de diâmetro de molde de Teflon para criar as desvantagens feitos por medidatruct. Após liofilização durante a noite, andaimes são removidos a partir do molde de Teflon e imerso em ddH2O para dissolver a sacarose. Andaimes são desinfectados por imersão em etanol a 70% durante 30 min, seguido de três lavagens da DDQ 2 O. Para o revestimento de apatite, um corpo simulado solução de fluido (SBF) é preparado por dissolução de sequencialmente CaCl2, MgCl2 • 6H 2 O, NaHCO3, e K 2 HPO 4 • 3H 2 O na DDQ 2 O. O pH da solução é reduzido para 6 pela adição de ácido clorídrico 1M para aumentar a solubilidade. Na2SC @ 4, KCl, e NaCl são adicionados eo pH final é ajustado para 6,5 (SBF 1). Mg2 + e HCO 3 – livre SBF (SBF 2) é preparado por adição de CaCl2 e K 2 HPO 4 • 3H 2 O na ddH2O e pH é reduzido para 6. KCl e NaCl são adicionados eo pH final é ajustado a 6,8. Todas as soluções são estéreis filtrada através de um Membr iM 0,22 PESane (Nalgene). Imediatamente antes do processo de revestimento, os suportes de PLGA secas são submetidos a descarga luminescente de árgon plasma condicionamento (Harrick Scientific) para melhorar a molhagem e uniformidade de revestimento. Andaimes causticado são então incubadas em SBF 1 para 12 h, e alterada para Mg2 + e HCO 3 – SBF livre 2 para um outro h 12 a 37 ° C sob agitação suave. Andaimes revestidas são lavadas com ddH2O para remover o excesso de iões e liofilizado antes para estudos posteriores. 3. A implantação do modelo muscular Bolsa 100 ul de uma suspensão PSC em PBS (solução salina tamponada com fosfato) são suavemente cair sobre o implante de PLGA-Based esférica imediatamente antes da implantação. Células foram pré-rotulados por inserção lentiviral de luciferase do pirilampo, de modo a permitir in vivo após a implantação de seguimento. A densidade celular é de 2,5 x 10 5 por implante. SCID (grave imunodeficiente combinado) ratinhos são utilizados com 6 semanas de idade. Os animais são anestesiadosthetized por inalação de isoflurano e pré-medicados com buprenorfina (Bedford Labs). Após a preparação Betadine padrão, incisões bilaterais nos membros posteriores são feitas (longitudinal e 2 mm de comprimento). Bolsos são cortados nos músculos bíceps femoral por dissecção romba paralela ao eixo da fibra muscular longo. Para cada rato, o implante de PLGA-baseada com PSCs é inserido, e no painel frontal que cobre o músculo é suturada com 5-0 Vicryl (Ethicon). A pele é fechada com 5-0 próxima Vicryl num padrão subcuticular. Os animais são tratados com buprenorfina no pós-operatório, durante 48 horas e TMP / SMX (Trimetoprim / sulfametoxazol; Qualitest) durante 10 dias. 4. A implantação do modelo calvária Defeito Após anestesia com isoflurano de ratinhos SCID (12-14 semanas de idade), o cabelo é cortado ea pele desinfectada com betadine por protocolo. A incisão na pele de 8 mm é feita ao longo da sutura médio-sagital da calota mouse. Em seguida, o calvarial periósteo é gentilmente removido por Q-tip aplicação. Em seguida, usando bits de diamante revestidos trefina em uma broca de alta velocidade dental, uma 4-milímetros defeito osso parietal é criado. O defeito é espessura total – no entanto o cuidado é tomado para não lesar a dura-máter subjacente. O feito por medida do implante de PLGA-baseada com PSCs enxertados é então colocado suavemente no local do defeito. A densidade celular é de 2,5 x 10 5 por implante. Finalmente, a pele é suturada com 6-0 Vicryl. Os animais são tratados com buprenorfina no pós-operatório, durante 48 horas e TMP / SMX durante 10 dias. 5. A implantação do modelo Femoral segmentar Defeito Ratos atímicos (12-14 semanas de idade) são anestesiados sob inalação de isoflurano. O fêmur é limpo e preparado por protocolo padrão com betadine (Figura 1). Uma incisão de 27-30 mm longitudinal é feita sobre o aspecto ântero-lateral do fêmur. O eixo femoral é, então, exposta através da separação da lat vastuseralis e bíceps femoral (Figura 2). Para maximizar a consistência de regeneração óssea, o periósteo sobrejacente o defeito femoral é completamente removido com o segmento ressecado femoral. Uma placa de polietileno (comprimento, 23 mm, largura, 4 mm, altura, 4 mm) é colocado sobre a superfície anterolateral do fémur. A placa contém seis orifícios pré-perfurados para acomodar 0,9 mm de diâmetro fios roscados Kirschner (Zimmer). Tomando a placa como um modelo, seis fios roscados Kirschner são perfurados através da placa e ambos os córtices (Figura 3). Em seguida, com uma lâmina de serra oscilante pequena (Stryker, MI), um 6-milímetros defeito meados de diafisária é criado. Defeitos segmentais são então tratados através da inserção de implantes de PLGA base que tenham sido carregados com células como por protocolo (Figura 4). O músculo sobrejacente e fáscia são fechados com Vicryl 4-0 suturas absorvíveis para fixar o implante no lugar, ea pele é suturada. </li> 6. Testes in vivo Avaliações radiográficas são realizadas de forma longitudinal, tanto de alta resolução e alta resolução XR μCT (micro tomografia computadorizada) análise. Para μCT análise (SkyScan 1172F), as imagens são digitalizadas com uma resolução de 19.73 mM (100 kV e 100 mA fonte de radiação, usando um filtro de alumínio 0,5 milímetros). As imagens são analisadas utilizando DataViewer, Recon, CTAN, e softwares CTVol. Imagiologia bioluminescência é também feito de uma forma de série para avaliar células enxerto, a viabilidade de proliferação, e não incluem a migração para fora do local do implante. Imagiologia bioluminescência é realizada utilizando um dispositivo de IVIS Lumina II (Caliper Life Sciences). Saídas de luz são quantificados utilizando software imagem viva (Xenogen). Saída total de luz é registrada em fótons por segundo / cm ² / esterradiano. A análise histológica e histomorfométrica é feita pós-morte. Colorações de rotina empregados incluem tricrômico de Masson, azul de anilina, pentachrome, e Picrosirius vermelho. A análise histomorfométrica é realizada facilmente com qualquer anilina azul ou manchas pentachrome, em que aparece osteóide azul escuro e amarelo, respectivamente. Pixels por campo de alta potência são calculadas usando a ferramenta varinha mágica no Adobe Photoshop. 7. Os resultados representativos Como ambos os defeitos calvária e femoral são críticos porte, não há cura significativa deve-se esperar sem o tratamento com fatores de crescimento ou de células-tronco exógenas. Em termos de manobras cirúrgicas, a dissecção bolsa muscular deve ser ao longo dos planos fasciais e, portanto, sangramento mínimo deve ser encontrado. Mesmo que o modelo de bolsa muscular é realizada bilateralmente, o rato deveria estar andando com facilidade no dia pós-operatório 1. Para o defeito calvária, sangramento é encontrado, mas pode ser embebido com um Q-ponta. Extremo cuidado deve ser tomado para não lesar a dura-máter subjacente – como isso irá interferircom cura normal. Para o modelo de FSD, toma-se cuidado para não ferir os vasos sanguíneos principais de modo a não causar sangramento excessivo ou o nervo femoral para evitar danos neurológicos. Os fios de Kirschner são perfurados com uma ligeira pressão de modo a não danificar o osso cortical no processo. Figura 1. Preparo pré-operatório para defeito segmentar Femoral (FSD) em ratos atímicos. Ratos machos (12-14 semanas de idade) são anestesiados sob inalação de isoflurano. O fêmur é limpo e preparado por protocolo padrão com betadine. Figura 2. Exposição cirúrgica para Femoral segmentar Defeito criação (FSD). Uma incisão longitudinal 27-30 milímetros é feita sobre o aspecto ântero-lateral do fêmur. O aspecto lateral do eixo femoral é, então, exposta através da separação da vasto laterale bíceps femoral. Figura 3. Fixação Femoral para segmentar Defeito criação (FSD). Uma placa de polietileno (comprimento, 23 mm, largura, 4 mm, altura, 4 mm) é colocado sobre a superfície anterolateral do fémur. A placa contém seis orifícios pré-perfurados para acomodar 0,9 mm de diâmetro fios roscados Kirschner. Tomando a placa como um modelo, seis fios roscados Kirschner são perfurados através da placa e ambos os córtices. Em seguida, um defeito 6 mid-diafisária milímetros é criado. Uma vez que esta é realizada, um andaime feito por medida, que está directamente inserido exactamente se encaixa no local do defeito (não mostrado). Figura 4. Exemplo de defeito ósseo craniano pós-operatória. A 4 mm, defeito circular calvária é criado no osso parietal direito em ratinhos atímicos. Imaged aqui é um local do defeito implantados comPSCs em 8 semanas pós-operatórias. Note-se a presença de osso novo dentro do local do defeito.