Un método simple y eficaz para aislar los macrófagos de la Mezcla de cultivos primarios de células de hígado en adultos

1. La perfusión del hígado Anestesiar a un macho adulto de rata Sprague-Dawley (de 10 a 15 semanas de edad, peso corporal 150-200 g) mediante una inyección intraperitoneal de una solución de pentobarbital sódico (50 mg de sodio pentobarbital / kg de peso corporal). Colocar el animal en un recipiente de acero y gas etanol al 70% en el abdomen y el tórax. Hacer un pequeño corte y retire la piel. Abrir el abdomen por el corte con una tijera. Confirmar la ubicación de la vena porta, pasar un hilo quirúrgico en la vena porta y se agrupan libremente. Grupo la parte distal de la vena cava inferior y la vena mesentérica para prevenir el reflujo de sangre hacia el hígado. Abrir la cavidad torácica por el diafragma de corte con las tijeras, y exponer el corazón. Insertar un catéter de plástico (2 mm de diámetro) en la vena porta y apretar firmemente el hilo alrededor del catéter. Conectar el catéter a un sistema de perfusión que se carga con solución de lavado (Ca 2 +-Mg 2 + libre HBSS que contenía 0,5 mM EGTA, 10 mM HEPES y 4,2 mM NaHCO 3, pH 7.2) previamente calentada a 37 ° C. Comenzar la perfusión in situ a una velocidad de 10 ml / min. Al mismo tiempo, hacer un corte en la pared de la aurícula derecha. Continuar la perfusión durante 10 minutos. Cambie la solución de perfusión a la solución de colagenasa [HBSS que contiene HEPES 10 mM y 4,2 mm de NaHCO3 complementados con colagenasa tipo I (0,05%) y los inhibidores de tripsina (50 ug / ml), pH 7.5], y la perfusión de 10 a 20 minutos a una velocidad de 10 ml / min hasta que el hígado se inflama y se muestra un poco el signo de la desintegración de la estructura del hígado debajo de la membrana serosa. 2. Preparación de la fracción del parénquima celular de hepatocitos ricos Retire con cuidado la transferencia del hígado en un vaso estéril que contiene 25 ml de solución de colagenasa. Picar en trozos pequeños con tijeras. Añadir 75 ml de MEM frío en la suspensión celular resultante. Después de pipeteo suave, filtrado a través de un colador celular (100 m) para eliminar los tejidos conectivos y los fragmentos de tejido sin digerir. Transferir el filtrado en tubos de 50 ml y se centrifuga a 50 g durante 1 min a 4 ° C (freno desactivado). Elimine con cuidado el sobrenadante. Resuspender el precipitado con el MEM frío. Repita 2,4) tres veces. 3. Cultura mixta primaria de las células hepáticas Suspender las células obtenidas en 2.5) en el medio de cultivo compuesto por DMEM con 10% de FCS inactivado por calor, suplementado con 100 mM β-mercaptoetanol, 10 mg / ml de insulina, 100 ug / ml de estreptomicina y 100 U de penicilina / ml, y la semilla en nueve y cincuenta y cinco frascos de cultivo de tejido (con una superficie: 75 cm 2) a una densidad de 6,7 x 10 4 células / cm 2 (5 x 10 6 células / frasco / 12 ml -15 de media). Incubar la cultura flasksat 37 ° C en una atmósfera de 5% de CO 2 a 95% de aire. Vuelva a colocar el medio de cultivo cada 2 ó 3 intervalos de días. 4. Aislamiento selectivo de los macrófagos Después de 12 días de cultivo, los macrófagos proliferan en la capa celular. Estas células son suspendidas por mutuo temblor de los frascos de cultivo de 80 a 120 golpes por minuto durante 30 minutos a 37 ° C. Transferencia al medio de cultivo en 100 mm no de cultivo de tejido de plástico platos grado. Piscina del medio a partir de dos frascos T75 en un plato de plástico. Frascos de rellenar la cultura con el medio de cultivo y devolverlos a la incubadora. Incubar los platos de plástico por 30 minutos a 37 ° C en una atmósfera de 5% de CO 2 a 95% de aire. Macrófagos fácilmente se adhieren a los platos de cultivo de tejidos no de plástico de grado en este proceso de incubación, mientras que otras células contaminantes no. Aspirar el medio y enjuague suavemente el plato de plástico con PBS. Repita este paso tres veces. Añadir 1 ml de solución TrypLE Express en el plato, y se incuba durante 10 minutos a 37 ° C en una atmósfera de 5% de CO 2 a 95% de aire. Añadir 9 ml del medio de cultivo. Raspe suavemente los macrófagos unida por un rascador de células. La transferencia de la suspensión de células en un tubo cónico de 15 ml y centrifugar a 180 xg durante 5 min a 25 ° C (freno). Eliminar el sobrenadante y añadir 1 ml de medio de cultivo. Se disocian en células individuales mediante pipeteo vigoroso. Enumerar el número de células por un hemocitómetro de conteo. Medidas de aislamiento se puede repetir con los frascos de cultivo mismo de dos a intervalos de tres días por más de dos semanas. Macrófagos aislados pueden ser cultivados en el medio de cultivo se describen en 3.1. 5. Resultados representante Un ejemplo de una cultura mixta primaria de adultos células de hígado de rata se muestra en la Figura 2. Hepatocitos del parénquima perder la morfología de las células epiteliales dentro de unos días en la cultura, degenerada o transformarse en células similares a fibroblastos.Luego, alrededor del día 6 al 12 de contraste de fase brillante, redondo como los macrófagos-células vigourouly proliferan en la lámina de células de fibroblasto. Por agitación de los frascos de cultivo, los macrófagos son fácilmente suspendidas en el medio de cultivo, y la posterior transferencia e incubación en platos de plástico resultar en una adhesión selectiva de los macrófagos (Figura 3). Las células como los macrófagos-se puede cosechar a partir del día 8, y el número llegó a niveles máximos en los días de 12 a 14. Más de 10 6 células se pueden cosechar en un frasco de cultivo T75 repetidamente de 2 a 3 días a intervalos de más de dos semanas, lo que permite un rendimiento total de células por frasco de frasco de cultivo de 10 7 por T75 (Figura 3). La pureza de los macrófagos aislados de 95 a 99%, según lo evaluado por citometría de flujo o inmunocitoquímica con ratas macrófagos anticuerpos específicos, tales como ED-1 (Figura 4), ​​ED-3, OX-41 (Figura 4) y 9 Iba1. Las células aisladas muestran características típicas de los macrófagos, como la fagocitosis activa de cuentas polystylene (Figura 5), la respuesta proliferativa a GM-CSF recombinante, la secreción de antiinflamatorios / anti-citoquinas inflamatorias a la estimulación con LPS, y la formación de células gigantes multinucleadas 9. Figura 1. Un esquema para el aislamiento selectivo y la purificación de los macrófagos-células de cultivo mixto primarios de células de hígado de rata. Figura 2. Cultivo primario de células de hígado de rata y la proliferación de los macrófagos-células. La flecha indica una célula gigante multinuclear. Barra de escala = 100 micras. Reimpresión de la Revista de Métodos inmunológicos, Vol.360, 47-55 (2010) 9, con permiso de Elsevier. Figura 3. Aislamiento selectivo de los macrófagos-células de la agitación y el método de fijación. Las células fueron suspendidas en el medio de cultivo agitando los frascos, posteriormente trasladados en cajas de no cultivo de tejidos de plástico de grado, y se incuba a 37 ° C. A los 10 min después de la siembra, como los macrófagos-células pegadas a la superficie del plato, mientras que otras contaminación de las células fibroblásticas quedó suspendida. Después de lavar con PBS, una población de macrófagos altamente purificada se obtuvo. Estas células ganó la morfología típica de los macrófagos después de 40 min de la cultura, y las células mitóticas se observaron con frecuencia (flechas). Los cambios posteriores en el número de células recuperadas de los frascos en los períodos de cultura diferente se muestran. Los valores son un promedio ± SD desde tres hasta cinco frascos. Los experimentos se repitieron tres veces y los datos se indican con símbolos diferentes. Barra de escala = 100 micras. Reimpresión de la Revista de Métodos inmunológicos, Vol.360, 47-55 (2010) 9, con permiso de Elsevier. Figura 4. Coloración inmunocitoquímica de los macrófagos-células con anticuerpos monoclonales contra los macrófagos de rata. Figura 5. Fagocitosis de FITC microesferas por los macrófagos-células.